Exogenous nucleic acids induce an innate immune response in mammalian host cells through activation of the retinoic acid-inducible gene I (RIG-I). We evaluated RIG-I protein for RNA binding and ATPase stimulation with RNA ligands to investigate the correlation with the extent of immune response through RIG-I activation in cells. RIG-I protein favored blunt-ended, double-stranded RNA (dsRNA) ligands over sticky-ended dsRNA. Moreover, the presence of the 5'-triphosphate (5'-ppp) moiety in dsRNA further enhanced binding affinity to RIG-I. Two structural motifs in RNA, blunt ends in dsRNA and 5'-ppp, stimulated the ATP hydrolysis activity of RIG-I. These structural motifs also strongly induced IFN expression as an innate immune response in cells. Therefore, we suggest that IFN induction through RIG-I activation is mainly determined by structural motifs in dsRNA that increase its affinity for RIG-I protein and stimulate ATPase activity in RIG-I.
Respiratory syncytial virus (RSV) is the leading cause of respiratory infection in infants and young children. Severe clinical manifestation of RSV infection is a bronchiolitis, which is common in infants under six months of age. Recently, RSV has been recognized as an important cause of respiratory infection in older populations with cardiovascular morbidity or immunocompromised patients. However, neither a vaccine nor an effective antiviral therapy is currently available. Moreover, the interaction between the host immune system and the RSV pathogen during an infection is not well understood. The innate immune system recognizes RSV through multiple mechanisms. The first innate immune RSV detectors are the pattern recognition receptors (PRRs), including toll-like receptors (TLRs), retinoic acid-inducible gene-I (RIG-I)-like receptors (RLRs), and nucleotide-biding oligomerization domain (NOD)-like receptors (NLRs). The following is a review of studies associated with various PRRs that are responsible for RSV virion recognition and subsequent induction of the antiviral immune response during RSV infection.
The type I interferons (IFNs) play a vital role in activation of innate immunity in response to viral infection. Accordingly, viruses have evolved to employ various survival strategies to evade innate immune responses induced by type I IFNs. For example, hepatitis E virus (HEV) encoded papain-like cysteine protease (PCP) has been shown to inhibit IFN activation signaling by suppressing K63-linked de-ubiquitination of retinoic acid-inducible gene I (RIG-I) and TANK-binding kinase 1 (TBK1), thus effectively inhibiting down-stream activation of IFN signaling. In the present study, we demonstrated that HEV inhibits polyinosinic-polycytidylic acid (poly(I:C))-induced $IFN-{\beta}$ transcriptional induction. Moreover, by using reporter assay with individual HEV-encoded gene, we showed that HEV methyltransferase (MeT), a non-structural protein, significantly decreases RIG-I-induced $IFN-{\beta}$ induction and $NF-{\kappa}B$ signaling activities in a dose-dependent manner. Taken together, we report here that MeT, along with PCP, is responsible for the inhibition of RIG-I-induced activation of type I IFNs, expanding the list of HEV-encoded antagonists of the host innate immunity.
Tripartite motif protein 25 (TRIM25), mediates K63-linked polyubiquitination of Retinoic acid inducible gene I (RIG-I) that is crucial for downstream antiviral interferon signaling. Here, we demonstrate that TRIM25 is required for melanoma differentiation-associated gene 5 (MDA5) and MAVS mediated activation of NF-${\kappa}B$ and interferon production. TRIM25 is required for the full activation of NF-${\kappa}B$ at the downstream of MAVS, while it is not involved in IRF3 nuclear translocation. Mechanical studies showed that TRIM25 is involved in TRAF6-mediated NF-${\kappa}B$ activation. These collectively indicate that TRIM25 plays an additional role in RIG-I/MDA5 signaling other than RIG-I ubiquitination via activation of NF-${\kappa}B$.
Upon viral infection, the host cell recognizes the invasion through a number of pattern recognition receptors. Melanoma differentiation associated gene 5 (MDA5) and retinoic acid-inducible gene-I (RIG-I) recognize RNA molecules derived from invading viruses, activating down-stream signaling cascades, culminating in the induction of the type I interferon. On the other hand, viruses have evolved to evade type I interferon-mediated inhibition. Hepatitis E virus has been shown to encode a few antagonists of type I interferon and it is not surprising that viruses encode multiple mechanisms of viral evasion. In the present study, we demonstrated that HEV PCP strongly down-regulates MDA5-mediated activation of interferon ${\beta}$ induction in a dose-dependent manner. Interestingly, MDA5 protein expression was almost completely abolished. In addition, polyinosinic polycytidylic acid (poly(I:C))- and Sendai virus-mediated activation of type I interferon responses were similarly abrogated in the presence of HEV PCP. Furthermore, HEV PCP down-regulates several molecules that play critical roles in the induction of type I IFN expression. Taken together, these data collectively suggest that HEV-encoded PCP is a strong antagonist of type I interferon.
Severe fever with thrombocytopenia syndrome virus (SFTSV) is an emerging phlebovirus of the Phenuiviridae family that has been circulating in the following Asian countries: Vietnam, Myanmar, Taiwan, China, Japan, and South Korea. Despite the increasing infection rates and relatively high mortality rate, there is limited information available regarding SFTSV pathogenesis. In addition, there are currently no vaccines or effective antiviral treatments available. Previous reports have shown that SFTSV suppresses the host immune response and its nonstructural proteins (NSs) function as an antagonist of type I interferon (IFN), whose induction is an essential part of the host defense system against viral infections. Given that SFTSV NSs suppress the innate immune response by inhibiting type I IFN, we investigated the mechanism utilized by SFTSV NSs to evade IFNmediated response. Our co-immunoprecipitation data suggest the interactions between NSs and retinoic acid inducible gene-I (RIG-I) or TANK binding kinase 1 (TBK1). Furthermore, confocal analysis indicates the ability of NSs to sequester RIG-I and related downstream molecules in the cytoplasmic structures called inclusion bodies (IBs). NSs are also capable of inhibiting TBK1-interferon regulatory factor 3 (IRF3) interaction, and therefore prevent the phosphorylation and nuclear translocation of IRF3 for the induction of type I IFN. The ability of SFTSV NSs to interact with and sequester TBK1 and IRF3 in IBs demonstrate an effective yet unique method utilized by SFTSV to evade and suppress host immunity.
Non-structural protein 1 (NS1) of influenza virus has been shown to inhibit the innate immune response by blocking the induction of interferon (IFN). In this study, we isolated two single-stranded RNA aptamers specific to NS1 with $K_d$ values of $1.62{\pm}0.30nM$ and $1.97{\pm}0.27nM$, respectively, using a systematic evolution of ligand by exponential enrichment (SELEX) procedure. The selected aptamers were able to inhibit the interaction of NS1 with tripartite motif-containing protein 25 (TRIM25), and suppression of NS1 enabled retinoic acid inducible gene I (RIG-I) to be ubiquitinated regularly by TRIM25. Additional luciferase reporter assay and quantitative real-time PCR (RT-PCR) experiments demonstrated that suppression of NS1 by the selected aptamers induced IFN production. It is noted that viral replication was also inhibited through IFN induction in the presence of the selected aptamers. These results suggest that the isolated aptamers are strongly expected to be new therapeutic agents against influenza infection.
Invading pathogens are recognized by diverse germline-encoded pattern-recognition receptors (PRRs) which are distributed in three different cellular compartments: extracellular, membrane, and cytoplasmic. In mammals, the major extracellular PRRs such as complements may first encounter the invading pathogens and opsonize them for clearance by phagocytosis which is mediated by membrane-associated phagocytic receptors including complement receptors. The major membrane-associated PRRs, Toll-like receptors, recognize diverse pathogens and generate inflammatory signals to coordinate innate immune responses and shape adaptive immune responses. Furthemore, certain membrane-associated PRRs such as Dectin-1 can mediate phagocytosis and also induce inflammatory response. When these more forefront detection systems are avoided by the pathogens, cytoplasmic PRRs may play major roles. Cytoplasmic caspase-recruiting domain (CARD) helicases such as retinoic acid-inducible protein I (RIG-I)/melanoma differentiation-associated gene 5 (MDA5), mediate antiviral immunity by inducing the production of type I interferons. Certain members of nucleotide-binding oligomerization domain (NOD)-like receptors such as NALP3 present in the cytosol form inflammasomes to induce inflammatory responses upon ligand recognition. Thus, diverse families of PRRs coordinately mediate immune responses against diverse types of pathogens.
Lee, Wook-Bin;Choi, Won Young;Lee, Dong-Hyun;Shim, Hyeran;KimHa, Jeongsil;Kim, Young-Joon
BMB Reports
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제52권2호
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pp.133-138
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2019
Upon viral infection, the 2', 5'-oligoadenylate synthetase (OAS)-ribonuclease L (RNaseL) system works to cleave viral RNA, thereby blocking viral replication. However, it is unclear whether OAS proteins have a role in regulating gene expression. Here, we show that OAS1 and OAS3 act as negative regulators of the expression of chemokines and interferon-responsive genes in human macrophages. Clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR)-CRISPR-associated protein-9 nuclease (Cas9) technology was used to engineer human myeloid cell lines in which the OAS1 or OAS3 gene was deleted. Neither OAS1 nor OAS3 was exclusively responsible for the degradation of rRNA in macrophages stimulated with poly(I:C), a synthetic surrogate for viral double-stranded (ds)RNA. An mRNA sequencing analysis revealed that genes related to type I interferon signaling and chemokine activity were increased in $OAS1^{-/-}$ and $OAS3^{-/-}$ macrophages treated with intracellular poly(I:C). Indeed, retinoic-acid-inducible gene (RIG)-I- and interferon-induced helicase C domain-containing protein (IFIH1 or MDA5)-mediated induction of chemokines and interferon-stimulated genes was regulated by OAS3, but Toll-like receptor 3 (TLR3)- and TLR4-mediated induction of those genes was modulated by OAS1 in macrophages. However, stimulation of these cells with type I interferons had no effect on OAS1- or OAS3-mediated chemokine secretion. These data suggest that OAS1 and OAS3 negatively regulate the expression of chemokines and interferon-responsive genes in human macrophages.
Middle East respiratory syndrome coronavirus (MERS-CoV) is a newly emerging coronavirus which is zoonotic from bats and camels. Its infection in humans can be fatal especially in patients with preexisting conditions due to smoking and chronic obstructive pulmonary disease (COPD). Among the 25 proteins encoded by MERS-CoV, 5 accessory proteins seem to be involved in viral evasion of the host immune responses. Here we report that ORF4a, ORF4b, and ORF8b proteins, alone or in combination, effectively antagonize nuclear factor kappa B ($NF-{\kappa}B$) activation. Interestingly, the inhibition of $NF-{\kappa}B$ by MERS-CoV accessory proteins was mostly at the level of pattern recognition receptors: melanoma differentiation-associated gene 5 (MDA5). ORF4a and ORF4b additively inhibit MDA5-mediated activation of $NF-{\kappa}B$ while that of retinoic acid-inducible gene 1 (RIG-I) is largely not perturbed. Of note, ORF8b was found to be a novel antagonist of MDA5-mediated $NF-{\kappa}B$ activation. In addition, ORF8b also strongly inhibits Tank-binding kinase 1 (TBK1)-mediated induction of $NF-{\kappa}B$ signaling. Taken together, MERS-CoV accessory proteins are involved in viral escape of $NF-{\kappa}B$-mediated antiviral immune responses.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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