Utilization of yeast extract and formation of byproduct metabolite were investigated for hyperthermophilic archaeon Sulfolobus solfataricus (DSH 1617). In both batch and fed-batch cultivations of S. solfataricus, maximal cell density, {{{{ { NH}`_{4 } ^{ +} }}} ion production and pH change were highly dependent on the ratio of yeast extract to glucose in the medium. Variation of {{{{ { NH}`_{4 } ^{ +} }}}} ion level was identified as a major cause of pH change during cultivation, and acidification of culture broth was attributed to consumption of {{{{ { NH}`_{4 } ^{ +} }}}} ions rather than formation of acid byproducts. It was also observed that increase of {{{{ { NH}`_{4 } ^{ +} }}}} ion concentrations in the medium resulted in greater degree of growth inhibition.
Monoclonal antibodies against glutamate dehydrogenase (GDH) from Sulfolobus solfataricus were produced and characterized using epitope mapping and biosensor technology, Five monoclonal antibodies raised against S. solfataricus GDH were each identified as a single protein band that comigrated with purified S. solfataricus GDH on the SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and immunoblot. Epitope mapping analysis showed that only one subgroup among the antibodies tested recognized the same peptide fragments of GDH. Using the anti-S. solfataricus GDH antibodies as probes, the cross-reactivities of GDHs from various sources were investigated and it was found that the mammalian GDH is not immunologically related to S. solfataricus GDH. The structural differences between the microbial and mammalian GDHs were further investigated using biosensor technology (Pharmacia BIAcore) and monoclonal antibodies against S. solfataricus and bovine brain. The binding affinity of S. solfataricus glutamate dehydrogenase anti-S. solfataricus for GDH ($K_D$=11 nM) was much tighter than that of anti-bovine for GDH ($K_D$=450 nM). These results, together with the epitope mapping analysis, suggest that there may be structural differences between the two GDH species, in addition to their different biochemical properties.
Two low-salt complex media, bactopeptone and desalted yeast extract, were used for high density cultivation of the hyperthermophilic archaeon Sulfolobus solfataricus (DSM 1617). Bactopeptone, which has low mineral ion content among various complex media, was good for cell growth in batch cultures; the maximal cell density in bactopeptone was comparable to that in yeast extract. However, cell growth was rather poor when bactopeptone was added by the fed-batch procedure. Since several vitamins are deficient in abctopeptone, the effect of vitamins on cell growth was examined. Among the vitamins tested, pyridoxine was found to improve the growth rate of S. solfataricus. To reduce the growth inhibition caused by mineral ions, yeast extract was dialyzed against distilled water and then fed-batch cultures were carried out using a fed medium containing desalted yeast extract. Although the concentrations of mineral ions in yeast extract were significantly lowered by the dialysis whether low molecular weight solutes in yest extract are crucial for cell growth, we investigated the effect of trehalose, a most abundant compatible solute in yeast extract, on the growth pattern. Cell densities were increased and the length of the lag phase was markedly shortened by the presence of trehalose, indicating that trehalose plays an important role in the growth of S. solfataricus.
A thermostable esterase from the hyper thermophilic archaeon Sulfolobus solfataricus was partially purified 590-fold with $16.2\%$ recovery. The partially purified esterase had a specific activity of $29.5\;{\mu}mol\;min^{-1}mg^{-1}$ when the enzyme activity was determined using p-nitrophenyl butyrate as a substrate. The apparent molecular weight was about 100 kDa, while the optimum temperature and pH for esterase were $75^{\circ}C$ and 8.0, respectively. The enzyme showed high thermal stability and solvent tolerance in comparison to its mesophilic counterpart. The enzyme also showed chiral resolution activity for (S)-ibuprofen, indicating that S. solfataricus esterase can be used for the production of commercially important chiral drugs.
The archaeon Sulfolobus solfataricus P1 carboxylesterase is a thermostable enzyme with a molecular mass of 33.5 kDa belonging to the mammalian hormone-sensitive lipase (HSL) family. In our previous study, we purified the enzyme and suggested the expected amino acids related to its catalysis by chemical modification and a sequence homology search. For further validating these amino acids in this study, we modified them using site-directed mutagenesis and examined the activity of the mutant enzymes using spectrophotometric analysis and then estimated by homology modeling and fluorescence analysis. As a result, it was identified that Ser151, Asp244, and His274 consist of a catalytic triad, and Gly80, Gly81, and Ala152 compose an oxyanion hole of the enzyme. In addition, it was also determined that the cysteine residues are located near the active site or at the positions inducing any conformational changes of the enzyme by their replacement with serine residues.
Park, Young-Jun;Yoo, Chul-Bae;Choi, Soo-Young;Lee, Hee-Bong
BMB Reports
/
v.39
no.1
/
pp.46-54
/
2006
The coenzyme A-acylating 2-oxoacid:ferredoxin oxidoreductase and ferredoxin (an effective electron acceptor) were purified from the hyperthermophilic archaeon, Sulfolobus solfataricus P1 (DSM1616). The purified ferredoxin is a monomeric protein with an apparent molecular mass of approximately 11 kDa by SDS-PAGE and of $11,180{\pm}50$ Da by MALDI-TOF mass spectrometry. Ferredoxin was identified to be a dicluster, [3Fe-4S][4Fe-4S], type ferredoxin by spectrophotometric and EPR studies, and appeared to be zinc-containing based on the shared homology of its N-terminal sequence with those of known zinc-containing ferredoxins. On the other hand, the purified 2-oxoacid: ferredoxin oxidoreductase was found to be a heterodimeric enzyme consisting of 69 kDa $\alpha$ and 34 kDa $\beta$ subunits by SDS-PAGE and MALDI-TOF mass spectrometry. The purified enzyme showed a specific activity of 52.6 units/mg for the reduction of cytochrome c with 2-oxoglutarate as substrate at $55^{\circ}C$, pH 7.0. Maximum activity was observed at $70^{\circ}C$ and the optimum pH for enzymatic activity was 7.0 -8.0. The enzyme displays broad substrate specificity toward 2-oxoacids, such as pyruvate, 2-oxobutyrate, and 2-oxoglutarate. Among the 2-oxoacids tested (pyruvate, 2-oxobutyrate, and 2-oxoglutarate), 2-oxoglutarate was found to be the best substrate with $K_m$ and $k_{cat}$ values of $163\;{\mu}M$ and $452\;min^{-1}$, respectively. These results provide useful information for structural studies on these two proteins and for studies on the mechanism of electron transfer between the two.
A Sulfolobus-E. coli shuttle vector for an efficient expression of the target gene in S. acidocaldarius strain was constructed. The plasmid-based vector pSM21 and its derivative pSM21N were generated based on the pUC18 and Sulfolobus cryptic plasmid pRN1. They carried the S. solfataricus P2 pyrEF gene for the selection marker, a multiple cloning site (MCS) with C-terminal histidine tag, and a constitutive promoter of the S. acidocaldarius gdhA gene for strong expression of the target gene, as well as the pBR322 origin and ampicillin-resistant gene for E. coli propagation. The advantage of pSM21 over other Sulfolobus shuttle vectors is that it contains a MCS and a histidine tag for the simple and easy cloning of a target gene as well as one-step purification by histidine affinity chromatography. For successful expression of the foreign genes, two genes from archaeal origins (PH0193 and Ta0298) were cloned into pSM21N and the functional expression was examined by enzyme activity assay. The recombinant PH0193 was successfully expressed under the control of the gdhA promoter and purified from the cultures by His-tag affinity chromatography. The yield was approximately 1 mg of protein per liter of cultures. The enzyme activity measurements of PH0913 and Ta0298 revealed that both proteins were expressed as an active form in S. acidocaldarius. These results indicate that the pSM21N shuttle vector can be used for the functional expression of foreign archaeal genes that form insoluble aggregates in the E. coli system.
The purification of a thermostable esterase expressed in Escherichia coli was investigated using thermoprecipitation of unclarified cell homogenates followed by after applying the heat-treated lysate to phenyl-sepharose column, and elution with detergent. Heat treatment at $70^{cdot}C$ was capable of removing to E. coli proteins. Specially, the thermoprecipitation with 15% polyethylene glycol 8000 can remove host proteins and nucleic acids efficiently. Various detergents were used to recover the esterase, which was strongly bound to phenyl-sepharose resin. Triton X-100, non-ionic detergent, was found to be the most efficient of all tested detergents.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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