In situ detection of RNAs is becoming increasingly important for analysis of gene expression within and between intact cells in tissues. International genomics efforts are now cataloging patterns of RNA transcription that play roles in cell function, differentiation, and disease formation, and they are demon-strating the importance of coding and noncoding RNA transcripts in these processes. However, these techniques typically provide ensemble averages of transcription across many cells. In situ hybridization-based analysis methods complement these studies by providing information about how expression levels change between cells within normal and diseased tissues, and they provide information about the localization of transcripts within cells, which is important in understanding mechanisms of gene regulation. Multi-color, single-molecule fluorescence in situ hybridization (smFISH) is particularly useful since it enables analysis of several different transcripts simultaneously. Combining smFISH with immunofluorescent protein detection provides additional information about the association between transcription level, cellular localization, and protein expression in individual cells.
The mammalian ste20-like kinase (MST) pathway is important in the regulation of apoptosis and cell cycle and emerges as a novel tumor suppressor pathway. MST-induced phosphorylation of Salvador homolog 1 (SAV1), which is a scaffold protein, has not been evaluated in detail. We performed a mass spectrometric analysis of the SAV1 protein that was co-expressed with MST2. Phosphorylation was detected at Thr-26, Ser-27, Ser-36 and Ser-269. Although single or double mutations had little effects, the mutation of all four residues in SAV1 to Ala (SAV1-4A) had inhibitory effects on the MST pathway. MST2-mediated induction of SAV1-4A protein levels, SAV1-4A interaction with MST2 and the self-dimerization of SAV1-4A were weaker compared to those of wild-type SAV1. SAV1-4A inhibited MST2- and K-RasG12V-induced cell death of MCF7 cells. These results suggest that MST-mediated phosphorylation of four residues within SAV1 may be important in the induction of cell death by the MST pathway.
SH2D4A, comprising a single SH2 domain, is a novel protein of the SH2 signaling protein family. We have previously demonstrated SH2D4A is expressed ubiquitously in various tissues and is located in the cytoplasm. In this study we investigated the function of SH2D4A in human embryonic kidney (HEK) 293 cells using interaction analysis, cell proliferation assays, and kinase activity detection. SH2D4A was found to directly bind to estrogen receptor $\alpha$ (ER$\alpha$), and prevent the recruitment of phospholipase C-$\gamma$ (PLC-$\gamma$) to ER$\alpha$. Moreover, we observed its inhibitory effects on estrogen-induced cell proliferation, involving the protein kinase C (PKC) signaling pathway. Together, these findings suggested that SH2D4A inhibited cell proliferation by suppression of the ER$\alpha$/PLC-$\gamma$/PKC signaling pathway. SH2D4A may be useful for the development of a new anti-cancer drug acting as an ER signaling modulator.
Cellulosic single cell proteins produced from rice straw by three strains of cellulolytic bacteria were analysed for their composition and for their amino acid patterns. It was showed that they contains 52.2∼70.3% of crude Protein, 11.6∼13.9% of crude fat and 11.5∼18.1% of ash. The sulphur containing amino acids and threonine were analysed to be the limiting amino acid in the cellulosic SCP. The protein scores were calculated as 80.0 for Cellulomonas flavigena KIST 321, 78.00 for Cellulomonas fimi and 61.8 for Cellulomonas aurogena KIST 11. The nutritional value of the cellulosic SCP is discussed from the results.
The RAD3 gene of Saccharomyces cerevisiae is required for excision repair and is essential for cell viability. The RAD3 encoded protein possesses a single stranded DNA-dependent ATPase and DNA and DNA-RNA helicase activities. To examine the extent of conservation of structure and function of a S. pombe RAD3 during eukaryotic evolution, the RAD3 homolog gene was isolated by screening of genomic DNA library. The isolated gene was designated as HRD3 (homolog of RAD3 gene). Southern blot analysis confirmed that S. pombe chromosome contains the same DNA as HRD3 gene and this gene exists as a single copy in S. pombe. The transcript of 2.8 kb was detected by Northern blot analysis, The level of transcripts increased by ultraviolet (UV) irradiation, indicating that HRD3 is one of the UV-inducible genes in S. pombe. Furthermore, the predicted partial sequence of HRD3 protein has 60% identity to S. cerevisiae RAD3 gene. This homology was particularly striking in the regions identified as being conserved in a group of DNA helicases. Gene deletion experiments indicate that the HRD3 gene is essential for viability and DNA repair function. These observations suggest evolutionary conservation of other protein components with which HRD3 might interact in mediating its DNA repair and viability functions.
Local protein synthesis mediates precise spatio-temporal regulation of gene expression for neuronal functions such as long-term plasticity, axon guidance and regeneration. To reveal the underlying mechanisms of local translation, it is crucial to understand mRNA transport, localization and translation in live neurons. Among various techniques for mRNA analysis, fluorescence microscopy has been widely used as the most direct method to study localization of mRNA. Live-cell imaging of single RNA molecules is particularly advantageous to dissect the highly heterogeneous and dynamic nature of messenger ribonucleoprotein (mRNP) complexes in neurons. Here, we review recent advances in the study of mRNA localization and translation in live neurons using novel techniques for single-RNA imaging.
In order to investigate the action mechanism of protein kinase C on $K^+$ channel in osteoblastic cell, effects of phorbol 12, 13-dibutyrate on human osteoblast-like cells (G292) were studied by patch clamp technique with cell-attacked configuration. 111 this experiment, 45pS ion channel was dominant in G292 cell line according to their approximate conductances in symmetrical 140mM KCl saline at holding potential of 60mV. In torrent-voltage relationship, reversal potential was 5.5mV at the condition of potassium enriched saline in the pipette and -27 mV at the condition of standard extracellular saline In the pipette. Phorbol 12, 13-dibutyrate 10nM increased the open probability of 45pS channel and staurosporine, an inhibitor of protein kinase C, suppressed this effect. Phorbol 12,13-dibutyrate moved the reversal potential of 45pS channel to more negative potential and increased the single channel current at the same membrame potential. In order to check the activation of protein kinase C in G292 cell by phorbol 12,13-dibutyrate, western blot of protein kinase C was performed. Phorbol 12,13-dibutyrate $0.1{\mu}M$ translocated protein kinase C from cellular compartment to membrane compartment of the cell. These findings suggest that phorbol 12,13-dibutyrate, one of phorbol esters, activate 45pS channel In G292 cell and affect cell membrane potential, that regulate cellular function.
Background: Intracellular antibody specific to hepatitis B virus X protein (HBx) might be useful for studying the role of HBx in hepatocellular carcinogenesis and HBV replication. Methods: With variable region genes for H7 monoclonal anti-HBx Ab, we constructed a vector for bacterial expression of single chain Ab (scFv) and a vector for eukaryotic cell expression of it. The expression of H7 scFv and its binding activity against HBx was examined by immunoblotting and immunofluorescence microscopy. Results: H7 scFv expressed in bacterial cells retained reactivity to HBx. We demonstrated its intracytoplasmic expression in CosM6 eukaryotic cells. Conclusion: This is the first study showing the expression of intracellular anti-HBx Ab in eukaryotic cells. H7 scFv may be a good tool to study the function of HBx in HBV infection.
A cDNA clone coding for ribosomal protein 46 (rp46) which is a component of 60S ribosomal large subunit has been identified from Drosophila melanogaster. A cDNA clone encoding S. cerevisiae rp46 was used as a probe to screen a Drosophila larvae cDNA library. The DNA sequence analysis revealed that the cDNA coding for Drosophils rp46 contains a complete reading frame of 153 nucleotides coding for 51 amino acids. The deduced amino acid sequence showed 71-75% homology with those of other eukaryotic organisms. Northern blot analysis showed that about 1-kb rp46 transcripts are abundant throughout fly development. Whole mount embryonic mRNA in situ hybridization also showed no preferential distribution of the transcripts to any specific region. The chromosomal in situ hybridization revealed that the identified gene is localized at position 60C on the right arm of the second polytene chromosome with a possibility of single copy.
The present study describes the production of monoclonal antibodies against cultured chick myoblast to pursue critical proteins in muscle cell fusion. Among a panel of monoclonal antibodies, three, Mll-3H 13, Mll-3Hl8 and Mll-3H35 were inhibited movblast fusion. A single 101-kDa antigen reactive with monoclonal antibody Mll-3H35 was detected by radioimmu-noprecipitation or by immunoblotting. During the course of myogenesis, the level of the protein remarkably decreased as the cells there differentiated. These results suggest that the protein platys a direct role in the process of myoblast fusion mechanism.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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