Double stranded targets on the cDNA microarray contain representatives of both the coding and noncoding strands, which will introduce hybridization competition with probes. Here, the effect of double and single strands of targets on the signal intensity and the ratios of Cy5/Cy3 within the same slide were compared. The results show that single stranded targets can increase the hybridization efficiency without changing the Cy5/Cy3 ratio. Based on these results, a new strategy was established by generating cDNA targets with asymmetric PCR, instead of conventional PCR, to increase the sensitivity of the cDNA microarray. Furthermore, the feasibility of this approach was validated. The results indicate that the cDNA microarray system based on asymmetric PCR is more sensitive, with no decrease in the reliability and reproducibility as compared with that based on conventional symmetric PCR.
Recently, through the development of the primer extension preamplification(PEP) method which amplifies the whole genome, simultaneous multiple DNA analysis has become possible. Whole genome from each single cell can be amplified using 15 base oligonucleotide random primer. The greatest advantage of PEP-PCR is the ability to investigate several loci simultaneously and confirm results by analysing multiple aliquots for each locus. This technique led to the development of preimplantation genetic disease diagnosis using blastomere from early embryo, sperm, polar body and oocyte. In this study, we applied PEP-PCR in 20 cases of single amniocyte and 20 cases of single chorionic villus cell for the clinical application of the prenatal and preimplantational genetic diagnosis. We analysed 7 gene loci simultaneously which are 46, 47 exons related to dystrophin gene, two VNTR (variable number tandem repeat) markers using 5'dysIII, 3'CA related to dystrophin gene and DYZ1, DYZ3, DYS14 regions on chromosome Y. In all the tests, 97.5% of PEP-PCR amplifications with single cells were successful. We obtained 38/40 (95%) accuracy in gender determination through chromosome analysis comparison. Therefore, these results have significant implications for a sperm or oocyte analysis and prenatal or preimplantational genetic diagnosis.
Background: Single nucleotide polymorphisms (SNPs), which consist of a substitution of a single nucleotide pair, are the most abundant form of genetic variations occurring with a frequency of approximately 1 per 1000 base pairs. SNPs by themselves do not cause disease but can predispose humans to disease, modify the extent or severity of the disease or influence the drug response and treatment efficacy. Single nucleotide polymorphisms (SNPs), particularly those within the regulatory regions of the genes often influence the expression levels and can modify the disease. Studies examining the associations between SNP and the disease outcome have provided valuable insight into the disease etiology and potential therapeutic intervention. Traditionally, the genotyping of SNPs has been carried out using polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism(PCR-RFLP), which is a low throughput technique not amenable for use in large-scale SNP studies. Recently, TaqMan real-time PCR chemistry was adapted for use in allelic discrimination assays. This study validated the accuracy and utility of real-time PCR technology for SNPs genotyping Methods: The SNPs in promoter sequence (-37 and -524) of lung cancer suppressor gene, RRM1 (ribonucleotide reductase M1 subunit) with the genomic DNA samples of 89 subjects were genotyped using both real-time PCR and PCR-RFLP. Results: The discordance rates were 2.2% (2 mismatches) in -37 and 16.3% (15 mismatches) in -524. Auto-direct sequencing of all the mismatched samples(17 cases) were in accord with the genotypes read by real-time PCR. In addition, 138 genomic DNAs were genotyped using real-time PCR in a duplicate manner (two separated assays). Ninety-eight percent of the samples showed concordance between the two assays. Conclusion: Real-time PCR allelic discrimination assays are amenable to high-throughput genotyping and overcome many of the problematic features associated with PCR-RFLP.
The melanocortin 1 receptor (MC1R) plays an important role in regulation of melanin pigment synthesis within mammalian melanocytes. Mutations within the gene encoding MC1R have been shown to explain coat color variations within several mammalian species including cattle. To develope a rapid and accurate method for the identification of Hanwoo, we performed a modified PCR-RFLP analysis of MC1R gene using single nucleotide polymorphism (SNP) within MC1R as a target. A size of 538 bp (537 bp for Hanwoo) was amplified by PCR, digested with Hpa II, and electrophoresed on a 1.5% agarose gel. A PCR product from Hanwoo showed a single band of 537 bp, whereas two fragments of 328 bp and 210 bp were detected in both Holstein and Black angus. The current result suggests that the PCR-RFLP using our primers and enzyme digestion system would be very accurate, easy and reproducible method to discriminate between Hanwoo and Holstein/Black angus meat.
Preimplantation genetic diagnosis (PGD) has become an assisted reproductive technique for couples who are at risk that enables them to have unaffected baby without facing the risk of pregnancy termination after invasive prenatal diagnosis. The molecular biology and technology for single-cell genetics has reached an extremely high level of accuracy, and has enabled the possibility of performing multiple diagnoses on one cell using whole genome amplification. These technological advances have contributed to the avoidance of misdiagnosis in PGD for single gene disorders. Polymerase chain reaction (PCR)-based PGD will lead to a significant increase in the number of disorders diagnosed and will find more widespread use, benefiting many more couples who are at risk of transmitting an inherited disease to their baby. In this review, we will focus on the molecular biological techniques that are currently in use in the most advanced centers for PGD for single gene disorders, including biopsy procedure, multiplex PCR and post-PCR diagnostic methods, and multiple displacement amplification (MDA) and the problems in the single cell genetic analysis.
Seong Seok Choi;Seung Hyun Yoo;Yong Bae Seo;Jong Oh Kim;Ik Jung Kwon;So Hee Bae;Gun Do Kim
Journal of Life Science
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v.33
no.12
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pp.1025-1035
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2023
In this study, we analyzed SNPs that appear between Korean and Chinese Scapharca subcrenata using the nucleotide sequence data of S. subcrenata analyzed by genotyping by sequencing (GBS). To distinguish the country of origin for S. subcrenata in Korean and Chinese, we developed a primer set as single nucleotide polymorphism (SNP) markers for quantitative real-time PCR (qPCR) analysis and validated by sequencing SNPs. A total of 180 samples of S. subcrenata were analyzed by genotyping by sequencing, and 15 candidate SNPs were selected. SNP marker selection for country of origin were identified through real-time qPCR. Insertion 1 and SNP 21 markers showed the most distinct separation between the sequence types as well as the country of origin through qPCR, with the observed amplification patterns matching the expected outcomes.. Additionally, in a blind test conducted by mixing samples of S. subcrenata at random, Insertion 1 showed 74% accuracy, 52% sensitivity, and 96% specificity, and SNP 21 showed 86% accuracy, 79% sensitivity, and 93% specificity. Therefore, the two SNP markers developed are expected to be useful in verifying the authenticity of the country of origin of S. subcrenata when used independently or in combination.
Since some cyanobacterial isolates under selective culturing conditions are lacking of characteristic specialized cells or showing altered morphology, the morpho-taxonomic criteria are not accurate enough to discriminate between species. Instead of morphological parameters, a method based on the single or the combination of repetitive oligonucleotides in a single PCR, repetitive oligonucleotides-primed PCR (ROP-PCR), was applied to generate DNA profiles for members of the cyanobacterial genera Anabaena and Oscillatoria, both of which are responsible for causing poisonous blooms in various freshwater systems. ROP-PCR performed on 10 isolates of the cyanobacteria with ERIC and REP sequences from gram-negative bacteria, STRR1A and LTRR sequences derived from cyanobacterial genome, and eukaryotic repetitive sequences, led to the identification of distinct genotypes, and provided specific and repeatable DNA fingerprints for cyanobacterial isolates. Grouping analysis of cyanobacterial isolates showed a signifiant difference depending on the primer used in PCR.
The present study was conducted to rapidly detect Listeria monocytogenes in raw milk. Specificity and sensitivity of polymerase chain reaction(PCR) technique, and direct PCR were examinded in raw milk, also were compared the calssical culture methods with PCR technique. This method used a pair of primers based on a unique region in the 16S rRNA sequence of L nomocytogenes. In the PCR specificity tests, each of the 10 strains of L monocytogenes tested gave a single 70-bp band. But the other six Listera spp tested gave negative results. Results of the sensitivity tests showed that as few as 2 CFU of L monocytogenes in pure cultures could be detected with 16S rRNA-based primers, L-1 and L-2. In different PCR cycles, a PCR product was detected with $10^3$ cells of L monocytogenes from 25 cycles to 50 cycles and the concentration of PCR products was cycle-dependent. Raw milk samopes added L monocytogenes cells gave negative results. However, these samplers gave a single 70-bp band by pretreatment of pronase, and PCR products were detected with $10^1$ cells of L monocytogenes. To detemine the most sensitive culture protocol to use in conjunction with the PCR assay, raw milk samples were inoculated with L monocytogenes at concentrations ranging from 1 to $5.7{\times}10^4CFU/ml$. PCR assays from Listeria enrichment broth(LEB) containing raw milk samples added L monocytogene EGD could dtect 10 cells in pronase-pretreated samples without incubation, and 1 cell of L monocytogenes in both 12 hr and 24 hr incubation, respectively. Isolation raw of PCR assays was similar to that of classical culture methods, but required time for detection of L monocytogenes could remarkably be reduced compare to culture methods.
Piezoelectric (PZ) crystal biosensor system was used to detect the DNA of food pathogenic Listeria monocytogenes. L. monocytogenes-specific DNA was multiplied via the polymerase chain reaction using LM1 oligonucleotide (5'-TTACGAATTAAAAAGGAGCG-3') and LM2 oligonucleotide (5'-TTAAATCAGCAGGGGTCTTT-3') as primers. DNA fragment of 161 bp, which was specific only for L. monocytogenes, was observed. To obtain a large amount of single-stranded DNA containing an SH group used for coupling to the gold electrode chemisorptively, LM1 oligonucleotide containing a mercaptohexyl group was utilized as a single strand PCR primer. The PCR product was immobilized onto the gold electrode of PZ crystal, and hybridization was monitored in quartz crystal microbalance (QCM) system by injecting the antisense single-stranded DNA of 161 nucleotides obtained via the single strand PCR using the unmodified LM2 primer. Approximately 70 Hz of frequency drop was observed in the QCM system in the case of two consecutive injections of $5{\mu}g$ of the antisense single-stranded DNA.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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