Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1993.04a
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pp.134-134
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1993
Tn3 Transposon을 이용한 Shuttle Mutagenesis방법으로 효모의 Genome 상에 무작위적으로 $\beta$-gal 표지 유전자를 삽입하고 효모생활사의 각 세포시기 마다 특이하게 발현되는 유전자를 X-Gal plate상에서 찾아내고 이들 효모 유전자의 단백질이 세포내에 어떤 위치에 분포하는가를 간접 면역현미경법으로 추적해보았다. 먼저 효모의 genomic library를 38bp의 Tn3 Termial repeat를 가지고 있지 않은 pHSS6 Vector에 patial fill-in 방법으로 조성하였으며 최종적으로 20 Genome equivalent에 해당하는 18개 Pool의 genomic library를 만들었다. 이들 library를 조사하여 본 결과 모든 클론이 평균 3kb 크기의 insert를 가지고 있었으며 이는 99.99%의 효묘 genome을 대표하였다. 특정한 유전자의 발현을 알아보기 위해 먼저 mini-Tn3로 shuttle mutagenesis를 실시하고 vegetative growth동안 발현되는 유전자를 X-gal을 사용하여 골라내었다. 지금까지 16823개의 클론을 조사하였는데 이중 13%에 해당하는 2187개가 X-gal plate상에서 양성반응을 보여주었다. 양성반응을 보여주는 융합단백질의 세포내 분포틀 anti-$\beta$-galactosidase 항체를 사용하여 추적해보았다. 항체론 이용한 형광염색결과 약 70%의 세포가 background이상의 염색을 보여주었으며 이중 novel한 염색 pattern을 나타내는 클론도 다수 탐지되었다. 이상의 결과를 종합하면 Tn3틀 이용한 Shuttle Mutagenesis 방법으로 지금까지 전통적인 유전학적인 접근 방식으로 탐지되지 않았던 다수의 새로운 효모 유전자를 찾아낼 수 있을 것으로 사료된다.tamine제중 triprolidine이 $K_{M}$ /K$_{H}$ 비가 가장 높았고 diphenidol이 가장 낮았다. 이상의 결과로 보아 항 histamine제의 muscarinic receptor 차단작용은 이들 약물의 항 alleragy 효과에 필요한 작용이 아니며 본 실험에서 추정된 항 histamine제의 H$_1$-receptor와 muscarinic receptor에 대한 상대적 역가는 이들 약물의 선택과 평가에 중요한 지표가 될수 있을 것으로 생각된다.ing ischemic insults. The nature of the receptor is being explored by molecular genetic techniques, and we have recently cloned two of the major subunits; some of the data will be presented.LIFO, 우선 순위 방식등을 선택할 수 있도록 확장하였다. SIMPLE는 자료구조 및 프로그램이 공개되어 있으므로 프로그래머가 원하는 기능을 쉽게 추가할 수 있는 장점도 있다. 아울러 SMPLE에서 새로이 추가된 자료구조와 함수 및 설비제어 방식등을 활용하여 실제 중형급 시스템에 대한 시뮬레이션 구현과 시스템 분석의 예를 보인다._3$", chain segment, with the activation energy of carriers from the shallow trap with 0.4[eV], in he amorphous regions.의 증발산율은 우기의 기상자료를 이용하여 구한 결과 0.05 - 0.10 mm/hr 의 범위로서 이로 인한 강우손실량은 큰 의미가 없음을 알았다.재발이 나타난 3례의 환자를 제외한 9례 (75%)에서는 현재까지 재발소견을 보이지 않고 있다.
The Bacillus stearothermophilus cdd gene encoding cytidine deaminase (cytidine/2'-deoxycytidine aminohydrolase; EC 3.5.4.5) was isolated through shot gun cloning by oomplementation of an E. coli cdd mutation. Primarily 3.0 kbp of the exogenote was cloned into the Pstl site of pBR322 (pJSC101). By subsequent deletion and subcloning from the insert of pJSC101 with cdd$^+$ and tetracycline resistancy, about 1.35 kbp of the EcoRI$_1$/PstI$_2$ fragment containing the cdd gene was isolated as pJSC201. The minicell experiment revealed a molecular mass of 33,000 dalton for polypeptide from the cloned DNA fragment complementing the cdd gene. From the lacZ fusion of 550 bp fragment of the EcoRI$_1$/AuaI as a putative promoter region, the transcription direction of the cdd gene on pJSC201 is from EcoRI towards the PstI sites, When the cdd gene was expressed in B. subtilis ED4O (cdd$^-$, pyr$^-$) by transformation with the E. coli-B. subtilis shuttle vector, the gene expression occured more efficiently than in E. coli and the gene appears to be stably maintained in B. subtitis as well as in E. coli.
Park, Sun-Hee;Kim, Ok-Mi;Kim, Hyun-Jeong;Bae, Jun-Tae;Chang, Jong-Sun;Lee, Kap-Rang
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.31
no.1
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pp.224-230
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1999
The ddh gene encoding meso-DAP-dehydrogenase (DDH) involved in the dehydrogenase pathway is essential for high-level lysine production in Brevibacterium lactofermentum. To investigate its influence on lysine production by overexpression of the ddh gene in a lysine-producing B. lactofermentum, recombinant plasmid pRK1 and pRK31 containing the ddh gene of B. lactofermentum were constructed and they were introduced into B. lactofermentum by electroporation. Multiple copies of pRK1 and pRK31 caused 7-fold and 14-fold increase of DDH activity in B. lactofermentum cell extracts, respectively. As determined in shake flask fermentation, lysine production of B. lactofermentum harboring pRK1 or pRK31 was 22% or 19% higher than that of the control, respectively.
Kim Hyun-Chul;Kim Hyun-Jin;Kim Byung-Woo;Kwon Hyun-Ju;Nam Soo-Wan
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.33
no.4
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pp.281-287
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2005
The endoinulinase gene (inu, 2.733 kb, EC 3.2.1.7) from Paenibacillus polymyxa was subcloned into an Escherichia coli-yeast shuttle vector with GALl promoter for the expression in Saccharomyces cerevisiae. The constructed plasmid, pYGENIU27 (8.6 kb) was introduced into S. cerevisiae SEY2102 cell and then the yeast transformant was selected on the synthetic defined media lacking uracil and on the inulin-containing media. The recombinant endoinulinase was predominantly localized in the periplasmic space of the yeast cell. The total activity of the endoinulinase reached 1.81 unit/ml by cultivation of yeast transformant on YPDG medium. The optimized conditions determined for the inulooligosaccharides (IOSs) production from inulin were as follows; pH, 8.0; reaction temperature, $45^{\circ}C$; inulin source, Jerusalem artichoke. Enzyme activity was stably maintained up to the pH of 10.0. Under the optimized condition and with endoinulinase of 36 unit/g-inulin, IOSs started to be produced after 10 min of enzymatic reaction. By the reaction with inulin, IOSs consisting of inulobiose (F2), inulotriose (F3), and inulotetraose (F4) were produced and F3 was the major product. Consequently, these data would be used as a fundamental parameters for the production of functional sweetener IOSs from inulin by recombinant yeast endoinulinase.
The cryIB, truncated cryIB$[cryIB({\alpha})]$, cryIA(b), and cytA genes, encoding 135-, 89-, 131-, and 27-kDa proteins, respectively, from Bacillus thuringiensis were cloned into a shuttle vector pBES and expressed in E. coli and Bacillus species. The morphology and solubility in alkaline buffer of the insecticidal crystal proteins were investigated. Transformation of intact cells of E. coli and Bacillus species was achieved by electroporation. High field strength of 11.0 kV/cm and resistance of 129 ohms were required for efficient transformation of E. coli strains and 4.5 kV/cm and 48 ohms for Bacillus species. Strains of recombinant E. coli and Bacillus species produced the insecticidal crystal proteins and accumulated as the same bipyramidal and irregular structures as those of CryIB and IA(b) and CytA of B. thuringiensls, respectively. The insecticidal crystal proteins accumulated in recombinant E. coli wire smaller in size than those in recombinant Bacillus species. The solubility in alkaline buffer of the insecticidal crystal proteins of recombinant E. coli increased gradually as the pH increased, whereas in the case of Bacillus species the solubility increased gradually as the pH increased up to 9 and then the solubility increased greatly up to two times higher than that of E. coli proteins.
The cloned B. subtilis cdd gene encoding cytidine/2'deoxycytidine deaminase (EC 3.5.4.5) was expressed in the cdd deficient B. subtilis mutant ED40. The gene was isolted from the cdd complementing plasmid pSO21, and inserted into the EcoR1/Pvu1 sites of pGB215-110 ΔB, which is a temperature sensitivie E. coli-B. subtilis shuttle vector. In the transformed B. subtilis ED4O harboring the resulting plasmid pSO100, cdd was expressed at several hundred fold elevated levels, and the cytidine deaminase activity in E. coli containing pSO100 was twice the level in B. subtilis/pSO0100. The Km value for cytidine of the partially purified enzyme is 1.88$\times$10$^{-4}$M at pH 7.0 and the V$_{max}$ = 11.1 $\mu$mol/min/mg of protein. The enzyme was completely inhibited by 0.1M mercaptoethanol and HgCl$_2$. The inhibition by p-chrolomercurybenzoic acid showed a Ki = 5 uM. These results suggest that sulfhydryl reagents block an active site thiol group, and/or disturb the formation of the tetrameic holoenzyme.
Bovine Pneumonic Pasteurellosis는 수송열(輸送熱)로 일반적으로 알려져 있는 질병으로서, 여러가지 요인의 복합적(複合的)인 작용에 의해 발병하는 것으로 알려져 있으나, Pasteurella haemolytica A1이 가장 주요(主要)한 인자(因子)로 밝혀져 있다. P haemolytica A1은 leukotoxin(LKT), lipopolysaccharide(LPS), capsular polysaccharide 등 여러가지의 병원성인자(病原性因子)을 생성한다. 이들 인자중 LKT가 가장 중요한 병원성인자로 밝혀져 있다. 이에 본 실험은 P haemolytical A1의 LKT 유전자를 Bacillus subtilis에서 발현(發現)시킴으로서 LPS에 오염(汚染)되지 않은 LKT을 대량으로 생산할 목적으로 실시되었다. 실험의 첫 단계(段階)로서 pLKT52 plasmid을 Sau3 A1의 제한효소을 이용하여 부분소화(部分消化)시킨 후 이 부분 소화(消化)된 유전자들로부터 3~5kb 크기의 유전자들을 순수분리하여 pUC18와 결합시킨 후 E coli NM522에 형질전환(形質轉換)시켰다. 이때 형질전환된 균주들은 LKT에 대한 단크론 항체인 MAb601을 이용하여 colony blot 법에 의해서 LKT 유전자 보유 및 발현여부(發現與否)을 조사하였다. 이들 양성 clone들은 제한효소분석(制限酵素分析), 염기서열분석(鹽基序列分析) 및 Western blot 등에 의해서 재확인(再確認)하였다. 총 9개의 양성 clone중 위의 방법에 의해서 한 clone을 선택(選擇)하여 lktCA insert를 재분리하여 shuttle vector에 subcloning 하였다. Subcloning된 LKT 유전자들은 shuttle vector의 종류(種類)(pHPS9, p602/20, pHPS9-Sac)와 각기(各其) 다른 종류(種類)의 B subtilis(spoO12A, BR121, WB3O, Raj1105) 숙주내(宿主內)에서 발현정도를 Western blot 법에 의해서 비교(比較)하였다. 이때 최적발현조건(最適發現條件)은 p602/20와 pBL1의 dual plasmid system을 이용하여 B subtilis spoO12A에서 2시간동안 IPTG로 발현을 유도(誘導)하는 것이었다. B subtilis에서 발현된 LKT을 visual 법과 neutral red uptake 법을 이용하여 소 폐포(肺胞) 대식구(大食求)에 대한 biological activity를 확인하였다. 발현된 LKT에 대한 LPS 오염은 LKT을 SDS-PAGE 후 silver stain에 의해서 확인하였다. 본 실험을 통해서 볼 때에 lktCA 유전자를 보유(保有)하고 있는 p602/20는 B subtilis에서 매우 불안정(不安定)하였고, 발현된 LKT는 세균자체(細菌自體)에서 생성되는 protease들에 의해서 파괴(破壞)됨으로서 농도(濃度)가 매우 낮았다. 이러한 문제점들은 다음 단계(段階)의 실험에서 해결되어야할 문제들이다.
Kim Hyun-Chul;Kim Jeong-Hyun;Jeon Sung-Jong;Choi Woo-Bong;Nam Soo-Wan
Journal of Life Science
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v.15
no.3
s.70
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pp.317-322
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2005
The cycloinulooligosaccharide fructanotransferase (CFTase) gene (cft) from Paenibacillus macerans was subcloned into an E. coli-yeast shuttle vector, pYES2.0, resulting in pYGECFTN. The plasmid pYGECFTN (8.6 kb) was introduced into Saccharomyces cerevisiae SEY2102 cells and then the transformants were selected on the synthetic defined media lacking uracil. The cft gene expression in yeast transformant was demonstrated by the analyses cyclofructan (CF) spots on thin-layer chromatogram. The recombinant CFTase was not secreted into the medium and localized in the periplasmic space. The production of CF was observed after 5 min of the enzymatic reaction with inulin. The optimun pH and temperature for CF production were found to be at pH 8.0 and $45^{\circ}C$, respectively. Enzyme activity was stably maintained up to $55^{\circ}C$. The CF was produced from all inulin sources and was most efficiently produced from dahlia tubers and Jerusalem artichokes.
A cDNA clone encoding the ribosomal protein S20 has been isolated from the Schizosaccharomyces pombe cDNA library by colony hybridization. The insert contained in the original plasmid pYJ10 was transferred intro shuttle vector pRS316 generate plasmid pYJll. The dDNA insert of plasmid pYJll, contains 484 nucleotides and encodes a protein of 118 amino acids with a calculated mass of 13,544 daltons. The deduced amino acid sequence of S. pombe ribosomal protein S20 is very homologous with fruit fly, rat, and budding yeast counterparts. It is also homologous with Xenopus S22 ribosomal protein. S. pombe ribosomal protein S20 appears to be relatively hydruphobic except the C-terminal region. The 728 bp upstream region of the S20 gene was amplified from chromosomal DNA and transferred into the BamHI/EcoRI site of the promoterles $\beta$-galactosidase gene of the vector YEp357R, which resulted in fusion plasmid pYS20. The synthesis of $\beta$-galactosidase from the fusion plasmid appeared to be the highest in the mid-exponential phase. The S. pombe cells with the fusion plasmid grown at 35$\^{C}$ gave lower $\beta$-galactosidase activity than the cells grown at 30$\^{C}$. Computer analysis showed the consensus sequence CAGTCACA in the upstream regions of various ribosomal protein genes in S. pombe, which would be involved in the coordinated expression of small ribosomal proteins.
1,4-Dihydroxy-2-naphthoic acid (DHNA), a precursor of menaquinone (vitamin K2), has an effect on growth stimulation of bifidobacteria and prevention of osteoporosis, making it a promising functional food material. Therefore, we tried to clone the menB gene encoding DHNA synthase from Leuconostoc mesenteroides CJNU 0147. Based on the genome sequence of Leu. mesenteroides ATCC 8293 (GenBank accession no., CP000414), a primer set (Leu_menBfull_F and Leu_menBfull_R) was designed for the PCR amplification of menB gene of CJNU 0147. A DNA fragment (1,190 bp), including the menB gene, was amplified, cloned into pGEM-T Easy vector, and sequenced. The deduced amino acid sequence of MenB (DHNA synthase) protein of CJNU 0147 had a 98% similarity to the corresponding protein of ATCC 8293. The menB gene was subcloned into pCW4, a lactic acid bacteria - E. coli shuttle vector, and transferred to CJNU 0147. The transcription of menB gene of CJNU 0147 (pCW4::menB) was increased, when compared with those of CJNU 0147 (pCW4) and CJNU 0147 (−). The DHNA was produced from it at a detectable level, indicating that the cloned menB gene of CJNU 0147 encoded a DHNA synthase which is responsible for the production of DHNA, resulting in an increase of bifidogenic growth stimulation activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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