The expression pattern of the cloned SUC2 gene in recombinant Saccharomyces cerevisiae was investigated in a two-stage culture. The recombinant yeast grown in a glucose medium where the SUC2 gene was repressed was harvested and then resuspended in a sucrose medium to induce invertase expression. The maximum activity of 10 units was obtained in a medium containing 2 $g/\ell$ sucrose as a carbon source at $30^{\circ}C$ . The oscillatory behavior of invertase activity in response to glucose concentrations in the second stage was observed. This effect can be attributed to a series of events: invertase expression from the SUC2 gene. sucrose hydrolysis to glucose and fructose by invertase, SUC2 repression by high glucose concentration, invertase induction as a result of depletion of glucose used for the yeast growth. The invertase activity was increased by 72.5% when growth temperature changed from $30^{\circ}C$: to $35^{\circ}C$.
To maximize the performance of recombinant cell fermentation process through optimizing environmental conditions, the production of invertase from recombinant Saccharomyces cerebisiae Containing SUC2 gene was studied as a model. The recombinant cells showed biphasic growth on glucose. Since the promoter of the SUC2 is regulated by the concentration of glucose in the medium, expression of invertase by recombinant yeast began when the glucose concentration decreased in a range of 0.25-0.4 g/L during the batch culture. Plasmid segregation occured frequently during glucose fermentation, and infrequently during ethanol oxidation. A rapid appearance of invertase activity with glucose was observed under nonaerated condition, and the maximum specific invertase activity was about 1.5 times as high as under aerobic condition, In fed batch culture, when n low level of glucose was continuously supplied to the tormentor after the time of glucose depletion during growth phase, specific and total invertase activity increased about 1.7 and 2.9 fold, respectively, in a batch culture.
In order to improve the productivity of invertase by recombinant Saccharomyces cerevisiae containing SUC2 gene, the effect of amino acids and dissolved oxygen concentration on the gene expression was investigated. Optimal concentrations of leucine and histidine for cell growth and cloned gene expression were 0.03 gig and 0.04 gig, respectively, expressed as the ratio of amino acid/glucose. The lack or excess of leucine and histidine has inhibitory effect on cell growth and invertase expression. In batch culture, the less aeration was, the higher invertase activity was. In continuous culture at a dilution rate of 0.09 h 1 with controlled dissolved oxygen tension, invertase activity increased dramatically at DOT levels below 5% air saturation, and a maximum activity of 215.54 KUlg cell was obtained under unaerated condition.
Sucrose (suc) is a disaccharide that consists of glucose (glu) and fructose (fru). It is a carbohydrate source that acts as a nutrient molecule and a molecular signal that regulates gene expression and alters metabolites. This study aimed to evaluate whether suc-specific signaling induces an increase in bioactive compounds by exogenous suc absorption via roots or whether other factors, such as osmotic stress or biotic stress, are involved. To compare the osmotic stress induced by suc treatment, 4-week-old cultured mugwort plants were subjected to Hoagland nutrient solution with 10 mM, 30 mM, and 50 mM of suc or mannitol (man) for 3 days. Shoot fresh weight in suc and man treatments was not significantly different from the control. Both man and suc treatments increased the content of bioactive compounds in mugwort, but they displayed different enhancement patterns compared to the suc treatments. Mugwort extract treated with suc 50 mM effectively protected HepG2 liver cells damaged by ethanol and t-BHP. To compare the biotic stress induced by suc treatment, 3-week-old mugwort plants were subjected to microorganism and/or suc 30 mM with Hoagland nutrient solution. Microorganisms and/or suc 30 mM treatments showed no difference about the shoot fresh weight. However, sugar content in mugwort treated with suc 30 mM and microorganism with suc 30 mM treatment was significantly higher than that of the control. Suc 30 mM and microorganism with suc 30 mM were effective in enhancing bioactive compounds than microorganism treatment. These results suggest that mugwort plants can absorb exogenous suc via roots and the enhancement of bioactive compounds by suc treatment may result not from osmotic stress or biotic stress because of microorganism, but by suc-specific signaling.
The enzyme, cis,cis-muconate lactonizing enzyme has been proposed to play a key role in the $\beta$-ketoadipate pathway of benzoate degradation. A 3.2-kb EcoRI fragment termed as pRSU2, isolated from a Pseudomonas cepacia genomic library was able to complement the catB defective mutant. Several relevant restriction enzyme sites were determined within the cloned fragment. In Pseudomonas putida SUC2 carrying pRSU2, the enzyme activity was relatively higher than those of the induced or partially induced state of wild type P. putida PRS2000. It was probably due to higher expression of P. cepacia catB in P. putida PRS2000. It was probably due to higher expression of P. cepacia catB in P. putida. One possible interpretation of these results is that the catB promoter in P. cepacia is recognized within P. putida, resulting in the almost same expression level.
Fed-batch fermentations with different feeding media were carried out in order to increase the productivity of invertase expression using a recombinant Saccharomyces cerevisiae containing plasmid pRB58. Two batch cultures showed the expression of the SUC2 gene at a low concentration of glucose, suggesting that glucose concentration could be used as a control variable in a fed-batch operation mode. In the fed-batch culture by feeding the basal medium, cell mass and specific invertase activity did not increase much as compared with the simple batch culture. A series of fed-batch cultures revealed that the sucrose-supplemented medium increased cell mass whereas the enriched medium did specific invertase activity. To capitalize on the synergism of the sucrose-supplemented medium and the enriched medium, the sucrose-supplemented enriched medium was used as a feeding medium. The fed-batch culture using this medium resulted in a 2.4-fold increase in cell mass and a 1.9-fold enhancement in specific invertase activity compared with those of the batch culture. The increase in cell mass and specific invertase activity led to a marked increase in total invertase activity, 250U/ml, which was 6.3 times higher than that of the batch culture.
The INU2 gene encoding an endoinulinase of Aspergillus ficuum was expressed by the Kluyveromyces marxianus INU1 promoter in a SUC2-deleted Saccharomyces cerevisiae to produce the endoinulinase free of an exoinulinase and an extracellular invertase in the culture medium. When inulin was included in the medium, a recombinant yeast strain produced the sufficient amount of the enzyme to make a halo around its colony. An expression of endoinulinase was dependent on the culture temperature and shaking. The highest expression of endoinulinase was observed at $30^{\circ}C$, and 150rpm.
The effects of medium pH and culture temperature on the expression and secretion of inulinase and invertase were investigated with recombinant Saccharomyces cerevisiae cells. These cells were obtained by transformation of 2$\mu$-based plasmids pYI10 and pYS10 which contain Kluyveromyces marxianus inulinase gene (INU1A) and S. cerevisiae invertase gene (SUC2), respectively, in the downstream of GAL1 promoter. The expression level and localization of inulinase and invertase were not affected significantly by the initial medium pH: secretion efficiencies of inulinase and invertase into the medium were about 90% and 60%, respectively, in the pH ranges of 4.0 to 6.5. However, the expression and secretion of both enzymes were strongly dependent on the culture temperature. The highest expression (7.7 units/mL) and secretion (6.7 units/mL) of inulinase were observed at 28$\circ$C and 30$\circ$C. As a consequence of decreased localization of inulinase in the periplasmic space, the secretion efficiency increased from 68% at 20$\circ$C, to 95% at 35$\circ$C,. The total expression level and secretion efficiency of invertase increased from 19 units/mL and 55% at 20$\circ$C to 25 units/mL and 68% at 35$\circ$C, respectively. Irrespective of the culture temperature, the invertase activity in the cellular fraction (periplasmic space and cytoplasmic fractions) was kept constant at around 33-45%.
Eight Escherichia coli cells with aerobic growth deflects were isolated by the insertion of ${\lambda}placMu53$, a hybrid bacteriophage of ${\lambda}$ and Mu, which created transcriptional fusion to lacZY. Two of these mutants, CLIO and CLl2, were irradiated with UV to obtain specialized transducing phages. The phages that took out the neighboring chromosomal DNA of the related gene responsible for deflective aerobic growth were identified. The in vivo cloned chromosomal sequence revealed that the mutated gene of CLIO was located at min 34.5 on the Escherichia coli linkage map and 1,599,515 on the physical map. The physical map indicated that there were 7 cistrons in the operon. We named this operon oxg10. The promoter sequence of oxg10 exhibited a possible binding site far SoxS, a transcriptional regulator that activates the transcription of various SoxRS regulon genes. Transferring the oxg10:: ${\lambda}placMu53$ mutation into the wild-type strain, RZ4500, resulted in the inhibition of normal aerobic growth, while the salute mutation in strain MO inhibited aerobic cell growth completely. The full operon sequences of oxg10 were cloned from the Excherichia coli genomic library. The mutated gene of CLl2 was identified to be a sucA gene encoding the ${\alpha}$-ketoglutarate dehydrogenase El component in the TCA cycle.
The alkaline protease gene was cloned from a halo-tolerant alkalophilic Bacillus clausii I-52 isolated from the heavily polluted tidal mud flat of West Sea in Inchon Korea, which produced a strong extracellular alkaline protease (BCAP). Based on the full genome sequence of Bacillus subtilis, PCR primers were designed to allow for the amplification and cloning of the intact pro-BCAP gene including promoter region. The full-length gene consists of 1,143 bp and encodes 381 amino acids, which includes 29 residues of a putative signal peptide and an additional 77-amino-acid propeptide at its N-terminus. The mature BCAP deduced from the nucleotide sequence consists of 275 amino acids with a N-terminal amino acid of Ala, and a relative molecular weight and pI value was 27698.7 Da and 6.3, respectively. The amino acid sequence shares the highest similarity (99%) to the nattokinase precursor from B. subtilis and subtilisin E precursor from B. subtilis BSn5. The substrate specificity indicated that the recombinant BCAP could hydrolyze efficiently the synthetic substrate, N-Suc-Ala-Ala-Pro-Phe-pNA,and did not hydrolyze the substrates with basic amino acids at the P1 site. The recombinant BCAP was strongly inhibited by typical serine protease inhibitor, PMSF, indicating that BCAP is a member of the serine proteases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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