Kim, Jin Ah;Jayabalan, Aravinth Kumar;Kothandan, Vinoth Kumar;Mariappan, Ramesh;Kee, Younghoon;Ohn, Takbum
BMB Reports
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v.49
no.8
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pp.449-454
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2016
Stress Granules (SGs) are microscopically visible, phase dense aggregates of translationally stalled messenger ribonucleoprotein (mRNP) complexes formed in response to distinct stress conditions. It is generally considered that SG formation is induced to protect cells from conditions of stress. The precise constituents of SGs and the mechanism through which SGs are dynamically regulated in response to stress are not completely understood. Hence, it is important to identify proteins which regulate SG assembly and disassembly. In the present study, we report Neuregulin-2 (NRG2) as a novel component of SGs; furthermore, depletion of NRG2 potently inhibits SG formation. We also demonstrate that NRG2 specifically localizes to SGs under various stress conditions. Knockdown of NRG2 has no effect on stress-induced polysome disassembly, suggesting that the component does not influence early step of SG formation. It was also observed that reduced expression of NRG2 led to marginal increase in cell survival under arsenite-induced stress.
Stress granules (SGs) are cytoplasmic aggregates of RNA-protein complexes that form in response to various cellular stresses and are known to restrict viral access to host translational machinery. However, the underlying molecular mechanisms of SGs during viral infections require further exploration. In this study, we evaluated the effect of SG formation on cellular responses to coxsackievirus B3 (CVB3) infection. Sodium arsenite (AS)-mediated SG formation suppressed cell death induced by tumor necrosis factor-alpha (TNF-a)/cycloheximide (CHX) treatment in HeLa cells, during which G3BP1, an essential SG component, contributed to the modulation of apoptosis pathways. SG formation in response to AS treatment blocked CVB3-mediated cell death, possibly via the reduction of mitochondrial reactive oxygen species. Furthermore, we examined whether AS treatment would affect small extracellular vesicle (sEV) formation and secretion during CVB3 infection and modulate human monocytic cell (THP-1) response. CVB3-enriched sEVs isolated from HeLa cells were able to infect and replicate THP-1 cells without causing cytotoxicity. Interestingly, sEVs from AS-treated HeLa cells inhibited CVB3 replication in THP-1 cells. These findings suggest that SG formation during CVB3 infection modulates cellular response by inhibiting the release of CVB3-enriched sEVs.
Seong, So Yoon;Jung, Harin;Choi, Yang Do;Kim, Ju-Kon
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2017.06a
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pp.115-115
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2017
Zinc finger proteins constitute a large family which has been studied to have various functions in different organisms. Tandem CCCH zinc finger proteins (TZFs), members of the zinc finger protein family, are known to participate as post-transcriptional regulators of gene expression in eukaryotes. Here, we showed that the OsZn15, a gene for tandem CCCH zinc finger protein, is induced by abiotic stress and its overexpression in transgenic rice plants (PGD1:OsZn15) gains higher drought tolerance. Gene expression analysis of promoter:GFP plants revealed that OsZn15 is specifically expressed in anther and embryo, but not in vegetative organs. In-field evaluation, grain yield was higher in the PGD1:OsZn15 than nontransgenic plants under drought conditions. Interestingly, OsZn15 is shown to not only localize at nucleus but also co-localize with both processing bodies (PB) and stress granules (SG), two messenger ribo-nucleoprotein complexes which are known to activate by forming cytoplasmic foci under stress conditions. In sum, these results suggest that OsZn15 increases drought stress tolerance of rice probably by participating in RNA turnover in PB and SG.
RNA granules such as Stress Granules (SG) and P-Bodies (PB) are aggregates of translationally stalled messenger ribonucleoprotein (mRNP) complexes induced by a wide range of stresses. Over the past decade, extensive studies described key components of RNA granules, their molecular interactions and signaling pathways require for their assembly and disassembly. However, researches defining their exact roles under stress conditions have not been performed so far, although several studies suggested their roles in neurodegenerative diseases recently. In this review, we provide an introduction about their basic properties, key components, and the dynamic nature for their assembly.
Programmed cell death 4 (PDCD4) is a novel tumor suppressor that function in the nucleus and the cytoplasm and appears to be involved in the regulation of transcription and translation. Stress granules (SGs) are cytoplasmic foci at which untranslated mRNAs accumulate when cells exposed to environmental stresses. Since PDCD4 has implicated in translation repression through direct interaction with eukaryotic translation initiation factor 4A (eIF4A), we here investigated if PDCD4 has a functional role in the process of SG assembly under oxidative stresses. Using immunofluorescence microscopy, we found that PDCD4 is localized to SGs under oxidative stresses. Next, we tested if knockdown of PDCD4 has an effect on the assembly of SG using PDCD4-specific siRNA. Interestingly, SG assembly was accelerated and this effect was caused by sensitization of phosphorylation of eIF2α and dephosphorylation of eIF4E binding protein (4E-BP). These results suggest that PDCD4 has an effect on SG dynamics and possibly involved in cap-dependent translation repression under stress conditions.
Mutations in Fused in Sarcoma (FUS) have been identified in patients with amyotrophic lateral sclerosis (ALS) or Frontotemporal Dementia (FTD). Pathological FUS is mis-localized to cytosol and forms aggregates associated with stress granules (SG), while FUS is normally localized to nucleus. However, it is largely unknown how pathological FUS forms SG-aggregates and which domains are responsible for this process. In this study, we examined cellular localization and aggregation of ALS-linked FUS missense mutants (P525L, R521C, R521H, R521G), analyzed the domains responsible for cytosolic FUS aggregation in HEK293T cells, and confirmed this in cultured mouse neurons. To do this, we firstly generated missense mutants of FUS and then examined their cellular localization. We found that P525L was mostly mis-localized to cytosol and formed FUS-positive SG aggregates while R521C, R521H, or R521G was localized to both nucleus and cytosol. To further characterize the domains required for aggregate formation of cytosolic FUS, we generated different domain-deletion mutants using FUS-∆17 which has a deletion of nuclear localization signal. Interestingly, cytosolic FUS without SYGQ and RGG1 domain or cytosolic FUS without RGG2-ZnF-RGG3 domain did not form FUS-positive SG aggregates, while cytosolic FUS without RRM domain generated more aggregates compared to FUS-∆17. Taken together, these data suggest that SYGQ-RGG1 or RGG2-ZnF-RGG3 domain contributes to formation of cytosolic aggregate, while RRM domain might interfere with FUS aggregation. Therefore, our studies will provide important insight for understanding cellular pathogenesis of neurodegeneration associated with FUS aggregate as well as finding therapeutic targets for ALS or FTD.
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