The purpose of this study was to determine effects of oxytocin and $interleukin-1{\alpha}$ on in vitro development of bovine embryo cultured with endometrial epithelial and stromal cells isolated from bovine uterus. The expressions of COX-2 mRNA in bovine endometrium were also studied. When embryos were cultured with epithelial cells, the rate of blastocysts was significantly (p<0.05) higher in embryos treated with oxytocin than that of control group. The rate of hatched blastocysts was also significantly (p<0.05) higher in embryos treated with oxytocin than those of two control groups. On the other hand, when the embryos were cultured with stromal cells, the rate of blastocysts were significantly (p<0.05) higher than those of groups treated with $IL-1{\alpha}$, oxytocin and control with stromal cells than that of control group without stromal cells. The rate of blastocysts hatched were also significantly (p<0.05) higher in group treated with $IL-1{\alpha}$ than those of control group without stromal cells and oxytocin group. In another experiment, COX-2 gene was expressed in embryo group treated with oxytocin during the co-culture of embryos with epithelial cells. In contrast, COX-2 mRNA was expressed in group treated with $IL-1{\alpha}$ when the embryos were cultured with stromal cell. This result shows that oxytocin and $IL-1{\alpha}$ were stimulate embryo development in vitro when embryos were cultured with epithelial and stromal cells, and can affect the development of bovine embryos in the uterus.
The study was designed to investigate the effects of progesterone and estrogen on the uterus of rats by immunohistochemical methods using Proliferating Cell Nuclear Antigen (PCNA) antibody. Eighteen female rats(Wistar), weighing initially about 300g, were ovariectomized. These rats were divided into four groups, progesterone-treated group, estrogen-treated group, estrogen+progesterone-treated group, and control group, progesterone-treated group was injected with 1mg of progesterone per rat per day for 2 days and estrogen-treated group with $20{\mu}g$ of $17{\beta}-estradiol$ for 3 days and estrogen+progesterone-treated group with $17{\beta}-estrdiol$ for 3 days and then with progesterone for 2 days as above. In gross findings, the uteri were markedly hypertrophied by estrogen treatment but were not affect in size by progesterone treatment. Immunohistochemical investigation was performed on the cell types with higher appearance of PCNA positive reaction cells in four groups. The groups with higher appearance of the stromal cells were ordered as estrogen-treated group, progesterone-treated group, estrogen+progesterone-treated group, and control group. The muscle cells were ordered as progesterone-treated group, estrogen-treated group, estrogen+progesterone-treated group, and control group. Positive reaction cells of the stromal cells were total 4.6 times higher than those of muscle cells. Therefore, the affect of the hypertrophy on the uterus by estrogen was larger than those of progesterone and affect on the uterus by stromal cells were larger than those of muscle cells. The group with more PCNA positive reaction cells of luminal epithelial cells were ordered as control group, progesterone-treated group, estrogen+progesterone-treated group, and estrogen-treated group, and glandular epithelial cells were ordered as estrogen+progesterone-treated group, progesterone-treated group, control group, and estrogen-treated group. It was suggested that estrogen and progesterone did not affect on the proliferating cells of luminal epithelial cells and affection of progesterone on the development of glandular epithelial cell was larger than that of estrogen.
Background: Cytokine-mediated ex vivo expansion has been proposed as a means of increasing the number of cord blood (CB) hematopoietic stem cells for transplantation. As well as stem cell number, stromal cells are necessary for functional maturation of hematopoiesis. The purpose of this study was to analyze the development of stromal cells during ex vivo expansion of CB $CD34^+$ cells. Methods : $CD34^+$ cells were purified from CB by magnetic bead selection. The levels of of interleukin-3, interleukin-$1{\beta}$, interleukin-6, granulocyte macrophagecolony stimulating factor and tumor necrosis factor-${\alpha}$ were measured in culture supernatants on 0, 1, 2, and 3 weeks, using ELISA techniques. CB $CD34^+$ cells were expanded in Iscoves modified Dulbeccos medium in the presence of several cytokines. The expression of E-selectin, vascular cell adhesion molecule-1, intercellular adhesion molecule-1, platelet/endothelial cell adhesion molecule-1, von Willebrand factor, vimentin, and CD14 in newly developed stromal cells was examined by immunocytochemical method. Relevant extracellular matrix (ECM) proteins and proper cytokines were also assayed for the most suitable condition for expansion of stromal cells. Results: Several cytokines were found to have been produced by CB $CD34^+$ cells as well as bone marrow-derived $CD34^+$ cells. During ex vivo expansion of CB $CD34^+$ cells, stromal cells appeared in the culture by day 4 and expanded over the following 7-10 days before being confluent by day 2 1. These cells expressed surface markers characteristic of cells of endothelial lineage. Furthermore, these stroaml cells also expanded effectively when treated with thrombopoietin+flt-3 ligand+stem cell factor+leukemia inhibitory factor or 0.1% poly-L-lysine-coated wells. Conclusion: Stromal cells were developed during ex vivo expansion of CB $CD34^+$ cells and that this development could be enhanced further by treating the stromal cells with cytokines or ECM.
Weekly subcutaneous injection of7 ,12-dimethylbenz[a]anthracene(DMBA) at a dose level of 0.25kg/mg body weight induced proliferative lesions in the spleen of syrian golden of syrian In addition, subcutaneous tumors at injection sites were observed. The splenic lesions included stromal hyperplasia and hacmangioma-like lesion.
Purpose: Adipose-derived stromal cells (ASCs) are readily harvested from lipoaspirated tissue or subcutaneous adipose tissue fragments. The stromal vascular fraction (SVF) is a heterogeneous set of cell populations that surround and support adipose tissue, which includes the stromal cells, ASCs, that have the ability to differentiate into cells of several lineages and contains cells from the microvasculature. The mechanisms that drive the ASCs into the osteoblast lineage are still not clear, but the process has been more extensively studied in bone marrow stromal cells. The purpose of this study was to investigate the osteogenic capacity of adipose derived SVF cells and evaluate bone formation following implantation of SVF cells into the bone defect of human phalanx. Methods: Case 1 a 43-year-old male was wounded while using a press machine. After first operation, segmental bone defects of the left 3rd and 4th middle phalanx occurred. At first we injected the SVF cells combined with demineralized bone matrix (DBM) to defected 4th middle phalangeal bone lesion. We used P (L/DL)LA [Poly (70L-lactide-co-30DL-lactide) Co Polymer P (L/DL)LA] as a scaffold. Next, we implanted the SVF cells combined with DBM to repair left 3rd middle phalangeal bone defect in sequence. Case 2 was a 25-year-old man with crushing hand injury. Three months after the previous surgery, we implanted the SVF cells combined with DBM to restore right 3rd middle phalangeal bone defect by syringe injection. Radiographic images were taken at follow-up hospital visits and evaluated radiographically by means of computerized analysis of digital images. Results: The phalangeal bone defect was treated with autologous SVF cells isolated and applied in a single operative procedure in combination with DBM. The SVF cells were supported in place with mechanical fixation with a resorbable macroporous sheets acting as a soft tissue barrier. The radiographic appearance of the defect revealed a restoration to average bone density and stable position of pharyngeal bone. Densitometric evaluations for digital X-ray revealed improved bone densities in two cases with pharyngeal bone defects, that is, 65.2% for 4th finger of the case 1, 60.5% for 3rd finger of the case 1 and 60.1% for the case 2. Conclusion: This study demonstrated that adipose derived stromal vascular fraction cells have osteogenic potential in two clinical case studies. Thus, these reports show that cells from the SVF cells have potential in many areas of clinical cell therapy and regenerative medicine, albeit a lot of work is yet to be done.
Uterine cells carry out proliferation and differentiation for preparation the embryonic implantation during pregnancy. Therefore regulation of the cell proliferation is an essential step for uterine preparation, but there is not much information about the proliferation related genes in pregnant uterus. To identify these implantation specific genes, a PCR-select cDNA subtraction method was employed and got a few genes. One of the identified genes is a novel gene encoding oral tumor suppressor doc-1. To detect the doc-1 expression on the pregnant uterus, dot blotting, RT-PCR, and in situ hybridization were employed. Dot blotting revealed that doc-1 mRNA expression increase after implantation. During normal pregnancy, doc-1 mRNA expression was detected as early as day 1 of pregnancy with RT-PCR. Its expression was increased about 15 times after embryonic implantation. doc-1 transcript was localized in luminal epithelial cells but it was very faint during preimplantation. After starting the implantation, it localized in the stromal cells; heightened expression of doc-1 correlates with intense stromal cell proliferation surrounding the implanting blastocyst on day 6 morning. However in the decidualized cells, the intensity of localized doc-1 mRNA was weak. From those results, it is revealed that doc-1 express at pregnant uterus of the mouse. In addition it is suggested that doc-1 is the gene regulating the proliferation of the luminal epithelial cells and stromal cells during early implantation and decidualization.
Systemic autoimmune diseases arise from loss of self-tolerance and immune homeostasis between effector and regulator functions. There are many therapeutic modalities for autoimmune diseases ranging from conventional disease-modifying anti-rheumatic drugs and immunosuppressants exerting nonspecific immune suppression to targeted agents including biologic agents and small molecule inhibitors aiming at specific cytokines and intracellular signal pathways. However, such current therapeutic strategies can rarely induce recovery of immune tolerance in autoimmune disease patients. To overcome limitations of conventional treatment modalities, novel approaches using specific cell populations with immune-regulatory properties have been attempted to attenuate autoimmunity. Recently progressed biotechnologies enable sufficient in vitro expansion and proper manipulation of such 'tolerogenic' cell populations to be considered for clinical application. We introduce 3 representative cell types with immunosuppressive features, including mesenchymal stromal cells, Tregs, and myeloid-derived suppressor cells. Their cellular definitions, characteristics, mechanisms of immune regulation, and recent data about preclinical and clinical studies in systemic autoimmune diseases are reviewed here. Challenges and limitations of each cell therapy are also addressed.
An, Jae-Il;Jang, In-Geun;Kim, Jae-Chan;Song, Gye-Yong;Lee, Hui-Gu;Yun, Do-Yeong;Bu, Ha-Ryeong;Kim, Gi-Ho;Park, Jeong-Geuk
한국생물공학회:학술대회논문집
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2002.04a
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pp.289-292
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2002
The corneal tissue consists of three layers : epithelium, stroma, and endothelium. Central cornea is a highly differentiated tissue whereas the limbus contains the epithelial stem cell. In the present study. we report the engineering of the three-dimensional reconstructed cornea derived from rabbit limbal epithelial and stromal cells. The differentiation degree of corneal stem cells were assessed in serum concentration and inoculation density of stromal cells. Optimal condition differentiation of corneal stem cells is achieved when 5% FBS was supplemented to culture medium and $1-2{\times}10^5$ cells/ml inoculation density of stromal cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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