The three-dimensional structure of the Sertoli cell in the rat was investigated by scanning electron microscopy. Morphologically, seven types of Sertoli cell processes were evident : Shrot, flat and ramified processes are projected from the lateral side of the basal portion of Sertoli cell. Leaf-like processes are attached to the surface of spermatocytes and spermatids. Slender cord-like processes, flat and irregular shaped processes, sucker-like processes and club-like processes are observated in the middle and apical portion of seminiferous epithelium. The sheet-like processes rest upon more than one-thirds of the surface of each spermatogonium, spermatocyes and spermatids located in the proximity of the Sertoli cell. All Sertoli processes are originated from Sertoli cell column. Just before spermiation, the processes which are attached to the head of maturation spermatid are eliminated. Though the mechanism for elimination of residual body is not known, these observations segget that the Sertoli cell process are thought to have a reciprocity with the germ cells.
The spermiogenesis of Crocidura shantungensis were studied by electron microscope. All process of spermiogenesis was divided into 11 phases 15 steps, based on the morphological features of the nucleus and cell organelles in cytoplasm of spermatids. The spermatids in Golgi and cap phases were a spherical shape. On the other hand, at the early acrosomal phase they changed into an oval shape, and the tail was created in this phase. In maturation phase, the shapes of spermatid head were thin and longish. Until step 7 the direction of spermatids head turned toward the lumen of the seminiferous tubule. From step 8 to step 15 their heads turned toward the basal lamina. In step 12, the nucleus and acrosome shown maximal elongation. From Step 13 the nucleus of spermatids became flat, simultaneously with flat expansion of the acrosome expanded, and the visible whole lengths of spermatids were tend to be shorten. Spermatid heading which arrived to step 14 was taken the final shape. The nucleus was doing the wedge shape, and the nuclear chromatins condensed completely and homogenized. In the spermiation phase, the spermatids were gradually disconnected from the cytoplasm of the Sertoli cell. In this phase, the acrosome of the spermatids were fully shorten and flat, and the spermatozoa completed the process of heading and the tailing. Considering all the results, the spermiogenesis may be useful information to analyze the differentiation of spermatogenic cells.
The objective of this study was to characterize the reproductive cycle of the chameleon goby, T. trigonocephalus. Gonadal development was investigated using a histological method. Specimens were collected monthly, from April 2009 to March 2010. The gonadosomatic index (GSI) of females began to increase in April, reaching the maximum in May, and declined sharply in August. In males, the GSI began to increase in April and reaching the maximum in July. The annual reproductive cycle of T. trigonocephalus can be divided into four successive stages in females: the growing (November-March), maturing (April-May), ripe and spawning (June-July), and recovery (August-October) stages. Males passed through growing (November-March), maturing (April-June), ripe and spermiation (July-August), and recovery (September-October) stages. These results indicate the spawning season is from June to July. The relationship between fecundity (Fc) and body length (BL) was $Fc=86.1511BL^{2.6506}$. Fecundity was ranged from 3,448-9,654 eggs in a BL of 4.8-7.2 cm and it was increased as BL increased.
The cycle of the seminiferous epithelium and morphological features of spermatids in Crocidura dsinezumi were studied by light microscopy. The cycle of the seminiferous epithelium was divided into 12 stages. The dark type of spermatogonium(Ad) is appeared in all stages, and intermediate(In) in stage IV and B spermatogonium in stage V and VI were observed. The development of the acrosomal system, and changes in nuclear morphology of spermatids were divided into 14 steps. The Golgi, cap, acrosomal, maturation and spermiation phases were observed during steps $1{\sim}2$, steps $3{\sim}6$, steps $7{\sim}10$, steps $11{\sim}13$, and step 14, respectively. Our results provide the foundation for future studies of the spermiogenesis of Crocidura dsinezumis.
In order to study on the Sertoli cell, we attempt have been made to measure the average number of each germ cells per Sertoli cell on the 12 stages of cycle in matured korean Jindo dog. The fine structure of Sertoli cell junctional specialization was studied with electron microscope. The results were summarized as follows; 1. The average number of various germ cells associated with Sertoli cell was 9.77 to 13. 80 through stages of cycle and the total average number was 11.62. 2. Sertoli-Sertoli cell junctional specialization was present in seminiferous epilthelium, and Sertoli-spermatid cell junctional specialization rose from stage 8 spermatid, persisted to step 13 spermatid and then disappeared. The structure of Sedoli-spermatid cell juncticnal specialization was not similar to that of Sertoli cxlls. 3. Just after spermiation, free-surface of Sertoli-spermatid cell junctional specialization was replaced by Sertoli cell cytoplasm with tubulobulbar complex at the neiglaboring region observed. 4. The Sertoli cell process was located within the cytoplasm of late stage spermatids. Some membranes of residual body and spermatid cytoplasm partly disappeared, resulting in opening of the cytoplasm of spermatid into that Sertoli cell. This fact suggested that spermatid cytoplasm was partly eliminated.
We investigated the androgenic effects of 11-ketotestosterone (11-KT) on gonadal sex reversal and spermatogenesis in honeycomb grouper Epinephelus merra by method of gonadal biopsy. 11-KT was injected intramuscularly at a concentration of 1 and $10{\mu}g$ body weight. The proportion of cross sectional area of the gonad occupied by each germ cell type was measured and compared pre- and post-injection group. During the sex change phase, the distribution ratio of oocytes was decreased in all fish of 11-KT treatment group while the distribution ratio of spermatocytes was increased than pre-injection group. In male phase, all fish of 11-KT treatment group shown the increased distribution ratio of spermatocytes, but the distribution ratio of spermatozoa was decreased than pre-injection group. The present results suggest that 11-KT can stimulate degeneration of oocytes, proliferation of spermatocytes and spermiation in honeycomb grouper.
The cycle of the seminiferous epithelium and the development of spermatids of Apodemus agrarius coreae were observed using a light microscope. The cycle of the seminiferous epithelium was divided into 10 stages, and developing spermatids were subdivided into 10 steps. The Golgi phases occurs the first two steps ($St_1,\;St_2$), and the cap phases had the next two consecutive steps ($St_3$ and $St_4$). The acrosomal phases consisted of steps $5{\sim}8$ ($St_5-St_8$), and the remaining two steps consisted the maturation ($St_9$) and spermiation ($St_{10}$) phases, respectively. Type Ad spetmatogonia are appeared in all stages (I-X). Type Ap spermatogonia appeared from stage I and II, In spermatogonia from stage III, IV and V, and B spermatogonia from stages VI. The leptotene spermatocytes appeared from stage VII, zygotene from stages I, II, VIII, IX and X, pachytene from stage III to VIII, diplotene in stage IX, and meiotic figures and secondary spermatocytes in stage X. These data are considered in relation to interspecific differences in sperm morphology.
To investigate the process of spermoigenesis and glycogen effect during the spermatogenesis of Rana catesbeiana, the morphological characteristics of the testes were examined by light and transmission electron microscopy. Spermiogenesis of R. catesbeiana was divided into three stages on the basis of the features of the nucleus and the cytoplasm organelles. Except for the primary spermatogonia, the phases from the spermatocytogenesis to the spermatids before spermiation phase were surrounded by spermatocyst. Especially , the glycogen particles were not observed until in the stage of spermatocytogenesis, but from the early spermatids to the maturation phase were observed in the nucleus, acrosome and cytoplasm of the spermatids. The present result suggests that the glycogen may play an important role in the sperm maturation, and as a source of the energy in the wave-movement of sperm tail.
The aim of this study was to clarify the differentiation of seminiferous epithelial cells and spermiogenesis in the testis of Rana catesbeiana. Spermatogenesis of R. catesbeiana consists of primary spermatogonia, secondary spermatogonia, primary spermatocytes, secondary spermatocytes and spermatids. They were subdivided into eight stages on the basis of the morphological features of the germ cell differentiation. From the spermatocytes except primary spermatogonia to before the spermiation of spermatids were surrounded by spermatocyst. Spermiogenesis of R. catesbeiana can also be divided into three stages on the basis of morphological features of the nucleus and the cytoplasm organelles. Spermatozoon contained a saccular acrosome, a cylindrical and tapered slighty at both ends head, and a tail with only the axoneme.
To determine whether the reproductive processes of sea bass, Lateolabrax japonicus, proceed normally after transportation from an outdoor net-cage into indoor tanks, we examined changes in the gonadosomatic index (GSI), histological gonadal tissue, and plasma levels of sex hormones (testosterone and estradiol-17ß) during their annual reproductive cycle. We also measured maturation and spawning across two sea water salinity levels (full and low salinity). Fecundity was estimated by the relationship between egg number and body size in female sea bass. Monthly changes in the GSI, histological gonadal tissues, and oocyte size showed both male and female sea bass reach final maturation in January and February, respectively, indicating that the spermiation of males occurs earlier than the spawning of females. The histological results indicated that the sea bass is a multiple spawner, similar to many marine teleosts, exhibiting group-synchronous oocyte development. Female maturation and spawning were enhanced in lower salinity seawater (29.6-31.0 psu) compared to that of normal salinity (34.5-35.1 psu). These results confirm that sea bass reproduction can occur successfully in captivity and imply that fertilized eggs can be collected from February to March. Additionally, our results show that lower salinity enhances oocyte maturation and spawning of female sea bass.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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