Heterologous expression of glucose oxidase gene using recombinant yeast has been carried out. Polymerase chain reaction was conducted to obtain the gene encoding glucose oxidase from Aspergillus niger and sequence comparison indicated the cloned 1.9kb DNA fragment appeared to be the glucose oxidise structural gene containing a signal sequence for extracellular location. Transforming shuttle vector was constructed with YEp352 to express the cloned glucose oxidase gene under the control of either GAL1 or GAL10 promoter. Plate assay of recombinant yeasts has shown that GAL1 promoter was more effective in yielding glucose oxidise than GAL10 promoter. Among the five different concentrations of galactose tried, 1% galactose showed the highest induction of glucose oxidase. Cellular localization experiment of recombinant enzyme using spheroplast revealed that most of enzymes (80%) were secreted into culture media in contrast to A. niger. There is no difference in heat-stability of recombinant enzyme up to $50^{\circ}C$ compared to the glucose oxidase from A. niger However, a dramatic reduction of enzyme activity was observed in both enzymes at $60^{\circ}C$.
The origin of the leading strand replication (ori) and of lagging strand replication (M-O) of R-plasmid pSBK203 was identified and its base sequence was determined. About 50 bp of ori sequence residues overlapped with the structural gene of rep. Sequence comparison reveals that pSBK-ori shares obvious identities with those of pT181 family and consists of two regions, one is conserved and the other is variable region. Of two palindrome sequence located one after another in upstream region of rep gene, palA' instead of palA which shares sequence homology with diverse family of plasmids such as pOX6, pC194, and pE194 seems to act as a signal for conversion of primarily replicated ssDNA to dsDNA (minus origin (M-O)).
Park, Hyeon-U;Kim, Ho-San;Kim, Yeong-Hun;Jin, Byeong-Rae;Gang, Seok-Gwon
Journal of Sericultural and Entomological Science
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v.36
no.2
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pp.157-161
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1994
To investigate the morphology of Bacillus thuringiensis crystal proteins, two type crystal protein genes, cryIA(c) gene under the control of cryIA(b) gene promoter and cryIIA gene under the control of its own promoter, were transformed in B. thuringiensis acrystalliferous mutant strain and the transformants were characterized by SDS-PAGE and scanning electron microscopy. The expression and formation of crystal proteins in B. thuringiensis subsp. kurstaki Cry-B revealed that crystal proteins appear to have same molecular weight and morphology to those of wild type strain's, suggesting that the expression and formation of crystal proteins affected not by host cell or recombination of cryIA(e) gene under the control of cryIA(b) gene promoter but by only structural fragment of protoxin.
Leuconostoc mesenteroides SY1, a strain isolated from cabbage Kimchi, was transformed with pCW4, a shuttle vector based on a cryptic plasmid from Lactobacillus paraplantarum C7. $\alpha-Amylase$ gene, amyL, from Bacillus licheniformis was cloned into pCW4, resulting in $pCW4T{\alpha},\;and\;pCW4T{\alpha}$ was introduced into SY1 by electroporation. Transformation efficiency was $10^2cells/{\mu}g$ plasmid DNA. L. mesenteroides cells harboring $pCW4T{\alpha}$ did not show amylase activity, although amyL transcript was synthesized as determined by slot blot experiment. $pCW4T{\alpha}$ was stably maintained in SY1 in the presence of erythromycin (Em, $5\;{\mu}g/ml$) but rapidly lost when Em was omitted. Less than $1\%$ of the cells maintained $pCW4T{\alpha}$ after 5 days at $30^{\circ}C$.
The thr operon of Escherichia coli TF427, an $\alpha$-amino-$\beta$-hydroxyvaleric acid (AHV)-resistant threonine overproducer, was cloned in a pBluescriptII $KS^+$ plasmid by complementation of E. coli mutants. All clones contained a common 8.8 kb HindIII-generated DNA fragment and complemented the thrA, thrB, and thrC mutants by showing that these clones contained the whole thr operon. This thr operon was subcloned in the plasmid vectors pBR322, pUC18, and pECCG117, an E. coli/Corynebacterium glutamicum shuttle vector, to form recombinant plasmids pBTF11, pUTF25 and pGTF18, respectively. The subcloned thr operon was shown to be present in a 6.0 kb insert. A transformant of E. coli TF125 with pBTF11 showed an 8~11 fold higher aspartokinase I activity, and 15~20 fold higher L-threonine production than TF125, an AHV-sensitive methionine auxotroph. Also, it was found that the aspartokinase I activity of E. coli TF125 harboring pBTF11 was not inhibited by threonine and its synthesis was not repressed by threonine plus isoleucine.
Kim, Gyoung-Min;Lee, Ae-Ran;Lee, Kang-Wook;Park, Ae-Yong;Chun, Ji-Yeon;Cha, Jae-Ho;Song, Young-Sun;Kim, Jeong-Hwan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.19
no.9
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pp.997-1004
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2009
Bacillus amyloliquefancies CH51 isolated from cheonggukjang, a traditional Korean fermented soy food, has strong fibrinolytic activity and produces several fibrinolytic enzymes. Among four different growth media, tryptic soy broth was the best in terms of supporting cell growth and fibrinolytic activity of this strain. A protein with fibrinolytic activity was partially purified from the culture supernatant by CM-Sephadex and Phenyl Sepharose column chromatographies. Tandem mass spectrometric analysis showed that this protein is a homolog of AprE from B. subtilis and it was accordingly named AprE51. The optimum pH and temperature for partially purified AprE51 activity were 6.0 and $45^{\circ}C$, respectively. A gene encoding AprE51, aprE51, was cloned from B. amyloliquefaciens CH51 genomic DNA. The aprE51 gene was overexpressed in heterologous B. subtilis strains deficient in fibrinolytic activity using an E. coli-Bacillus shuttle vector, pHY300PLK.
- To investigate the possibility of genetic development for a multi-purpose strain of Bacillus subtilis YBL-7 against Fusat-iurn solani causing root rot of many impotant corps, the plasmid pGU66 inserting urease gene of Bacillus pasteurii had been introduced into Bacillus subtilis YBL-7 by PEG-induced protoplast (PIP) transformation system. Protoplasts of B. subtilis YBL-7 were prepared by treating the cells with lysozyme (200 $\mu g$/ml) in hypertonic buffer (SMMP). The highest transformation frequency was achieved when cells of the strain with lysozyme at $42^{\circ}C$ for 90 minutes. Optimal transformation was obtained using polyethylene glycol (MW 4000) at final concentration of 30% (V/V). The transformation frequency was increased proportionally to 1.2 $\mu g$ of plasmid DNA. At best condition, the transformation frequency (transformants/ regenerants/$\mu g$ of DNA) for pGU66 was appoximately $4 \times 10^{-3}$. Also, the urease gene was strongly expressed in the transformants of B. subtilis YBL-7 and maintained steadily. The antifungal ability of transformant was very similar to that of B. ssubtilis YBL-7.
Kim, Hong-Gyum;Lee, Jin-Joo;Park, Eun-Hee;Sa, Jae-Hoon;Ahn, Ki-Sup;Lim, Chang-Jin
BMB Reports
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v.34
no.4
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pp.379-384
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2001
The cDNA encoding ribosomal protein was identified from a cDNA library of Schizosaccharomyces pombe. The nucleotide sequence of the 548 by cDNA clone reveals an open reading frame, which encodes a putative protein of 166 amino acids with a molecular mass of 18.3 kDa. The amino acid sequence of the S. pombe L11 protein is highly homologous with those of rat and fruit, while it is clearly less similar to those of prokaryotic counterparts. The 1,044 by upstream sequence, and the region encoding N-terminal 7 amino acids of the genomic DNA were fused into the promoterless $\beta$-galactosidase gene of the shuttle vector YEp357 in order to generate the fusion plasmid pHY L11. Synthesis of $\beta$-galactosidase from the fusion plasmid varied according to the growth curve. It decreased significantly in the growth-arrested yeast cells that were treated with aluminum chloride and mercuric chloride. However, it was enhanced by treatments with cadmium chloride ($2.5\;{\mu}M$), zinc chloride ($2.5\;{\mu}M$), and hydrogen peroxide (0.5 mM). This indicates that the expression of the L,11 gene could be induced by oxidative stress.
Bacillus licheniformis 9945a releases a natural ${\gamma}-poly(glutamic\;acid)({\gamma}-PGA)$ into fermentation broth and shows a mucoid phenotype on the solid agar medium. Transformation of mucoid cells of Bacillus species has not been simple and straightforward. The transpositional activity of Tn10 in B. licheniformis also has not been own either. Thus, a spontaneous non-mucoid derivative of the B. licheniformis was obtained first. Shuttle vector pHV1248 containing mini-Tn10 was introduced into the non-mucoid derivative by the method of protoplast transformation. The resulting transformant was reverted to the wild mucoid phenotype, and then mutated randomly with the mini-transposon by heat induction. Auxotrophs requiring arginine, lysine, or tryptophan were isolated by replica plating method. Southern blotting and DNA-DNA hybridzation analysis showed that these auxotrophs were generated by mini-Tn10 insertion into the chromosomal DNA. This method of transformation and mutation using pHV1248 would be useful for the generation of diverse mutants of B. licheniformis 9945a.(Received January 24,1997; accepted March 10, 1997)
A stuructural gene (ycl) encoding novel yeast cell wall hydrolase, YCL, was cloned from alkalophilic Bacillus alcalophilus subsp. YB380 by PCR, and transformed into E. coli JM83. Based on the N-terminal and internal amino acid sequences of the enzyme, primers were designed for PCr. The positive clone that harbors 1.8 kb of the yeast cell wall hydrolase gene was selected by the colony hybridization method with a PCR fragment as a probe. According to the computer analysis, this gene contained a 400-base-paired N-terminal domain of the enzyme. Based on nucletide homology of the cloned gene, a 850 bp fragment was amplified and the C-terminal domain of the enzyme was sequenced. With a combination of the two sequences, a full nucleotide sequence for YCL was obtained. This gene, ycl, consisted of 1,297 nucleotides with 27 nucleotides with 27 amino acids of signal sequence, 83 redundant amino acids of prosequence, and 265 amino acids of the mature protein. This gene was then cloned into the pJH27 shuttle vector and transformed into the Bacillus subtilis DB104 to express the enzyme. It was confirmed that the expressed cell wall hydrolase that was produced by Bacillus subtilis DB104 was the same as that of the donor strain, by Western blot using polyclonal antibody (IgY) prepared from White Leghorn hen. Purified yeast cell wall hydrolase and expressed recombinant protein showed a single band at the same position in the Western blot analysis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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