정자의 수정능력획득과 첨체반응은 Ca$^{2+}$에 의존적으로 일어나며, 수정능력획득 과정에서는 원형질막으로부터 cholesterol이 방출되어 첨체반응이 일어나기 쉬운 상태로 전환된다. 최근 세포막으로부터 cholesterol 방출을 촉진하는 methyl beta cyclodextrin (MBCD)이 첨체반응을 유발함이 알려졌으나 정자 주변의 Ca$^{2+}$ 농도와 관계없이 cholesterol 방출만으로 첨체반응이 유발되는지의 여부는 확인되지 않았다. 본 연구에서는 생쥐 정자에서 MBCD에 의한 첨체반응의 Ca$^{2+}$ 의존성을 조사하였다. 첨가된 Ca$^{2+}$이 없는 경우에도 MBCD는 농도 의존적으로 첨체반응을 증가시켰다. 저농도 (100 ${\mu}$M)의 Ca$^{2+}$의 존재시 MBCD에 의한 첨체반응이 유의하게 증가하였다. Ca$^{2+}$을 첨가하지 않은 배양액에 100 ${\mu}$M의 EGTA를 첨가한 경우 자발적 첨체반응을 유의하게 억제되었다. 같은 조건하에서 1 mM MBCD는 첨체반응을 유의하게 증가시켰으나 EGTA 비처리군보다 유의하게 낮아 MBCD에 의해 유발되는 첨체반응에 정자내부의 Ca$^{2+}$이 관여하는 것으로 사료된다. 이상의 결과에서 외부의 Ca$^{2+}$이 존재하지 않더라도 MBCD를 이용하여 첨체반응을 유발할 수 있으며 정자 내부의 Ca$^{2+}$이 원형질막 cholesterol의 방출에 따른 첨체반응 조절에 관여함을 알 수 있다.
Lv, Lihua;Yue, Wenbin;Liu, Wenzhong;Ren, Youshe;Li, Fuzhong;Lee, Kyung-Bon;Smith, George W.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제22권7호
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pp.969-976
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2009
Use of oocytes from prepubertal animals for in vitro embryo production holds potential application for reducing generation intervals and increasing genetic progress through embryo transfer. The objective of these studies was to compare the effect of three sperm pretreatments (prior to in vitro fertilization) and seven embryo culture protocols on fertilization rate and (or) subsequent development of in vitro fertilized embryos derived from oocytes harvested from ovaries of 1-6 month old prepubertal Boer goats in China. Cleavage rates were highest for embryos fertilized with heparin-treated versus calcium ionophore- or caffeine-treated sperm. Similar rates of blastocyst development were observed using heparin- and ionophore-treated sperm, which were higher than obtained with caffeine-treated sperm. No differences in cleavage or blastocyst rates were observed following embryo culture in basal medias (synthetic oviductal fluid (SOF), Charles Rosenkrans 1 (CR1) or tissue culture medium-199 (TCM-199)) containing 10% fetal bovine serum (FBS). Cumulus or oviductal cell co-culture did not enhance cleavage or blastocyst rates relative to culture in SOF+10% FBS. Replacement of FBS in SOF medium with 0.3% BSA increased cleavage rates, but did not increase rates of blastocyst development. Sequential culture in SOF+0.3% BSA followed by SOF+10% FBS increased blastocyst yield versus continuous culture in SOF+10% FBS and tended to increase blastocyst yield versus continuous culture in SOF+0.3% BSA. These results demonstrate a pronounced effects of sperm pretreatments and in vitro embryo culture systems on rates of blastocyst development and provide a potential protocol (sperm pretreatment with heparin and sequential embryo culture in SOF+0.3% BSA followed by SOF+10% FBS) for generation of the significant numbers of in vitro produced blastocysts from oocytes of prepubertal Boer goats necessary for application of embryo transfer in rural regions of China for distribution of Boer goat genetics.
본 연구는 정자저장형에 속하는 한국산 관박쥐와 지연착상형에 속하는 한국산 긴가락박쥐 정자들의 형태를 각각 비교 관찰하였다. 정자두부의 형태에 있어서, 관박쥐는 긴 탄환형이었고, 긴가락박쥐는 주걱형이었다. 관박쥐는 두부의 2/3부분이 핵으로 이루어져 있었고, 긴가락박쥐는 1/2부분이 핵으로 이루어져 있었다. Segmented column들은 관박쥐의 경우 $12\sim14$층으로 이루어져 있었고, 긴가락박쥐의 경우 $10\sim12$층으로 이루어져 있었다. 특히 satellite fiber의 경우 관박쥐는 중편부의 외측섬유들 사이에 존재하고 있지만, 긴가락박쥐는 존재하지 않았다. 이상의 관찰 결과에서 볼 때 이들 박쥐정자의 외형 및 내부 구조적 특징들이 생식패턴과 관련이 있을 것으로 여겨진다.
This study was conducted to determine the relationship between elapsed time after semen preservation on the changes of bacteria and semen quality. Semen was diluted with BTS(Beltsville Thawing Solution) extender without antibiotic for 7 days and sperm parameter and fertility were measured. Sperm motility was measured by CASA and total bacteria number was counted after 22~24 hr incubation from counting agar plate in which sperm dilute to $10{\sim}10^6$ in 0.9% saline solution and inoculate to agar. Acrosomal integrity was measured by Chlortetracycline (CTC) staining. CTC patterns were uniform fluorescence over the whole head (pattern F), characteristic of incapacitated acrosome-intact spermatozoa; fluorescence-free band in the post-acrosomal region (pattern B), characteristic of capacitated acrosome-intact spermatozoa; and almost no fluorescence over the whole head except for a thin band in the equatorial segment (pattern AR), characteristic of acrosome reacted spermatozoa. Total number of bacteria was significantly increased (p<0.0001) 3 days after preservation. Sperm motility, viability, and morphological abnormality on elapsed time after preservation were lower from 5 ($77.24{\pm}6.47$, p<0.001) and 7 days ($77.24{\pm}6.47$, p<0.001) after preservation compared to 1 ($15.71{\pm}7.18$) and 3 days($18.39{\pm}7.22$) after preservation, respectively. Sperm viability was significantly lower ($53.25{\pm}35.03$, p<0.0001) at 7 days after preservation. Morphological abnormality of sperm was lower (p<0.001) at 1 ($15.71{\pm}7.18$) and 3 ($18.39{\pm}7.22$) days compared to 5 ($21.84{\pm}7.91$) and 7 ($22.59{\pm}9.93$) days after preservation. Acrosomal integrity and capacitation rate (pattern F) were significantly lower (p<0.001) from 5 days after preservation. Based on the data we obtained from this study suggested that semen preserved more than 5 days without antibiotic would not recommend use for artificial insemination.
Sa, Soo-Jin;Kim, Tae-Shin;Park, Soo-Bong;Lee, Dong-Seok;Park, Chun-Keun
Reproductive and Developmental Biology
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제32권2호
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pp.97-104
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2008
Plasminogen activators (PAs) are serine protease that cleave plasminogen to form the active protease plasmin. PA/plasmin system playa role in mammalian fertilization and motility and acrosome reaction of sperm. The present study was undertaken to identify PAs in porcine gametes and investigate a possible role of plasminogen in in vitro fertilization in the pig. When boar spermatozoa were preincubated in a fertilization medium (mTBM) for 0, 2, 4 or 6 h, the activity of tPA-PAI ($110{\sim}117\;kDa$), tPA ($62{\sim}70\;kDa$), and uPA ($34{\sim}38\;kDa$) was observed in the sperm incubation medium and sperm sample. PA activities in the sperm incubation medium significantly (p<0.05) increased according to increasing incubation times, while PA activities in sperm significantly (p<0.05) decreased at the same times. In addition, the rate of acrosome reaction in spermatozoa increased by increasing culture times. When oocytes were separated from porcine cumulus-oocytes complexes at 0, 22 or 44 h of maturation culture, no PA activities were observed in cumulus free-oocyte just after aspiration from follicles. However, the activity of tPA-PAI ($108{\sim}113\;kDa$) and tPA ($75{\sim}83\;kDa$) was observed at 22 h of in vitro culture and significantly (p<0.05) increased as the duration of the culture increased. On the other hand, when porcine oocytes were activated by sperm penetration or calcium ionophore, plasminogen significantly (p<0.05) increased ZP dissolution time (sec) in activated oocytes by sperm penetration. These results suggest that supplementation of plasminogen to fertilization medium may playa positive role in the improvement of in vitro fertilization ability in the pig.
Park C. S.;Li Z. H.;Sung N. D.;Jin D. I.;Cong P. Q.;Kim E. S.;Song E. S.;Yi Y. J.
Reproductive and Developmental Biology
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제29권4호
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pp.253-257
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2005
This study was carried out to evaluate the effects of washing medium, breed and washing temperature of fresh and frozen-thawed boar sperm on mitochondrial activity and membrane integrity by flow cytometry. More than $80\%$ of fresh sperm washed with mTLP-PVA medium at $20^{\circ}C$ exhibited an intact membrane and a functional mitochondrion. With frozen-thawed samples, a large number of sperm showed both damaged membrane $(36.4\~46.9\%)$ and nonfunctional mitochondrion $(55.1\~71.1\%)$ in the mTLP-PVA and BTS washing media at $20^{\circ}C$. There were no breed effects of fresh and frozen-thawed sperm on mitochondrial activity and membrane integrity. The percentages of damaged membrane of fresh and frozen sperm, respectively, were higher at $4^{\circ}C$ washing temperature than at $20^{\circ}C$ washing temperature in the mTLP-PVA medium. We found that washing medium and washing temperature of fresh and frozen-thawed boar sperm were important for the analyses of mitochondrial activity and membrane integrity by flow cytometry.
The objective of this study is to estimate the effect of adding TES to LEY and FGE freezing extender for the sperm viability, acrosomal morphology and DNA fragmentation from miniature pig sperm, we evaluated sperm characteristics in TFGE, TLE and LEY with various thawing condition ($37^{\circ}C$ for 20 sec, 45 sec and $75^{\circ}C$ for 5 sec, respectively), and in different concentration of glycerol at 1%, 1.5%, 3%. The sperm viability and normal acrosome intact(NAI) in TFGE (Viability : $60.3{\pm}2.4$, NAI : $58.6{\pm}2.2%$), TLE ($61.3{\pm}2.4$, $62.2{\pm}2.2%$) extender significantly(p<0.05) increased than that in LEY ($50.2{\pm}2.4$, $54.5{\pm}2.2%$) extender thawed at $75^{\circ}C$ for 5 sec. According to the results from glycerol concentration, the viability and NAI of miniature pig sperm in 1.5% glycerol TLE ($66.1{\pm}3.2$, $66.2{\pm}1.0%$) was highest among the experimental groups. In accordance with this, DNA fragmentation rates was the lowest in TLE ($43.3{\pm}0.5%$) while that in LEY ($63.5{\pm}2.3%$) is the highest. Therefore, these results suggest that TLE extender method for freezing- thawing of miniature pig sperm increased the viability after thawing.
Sperm capacitation refers to polymerization of filamentous (F)-actin from globular (G)-actin. While the role of actin-related protein 2/3 (Arp2/3) complex in actin polymerization is well appreciated, the underlying mechanism(s) and its relationship with capacitation are poorly understood. Therefore, to evaluate the potential role of Arp2/3 complex on capacitation, bovine spermatozoa were incubated with multiple doses (1, 10 and $100{\mu}M$) of CK-636, an inhibitor of Arp2/3 complex with heparin. The cellular localization of the Arp2/3 complex in spermatozoa was identified by immunohistochemistry, whereas western blot was also applied to detect the protein tyrosine phosphorylation of sperm proteins. Additionally, sperm motility and kinematic parameters were evaluated using a computer-assisted sperm analysis system. CK-636 resulted in significant changes in the ratio of Arp2/3 complex localization between acrosome and equatorial region of the spermatozoa. Short-term exposure of spermatozoa to $100{\mu}M$ of CK-636 significantly decreased sperm motility, however a non-detectable effect on protein tyrosine phosphorylation was observed during capacitation. On the basis of these results, we propose that Arp2/3 complex is associated with morphological changes during capacitation and compromised sperm motility.
The study was conducted to investigate the effects of alpha-linolenic acid (ALA) combined with bovine serum albumin (BSA) or methyl-beta-cyclodextrin (MBCD) on plasma and acrosomal membrane damages, mitochondrial activity, morphological abnormality, motility, and oxidative stress in frozen-thawed boar sperm. In previous our study, 3 ng/mL ALA had been shown protective effect during freezing process of boar sperm. Therefore, we used 3 ng/mL ALA in present study and ALA was combined with same molar ratio of BSA or MBCD (ALA+BSA and ALA+MBCD, respectively). To confirm the effect of two carrier proteins, same volume of BSA and MBCD without ALA were added during cryopreservation. Membrane damage, mitochondrial activity, reactive oxygen species (ROS) and lipid peroxidation (LPO) levels were measured using flow cytometry, and movement of sperm tail as motility parameter and morphological abnormality were observed under light microscope. In results, all of sperm parameters were enhanced by ALA combined with BSA or MBCD compared to control groups (p<0.05). Mitochondrial activity, morphological abnormality, ROS and LPO levels in ALA+BSA or MBCD groups were no significant difference compared with ALA, BSA and MBCD treatment groups. On the other hand, plasma and acrosomal membrane intact, and sperm motility in ALA+MBCD group were higher than single treatment groups (p<0.05), whereas ALA+BSA did not differ. Our findings indicate that carrier proteins such as BSA and MBCD could improve the effect of ALA during cryopreservation of boar sperm, and treatment of ALA with carrier proteins enhance membrane integrity, mitochondrial activity through reduction of ROS-induced LPO.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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