ZnO nanoparticles were prepared by laser ablation of the ZnO powder dispersed in deionized water and surfactant solutions, and characterized using UV-VIS absorption spectroscopy, X-ray diffractometer and Transmission electron microscopy(TEM). ZnO nanoparticles produced show the pure ZnO crystal state without mixed state with Zn(OH)2 or Zn, and have the band gap energy of 3.35 eV, which is comparable to that of bulk ZnO. While ZnO nanoparticles prepared in SDS solution have the average diameter of 28nm with near spherical shape, those prepared in CTAB solution have the average size of 40 nm with mainly rod-like shape. ZnO colloidal solution of CTAB is more stable than that of SDS. These difference according to surfactants can be explained by difference of electrostatic interaction between surface charge of ZnO and surfactant molecules and by solvation effect in solution.
In this study, development of papain which is extremely stable to negative ionic environment was made by directed molecular evolution. The screening method to confirm papain activity was designed using anionic material and skim milk agar plate for obtaining stable modified papain. Most stable modified papain P38-10 was obtained, which shows activity 10-15 times higher compared to wild type papain in anionic environment.
Bacillus cereus $\beta$-amylase was purified by Sephadex G-100 gel filtration, CM Sephadex C-50 ion exchange chromatography and CM Sephadex C-50 ion exchange rechromatography The purified enzyme showed 871 unit/mg of specific activity. The purified enzyme was identified as homogenious by disc PAGE, SDS-PAGE and analysis of reaction product. The purified enzyme showed optimum pH 7.0. optimum temperature 5$0^{\circ}C$, and was stable at 0~5$0^{\circ}C$ and at pH range of 6~10.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.30
no.3
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pp.410-414
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2001
A new bacteriocin produced by Bacillus licheniformis cy2 was partially purified and characterized. The bacteriocin named as BSCY2 was stable in the pH range of 2.5~9.5. BSCY2 was stable below 4$0^{\circ}C$ and it retained its antimicrobial activity during long tern storage at -2$0^{\circ}C$ and -7$0^{\circ}C$. BSCY2 was inactivated 15 min exposure to temperatures over 8$0^{\circ}C$ and lost 50% of its antimicrobial activity within 2 hr at 7$0^{\circ}C$. BSCY2 was inactivated by proteinase K treatment, which indicates its proteinous nature. Direct detection of the BSCY2 band showing antimicobial activity on Tricine-SDS-PAGE suggested an apparent molecular mass of about 6,500 dalton. These characterizatics of BSCY2 are considered as potential compounds for use in bioindustry.
In this study, the antimicrobial activity of a bacteriocin produced by Enterococcus faecalis KT11, isolated from traditional Kargı Tulum cheese, was determined, and bacteriocin KT11 was partially characterized. The results showed that bacteriocin KT11 was antagonistically effective against various Gram-positive and Gram-negative test bacteria, including vancomycin- and/or methicillin-resistant bacteria. The activity of bacteriocin KT11 was completely abolished after treatment with proteolytic enzymes (proteinase K, ${\alpha}$-chymotrypsin, protease and trypsin), which demonstrates the proteinaceous nature of this bacteriocin. Additionally, bacteriocin KT11 remained stable at pH values ranging from 2 to 11 and after autoclaving at $121^{\circ}C$ for 30 min. In addition, the activity of bacteriocin KT11 was stable after treatment with several surfactants (EDTA, SDS, Triton X-100, Tween 80 and urea) and organic solvents (chloroform, propanol, methanol, ethyl alcohol, acetone, hexane and ethyl ether). Cell-free supernatant of E. faecalis KT11 was subjected to ammonium sulfate precipitation and then desalted by using a 3.5-kDa cut-off dialysis membrane. The bacteriocin activity was determined to be 711 AU/mL in the dialysate. After tricine-SDS-PAGE analysis, one peptide band, which had a molecular weight of ~3.5 kDa, exhibited antimicrobial activity. Because the bacteriocin KT11, isolated from E. faecalis KT11, exhibits a broad antimicrobial spectrum, heat stability and stability over a wide pH range, this bacteriocin can be used as a potential bio-preservative in foods. Additionally, bacteriocin KT11 alone or in combination with conventional antibiotics may provide a therapeutic option for the treatment of multidrug-resistant clinical pathogens after further in vivo studies.
A lectin was purified from Allomyrina dichotoma (ADL) by physiological saline extraction, ammonium sulfate fractionation, anion exchange column chromatography on DEAE Sephadex A-50 and gel filtration column chromatography on Sephadex G-200. Several biochemical properties of ADL were characterized as follows: ADL from gel filtration column chromatography showed single band on SDS-PAGE. ADL agglutinated the erythrocytes of rabbit and human A, B, O, AB. Agglutinability was relatively stable at basic pH, and was stable at temperature below $40^{\circ}C$. Agglutinability was not affected by metal ions and EDTA. This lectin was proved to be a glycoprotein which contains 0.47% of sugars. The molecular weight of ADL was estimated to be 97,000 dalton by SDS-PAGE. By amino acid analysis, ADL exhibited high amounts of aspartic acid. The lectin's immunomodulating effect was measured as cytokine production. The productions of 5 cytokines $(IL-1{\alpha},\;IL-2,\;IL-6,\;IFN{\gamma}\;and\;TNF{\alpha})$ from peripheral blood mononuclear cells were measured by ELISA. The lectin induced the highest secretion of IL-2 at 8 hr, $TNF{\alpha}$ at 4 hr, and $IFN{\gamma}$ at 24hr, respectively. These results suggest that ADL can elicit the production of detectable cytokines from PBMC.
A bacterium producing alkaline cellulase was isolated from soil, leaf mold and compost, and was identified as alkalophilic Bacillus sp. HSH-810 by morphological, cultural and biochemical determination. The optimum cul-ture condition of Bacillus sp. HSH-810 for the growth and alkaline cellulase production was $30^{\circ}C$ and pH 10.0. The maximum alkaline cellulase production was obtained when 1.0%(w/v) CMC, 0.5%(w/v) peptone, 0.02%(w/v) $CaCl_2$ and 0.02(w/v) $CoCl_2$ were used as carbon source, nitrogen source and mineral source, respectively. The optimum pH and temperature of the enzyme activity were pH 10.5 and $50^{\circ}C$, respectively. This enzyme was fairly stable in the pH range of 6.0-13.0 and at $50^{\circ}C$. For the effect of surfactants, the activity of alkaline cellulase was stable in the presence of sodium-$\alpha$-olefin sulfonate (AOS), sodium dodecyl sulfonate (SDS), Tween 20 and Tween 80, but inhibited by the presence of 0.1 linear alkyl-benzene sulfonate (LAS) sig-nificantly.
During the germination of mungbean seeds, the changes of water contents, total and soluble proteins, and electrophoretic pattern of the soluble proteins were examined. The moisture content of a dry mungbean was 12.7%, which was greatly increased after the soaking. Along to the germination period, the moisture contentof the mungbean sprouts was gradually increased up to 90.7%. The contents of total and soluble proteins were sharply decreased after the soaking of the mungbean and decreased gradually during the germination. PAGE of the soluble proteins showed two broad bands and three sharp bands. During the germination, two broad bands were weadened but other bands were relatively stable. SDS-PAGE showed 19 discrete bands and during the germination, the most of the bands were thinned or disappeared. But some of the protein bands were stable until the end of germination.
Molecular weight of Exo-maltotetraohydrolase produced by Pseudomonas stutzeri IAM 12097 was estimated to be approrimately 63,000 and 60,000 with SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and Sephadex-G-100 gel filtration, respectively. The isoelectric point was appeared to be pH 4.8. Optimum pH, the stable pH range and optimum temperature of this enzyme were pH 6.6, $pH6.0{\sim}10.5\;and\;45{\sim}50^{\circ}C$. The enzyme was stable below $40^{\circ}C$ and was rapidly inactivated above $55^{\circ}C$. This enzyme was inactivated completely by $Ag^+,\; Hg^{++},\;I_2$ and ${\beta}-cycoldextrin$, and slightly by EDTA, ${\rho}-CMB$ and IAA. Michaelis constant(Km) of this enzyme toward soluble starch, amylose and amylopectin were 7.70mg/ml, 6.17mg/ml, 5.56mg/ml, respectively.
A strain J-19 was isolated from soil, produced lipase which has resistant against alkali and linear alkylbenzene sulfonate. The strain was identified as Pseudornonns sp.. The enzyme was purified by ammonium sulfate precipitation, DEAE-Sephadex and Sephadex G- 100 column chromatography. The specific activity of the purified enzyme was 35 unit/mg protein and the yield of enzyme activity was 17%. The purified enzyme showed a single band on polyacrylamide disc gel electrophoresis. Mo1ecul;tr weight of the purified enzyme was estimated about 36,000 by Sephadex GI00 gel filtration and SDS-polyacrylarnide gel electrophoresis. The optimum pH and temperature were pH 10.0 and $30^{\circ}C$, respectively. Activity of the purified enzyme was increased 2-fold by the addition of 0.1% linear alkylbenzene sulfonate and 2.5- fold by the addition of 0.05% Tide. This enzyme remained stable from pH 8.0 to 10.0 and stable up to $40^{\circ}C$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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