Granule bound starch synthase (GBSS), also known as the '"waxy protein'", is responsible for the synthesis of amylose in the amyloplasts of cereal crops. In hexaploid wheat (Triticum aestivum L.), GBSS is involved in amylose synthesis and rolls as an important factor to determine flour quality and end-use quality in food products. Genes on three Wx loci have been found to encode GBSS in common wheats. We developed techniques for the purification and separation of GBSS in wheat. Three major GBSS isoforms, which were encoded by the genes on three loci, Wx-A1, Wx-B1, and Wx-D1 migrating differently by one dimensional SDS-po-lyacrylamide gel electrophoresis (1D SDS-PAGE), were identified. GBSS from 66 Korean hard and soft winter wheats were purified and determined for their Wx loci and four of them were identified possessing a null allele either at the Wx-A1 and Wx-B1 loci. With help of identification of three GBSS isoforms using 1D SDS-PAGE system, we are able to identify and monitor Wx gene expressions in breeding materials for developing waxy or partial waxy wheats without experiencing consecutive selecting generations.cting generations.
The purification system of glucoamylase (glucan 1,4-${\alpha}$-glucosidase, EC 3. 2. 1. 3), some characteristics of the purified enzyme and hydrolysis rate of various raw starch were investigated through several experiments. The enzyme was produced on a solid, uncooked wheat bran medium of Aspergillus oryzae NR 3-6 isolated from traditional Korean Nuruk. The enzyme was homogeneously purified 6.8-fold with an overall yield of 28.3% by the criteria of disc- and SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The molecular weight was estimated to be 48 kDa by SDS-PAGE. The optimum temperature and pH were 55$^{\circ}C$ and 4.0, respectively. The enzyme was stable at a pH range of 3.0∼10.0 and below 45$^{\circ}C$. Enzyme activity was inhibited about 27% by 1mM Hg2+. The hydrolysis rate of raw wheat starch was shown to be 17.5-fold faster than the hydrolysis rate of soluble starch. The purified enzyme was identified as glucoamylase because the product of soluble starch by the purified enzyme was mainly glucose by thin layer chromatography.
A total of 437 landraces of rice from Vietnam were analyzed for total seed protein by SDS-PAGE and phenol reaction. The different types of glutelin $\alpha$ subunits were detected. The level of wx protein with 60kDa molecular weight was divided into 3 groups, corresponding to non-glutinous, intermediate and glutinous starch types. Based on the variation in seed storage protein and wx protein, landraces were classified into 7 groups. Frequency distribution of types A and B of glutelin $\alpha$ subunits changed with the latitude at which rice landraces were collected. Geographical cline for phenol reaction was detected.
This study has been performed to deveope a yeast strain having high ${\alpha}$-amylase production ability using nuclear transfer method. Hybrids formed between the strains of Saccharomyces fiburigera KCTC 7393 and Saccharomyces cerevisiae KCTC 7049 (tyr-, ura-)were obtained by nuclear transfer technique. Nuclei isolated from the wild type S. fiburigera strain were transfered into auxotrophic mutants S. cerevisiae and selected the hybrids showing an increased starch degrading capability were selected (MN-16). This transformant grew best and produced maximal ${\alpha}$-amylase activity on the medium containing 2% (V/V) soluble starch. ${\alpha}$-Amylase from MN-16 was purified electrophoretically homogenety and its properties were investigated. The enzyme was purified about 10.6 fold with an overall yield 9.7% from the culture medium by ammonium sulfate fractionation. DEAE-Sephacel column chromatography, and Sephacryl S-200 column chromatography. The purified enzyme showed a single band on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The molecular weight of the ${\alpha}$-amylase was estimated to be 53,000 daltons by SDS-PAGE and by gel permeation chromatography on Sephacryl S-200. The purified enzyme showed the maximum activity at pH 5.5 and 40${\circ}C$. The km value for soluble starch was 2.5㎎/㎖. The enzyme activity increased in the presence of $Ca^{2+}, Co^{2+}, EDTA, Mg^{2+}, Mn^{2+}, Zn^{2+}$, but inhibited by $Cu^{2+}, Fe^{2+}$, and $Ni^{2+}$
The objective of this study is to investigate cryoprotective effects of corn starch enzyme hydrolysates of nonsweet and low-calories on denaturation of frozen fish protein. The cryoprotective effects of were examined in Alaska pollack actomyosin solution by changes in SDS-PAGE pattern, solubility, and $Ca^{2+}$-ATPase activity. When samples stored for 0 and 30 days were compared on SDS-PAGE patterns, severe changes in all bands were shown on the control sample regardless of storage temperature, especially in myosin heavy chain (MHC). Not much difference no appeared the electrophoretic pattern in case of the samples containing sucrose at any storage temperature during 30 days of storage. The cryoprotective effect of the hydrolysates were markedly dependant on storage temperature and no MHC band was found in the samples stored at $-5^{\circ}C$. The SDS-PAGE patterns of sample stored at $-20^{\circ}C$, however, completely maintained after 30 days or storage. When the samples were stored at $-5^{\circ}C$, the solubility of the sample containing sucrose was retained at $90\%$ after 30 days of storage, whereas dramatically decreased in other samples. The samples including sucrose, D.E. 10, 15, and 20 revealed $90\%$ in solubility when stored at $-20^{\circ}C$. The tendency of remaining $Ca^{2+}$-ATPase activity was almost shown the same as that of solubility.
The Wx protein, known as starch synthase or starch glucosyl transferase (E.C. 2.4.1.11), is responsible for the amylose synthesis. In an effort to explain the mechanism of amylose biosynthesis, the starch synthase known as Wx protein was identified by analyzing the various wx rice mutants with SDS-PAGE of proteins extracted from rice starch. Finally, the 66 kDa protein was purified by extracting the starch-bound protein fractions followed by Suprose 12 gel filtration chromatography.
Kim, Myung-Hee;Lim, Young-Hee;Oh, Tae-Kwang;Sohn, Cheon-Bae
Applied Biological Chemistry
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v.40
no.6
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pp.465-471
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1997
The cyclodextrin glycosyltransferase (CGTase, EC 3.2.1.19) from Bacillus brevis CD162 was purified by precipitating with ammonium sulfate, DEAE-Sepharose CL-6B column chromatography and Sephadex G-150 column chromatography. The molecular mass and pI of the purified enzyme were estimated to be 74,000 and 6.3 by SDS-PAGE and isoelectric focusing, respectively. The purified enzyme was clearly identified as the CGTase by zymogram after SDS-PAGE. The optimum pH and temperature for the enzyme activity were 8.0 and $55^{\circ}C$, respectively. The enzyme was stable at the range of pH $5.5{\sim}9.0$, and up to $50^{\circ}C$. The amino acid sequence from the $NH_2-terminal$ of the purified CGTase was Ser-Val-Thr-Asn-Lys-Val-Asn-Tyr-Ser-Lys-Asp-Val-Ile-Tyr-Gln. The yields of the products from starch as the substrate were 1.3% for ${\alpha}-$, 33.9% for ${\beta}-$, and 9.7% for ${\gamma}-cyclodextrin$.
A new gene encoding an acidophilic TEX>$\alpha$-amylase of Bacillus cil-culans KCTC3004 was cloned into Eschericlzia coli using pUC19 as a vector. The gene localized in the 5.8 kb PstI DNA fragment was expressed independently of its orientation in the cloning vector showing enzyme activity about 40 times greater than that produced by the original B, circulans The optimum pH and temperature of the cloned enzyme were pH 3.6 and 45^{\circ}C.$ respectively. The enzyme hydrolyzed starch to produce maltotriose and maltooligosaccharides. The SDS-PAGE and zymopram of the enzyme produced in E coli(p.4L850) indicated a molecular weight of 55,000.
To investigate lactic acid bacterial population in Korean traditional rice wines, biotyping was performed using cell morphology and whole-cell protein pattern analysis by SDS-PAGE, and then the isolates were identified by 16S rRNA sequencing analysis. Based on the morphological characteristics, 103 LAB isolates were detected in wine samples, characterized by whole-cell protein pattern analysis, and they were then divided into 18 patterns. By 16S rRNA gene sequencing, the isolates were identified as Lactobacillus paracasei, Lb. arizonensis, Lb. plantarum, Lb. harbinensis, Lb. parabuchneri, Lb. brevis, and Lb. hilgardii when listed by their frequency of occurrence. It was found that the difference in bacterial diversity between rice and grape wines depends on the raw materials, especially the com position of starch and glucose.
The growth and bioconversion potential of selected strains growing on cassava waste substrate during solid state fermentation were assessed. Rhizopus stolonifer showed the highest and the fastest utilization of starch and cellulose in the cassava waste substrate. It showed 70% starch utilization and 81% cellulose utilization within eight days. The release of reducing sugars indicating the substrate saccharification or degradation potential of the organisms reached the highest value of 406.5 mg/g by R. stolonifer on cassava waste during the eighth day of fermentation. The protein content was gradually increased (89.4 mg/g) on the eighth day of fermentation in cassava waste by R. stolonifer. The cellulase and amylase activity is higher in R. stolonifer than A. niger and P. chrysosporium. The molecular mass of purified amylase and cellulase seemed to be 75 KDal, 85 KDal respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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