The hemolytic uremic syndrome (HUS) is a rare disease of microangiopathic hemolytic anemia, low platelet count and renal impairment. HUS usually occurs in young children after hemorrhagic colitis by shigatoxin-producing enterohemorrhagic E. coli (D+HUS). HUS is the most common cause of acute renal failure in infants and young children, and is a substantial cause of acute mortality and morbidity; however, renal function recovers in most of them. About 10% of children with HUS do not reveal preceding diarrheal illness, and is referred to as D- HUS or atypical HUS. Atypical HUS comprises a heterogeneous group of thrombomicroangiopathy (TMA) triggered by non-enteric infection, virus, drug, malignancies, transplantation, and other underlying medical condition. Emerging data indicate dysregulation of alternative complement pathway in atypical HUS, and genetic analyses have identified mutations of several regulatory genes; i.e. the fluid phase complement regulator Factor H (CFH), the integral membrane regulator membrane cofactor protein (MCP; CD46) and the serine protease Factor I (IF). The uncontrolled activation of the complement alternative pathway results in the excessive consumption of C3. Plasma exchange or plasma infusion is recommended for treatment of, and has dropped the mortality rate. However, overall prognosis is poor, and many patients succumb to end-stage renal disease. Clinical presentations, response to plasma therapy, and outcome after renal transplantation are influenced by the genotype of the complement regulators. Thrombotic thrombocytopenic purpura (TTP), another type of TMA, occurs mainly in adults as an acquired disease accompanied by fever, neurologic deficits and renal abnormalities. However, less frequent cases of congenital or hereditary TTP associated with ADAMTS-13 (a disintegrin and metalloprotease, with thrombospondin 1-like domains 13) gene mutations have been reported, also. Recent advances in molecular genetics better allow various HUS to be distinguished on the basis of their pathogenesis. The genetic analysis of HUS is important in defining the underlying etiology, predicting the genotype-related outcome and optimizing the management of the patients.
Kim, Ghi-Chan;Kim, Kyoung-Ryong;Kim, Jee-Yeun;Park, Yang-Saeng
The Korean Journal of Physiology
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v.30
no.2
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pp.279-288
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1996
Chronic exposure to cadmium impairs various renal tubular functions, including organic acid (anion) secretion. To investigate the mechanism of cadmium-induced alterations in the organic anion transport system, kinetics of p-aminohippurate (PAH) uptake was studied in renal cortical basolateral membrane vesicles (BLMV) isolated from cadmium-intoxicated rats (adult male Sprague-Dawley). Cadmium intoxication was induced by subcutaneous injections of $CdCl_{2}$ (2 mg Cd/kg per day) for 3 weeks. The renal plasma membrane vesicles were prepared by Percoll gradient centrifugation. The vesicular uptake of $^{14}C$-PAH was determined by rapid filtration technique using Millipore filter. Cadmium intoxication resulted in a marked attenuation of $Na^{+}$-dependent, ${\alpha}$-ketoglutarate (${\alpha}$KG)-driven PAH uptake with no changes in $Na^{+}$ and ${\alpha}$KG-independent transport component. Kinetic analysis indicated that Vmax, but not Km, of the $Na^{+}$-dependent, ${\alpha}$KG-driven component was reduced. A similar reduction of $Na^{+}$-dependent, ${\alpha}$KG-driven PAH uptake was observed in normal membrane vesicles directly exposed to inorganic cadmium in vitro, and this was accompanied by an inhibition of both $Na^{+}$-dependent ${\alpha}$KG uptake and ${\alpha}$KG-PAH exchange activity. These results indicate that during chronic exposure to cadmium, free cadmium ions liberated in the proximal tubular cytoplasm directly interact with the basolateral membrane and impair the active transport capacity for organic anions, most likely due to an inhibition of both $Na^{+}$-dicarboxylate cotransporter and dicarboxylate-organic anion antiporter activities.
Kim, Yong-Keun;Kim, Tae-In;Jung, Jin-Sup;Lee, Sang-Ho
The Korean Journal of Physiology
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v.25
no.2
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pp.179-188
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1991
Effect of a sulfhydryl reagent, p-chloromercuribenzoic acid (PCMB), on the transport of succinate was studied in brush border (BBMV) and basolateral (BLMV) membrane vesicles isolated from rabbit renal cortex. PCMB induced an irreversible inhibition of the $Na^+-dependent$ succinate uptake in a dose-dependent manner with $IC_{50}$ of 55 and $65\;{\mu}M$ in BBMV and BLMV, respectively. The inhibitory effect of PCMB was prevented by a pretreatment of vesicles with dithiothreitol. PCMB did not increase $Na^+$ permeability at concentrations inhibiting succinate uptake. The PCMB inhibition of succinate uptake was due to a change in Vmax, but not in Km. When membrane vesicles were pretreated with PCMB in the presence of unlabelled succinate, the inhibitory effect was significantly reduced. In both BBMV and BLMV, succinate uptake was inhibited by various sulfhydryl reagents with the inhibitory potency of following order: $HgCl_2$>DTNB>PCMBS>PCMB. These results suggest that sulfhydryl groups are essential for dicarboxylate transport and that they may be located at or near substrate binding sites of the transporters in renal brush border and basolateral membranes.
Effect of cadmium (Cd) intoxication on renal acid-base regulation was studied in adult male Sprague-Dawley rats. Cd intoxication was induced by subcutaneous injections of $CdCl_2$ at a dose of 2 mg Cd/kg/day for $3{\sim}4$ weeks. In Cd-intoxicated animals, arterial pH, $PCO_2$ and plasma bicarbonate concentration decreased, showing a metabolic acidosis. Urine pH and urinary bicarbonate excretion increased and titratable acid excretion decreased with no change in ammonium excretion. In renal cortical brush-border membrane vesicles derived from Cd-exposed animals, the $Na^+/H^+$ antiporter activity was significantly attenuated. These results indicate that chronic exposures to Cd impair the proximal tubular mechanism for $H^+$ secretion (i.e., $Na^+/H^+$ antiport), leading to a metabolic acidosis.
The temperature dependence of $Na^+-dependent$ succinate uptake was studied in brush border (BBMV) and basolateral (BLMV) membrane vesicles isolated from the rabbit kidney cortex. The succinate uptake was markedly altered by temperature in a similar fashion in both membranes. The temperature dependence was characterized by a nonlinear Arrhenius plot with a break point at 22 and $25^{\circ}C$ for BBMV and BLMV, respectively. The activation energy was 3.91 and 17.09 kcal/mole at above and below the break point respectively, far BBMV; 2.65 and 14.05 kcal/mole, respectively, for BLMV. When temperature increased f개m 20 to $35^{\circ}C$, the Vmax of succinate transport increased from $3.49{\pm}0.11\;to\;5.90{\pm}0.86\;nmole/mg/5\;sec$ for BBMV and from $2.86{\pm}0.25\;to\;3.63{\pm}0.32\;nmole/mg/5\;sec$ for BLMV, with no change in Km in both membranes. These results suggest that renal dicarboxylate transport is similarly sensitive to a change in membrane physical state in BBMV and BLMV.
A Physiologically based pharmacokinetic model was used to describe the distribition and elimination of cefriazone in the rat. To validate the practical application of the model, the effect of cffeine on the model was also examined. The model consisted of eleven compartments representing the major sites for ceftriaxone distribution including carcass which served as a residual compartment. Elimination was represented by renal and hepatic (metabolic biliary )excretion with GI secretion and re-absorption. The drug concentrations in most of the tissues were simulated using flow limited equations while brain levels were simulated using membrane limited passive diffusion distribution. The experimental data were obtained by averaging the concentration of drug in the plasma and tissues of five rats after i. v. injection of cefriazone 100 mg/kg without and with caffeine 20 mg/kg. The data for the amount of ceftriazone excreted in urine and gut contents were used to apportion total body clearance. HPLC with UV detection was used for the assay with 0.1-0.2 $\mu$g/ml sensitivity. The great majority of drug concentrations with and without caffeine show reasonably good agreements to the simulation results within 20%. The effect of caffeine on renal and hepatic clearances was apparent with 18.8% and 18.6% increase in the model values, respectively.
Lipopolysaccharide (LPS) endotoxin is an active component in the outer membrane of Gram-negative bacteria. LPS is usually used as an inflammatory animal model. During the inflammation, diarrhea and changes in plasma proteins, in hepatic and/or intestinal microsomal cytochrome P450 (CYP) isozymes, and in the renal and/or biliary excretion of drugs have been reported. Thus, in rats pretreated with lipopolysaccharide endotoxin isolated from Klebsiella pneumoniae (KPLPS rats), the absorption, distribution, metabolism, and excretion of drugs could be expected to be altered. Interestingly time-dependent effects on the hepatic CYP isozymes have been reported in KPLPS rats. Thus, in KPLPS rats, the pharmacokinetics of drugs which are mainly metabolized via CYP isozymes could be expected to be time-dependent. In this review, an attempt to explain changes in pharmacokinetics of drug reported in the literature was made in terms of CYP isozyme changes or urinary and/or biliary excretion changes in KPLPS rats.
흰쥐의 신피질 세포막과 소포체 막을 분리하여 카드를 및 Metallothioneln(MT)을 투여하였을 때 세포막에 존재하는 Ca-ATPase에 미치는 영향을 측정하여 다음과 같은 결과를 얻었다. 전기영동상에서 분리된 MT가 분자량 12KD 정도의 위치에 band가 나타났으며, 분리한 각 세포의 막에 카드윰을 농도별로 처리하였을 때 고농도일수록 Ca-ATPase의 활성도가 감소하였으나, MT를 처리한 경우 신피질 세포막은 거의 대조군과 유사한 결과를 나타냈고, 소포체 막에 MT를 처리한 경우는 20mg/ml의 카드윰을 처리한 경우와 유사하였다. 이와같은 결과로 보아 카드윰은 세포막의 Ca-ATPase의 활성을 저하시켜 세포내 칼슘 항상성에 영향을 미치는 MT는 Ca-ATPase의 활성을 회복시켜 카드뮴에 의한 세포독성의 방어작용에 부분적으로 작용한 것으로 생각된다.
Cis-dichlorodiammine platin${\mu}M$II (Cisplatin), an effective chemotherapeutic agent, induces acute renal failure by unknown mechanisms. To investigate direct toxic effects of cisplatin on the renal proximal tubular transport system, LLC-$PK_1$ cell line was selected as a cell model and the sugar transport activity was evaluated during a course of cisplatin treatment. Cells grown to confluence were treated with cisplatin for 60 min, washed, and then incubated for up to 5 days. At appropriate intervals, cells were tested for sugar transport activity using ${\alpha}-methyl-D-[^{14}C]glucopyranoside$ (AMG) as a model substrate. In cells treated with 100 ${\mu}M$ cisplatin, the AMG uptake was progressively impaired after 3 days. The viability of cells was not substantially changed with cisplatin of less than 100 ${\mu}M$, but it decreased markedly with 150 and 200 ${\mu}M$. In cisplatin-treated cells, the $Na^+$ -dependent AMG uptake was drastically inhibited with no change in the $Na^+$ -independent uptake. Kinetic analysis indicated that Vmax was suppressed, but Km was not altered. The $Na^+$ -dependent phlorizin binding was also decreased in cisplatin-treated cells. However, the AMG efflux from preloaded cells was not apparently retarded by cisplatin treatment. These data indicate that the cisplatin treatment impairs $Na^+$ -hexose cotransporters in LLC-$PK_1$ cells and suggest strongly that defects in transporter function at the luminal plasma membrane of the proximal tubular cells constitute an important pathogenic mechanism of cisplatin nephrotoxicity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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