The metabolic pathway synthesis algorithm was applied to estimate the maximum ethanol yield from xylose in a model recombinant Saccharomyces cerevisiae strain containing the genes involved in xylose metabolism. The stoichiometrically independent pathways were identified by constructing a biochemical reaction network for conversion of xylose to ethanol in the recombinant S. cerevisiae. Two independent pathways were obtained in xylose-assimilating recombinant S. cerevisiae as opposed to six independent pathways for conversion of glucose to ethanol. The maximum ethanol yield from xylose was estimated to be 0.46 g/g, which was lower than the known value of 0.51 g/g for glucose-fermenting and wild-type xylose-fermenting yeasts.
YOO, DONGWAN;ICK-DONG YOO;YOUNG-HO YOON;FRANK L GRAHAM;LORNE A. BABIUK
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제2권3호
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pp.174-182
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1992
The hemagglutinin-esterase glycoprotein (HE) gene of bovine coronavirus, coupled with a simian virus 40 early promoter and polyadenylation signal, was inserted into a human adenovirus transfer vector. The transfer vector was used to co-transfect 293 cells along with adenovirus genomic DNA. The hemagglutinin-esterase transcription unit was rescued into the adenovirus genome by homologous in vivo DNA recombination between the vector plasmid DNA and the adenovirus genomic DNA, and a recombinant adenovirus was isolated by several rounds of plaque assays. Thus the recombinant adenovirus carries the hemagglutinin-esterase gene in the early transcription region 3 (E3) of the adenovirus genome in the parallel orientation to the E3 transcription. The recombinant adenovirus synthesized the HE polypeptide in HeLa cells as demonstrated by immunoprecipitation with anti-coronavirus rabbit antisera. The recombinant HE polypeptide could be labelled by $[^3H]$glucosamine, demonstrating that the recombinant HE was glycosylated. Cells expressing the HE polypeptide exhibited hemadsorption activity when incubated with mouse erythrocytes. The HE was transported to the plasma membrane as shown by the cell surface immunofluorescence, indicating that the recombinant HE polypeptide retained its biological activities. Potential for the use of infectious recombinant adenovirus as a live virus-vectored vaccine candidate for bovine coronavirus disease is discussed.
Membrane-type 1 matrix metalloproteinase (MT1-MMP) is a membrane-associated zinc-dependent endoproteinase involved in extracellular matrix remodeling. MT1-MMP hydrolyzes ECM proteins like collagen and is involved in cancer cell migration and metastasis. Caveolins are integral membrane proteins and play a role in formation of caveolae, specialized membrane microdomains involved in clathrin-independent endocytosis. Recombinant MT1-MMP was transiently expressed in PANC-1 cells. Cells expressing recombinant MT1-MMP were able to hydrolyze collagen and migrate on collagen coated trans-well. Both subjacent collagen degradation and the cell migration conferred by recombinant MT1-MMP were inhibited by co-transfection of plasmids containing caveolin-1 cDNA. The results support that MT1-MMP is localized in lipid raft of the membrane and MT1-MMP activities in invasive cells could be inhibited by caveolin.
Je, Yeon-Ho;Jin, Byung-Rae;Roh, Jong-Yul;Chang, Jin-Hee;Kang, Seok-Kwon
대한바이러스학회지
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제29권3호
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pp.145-153
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1999
We have now constructed a novel recombinant baculovirus Autographa californica nuclear polyhedrosis virus (AcNPV) producing polyhedra with Bacillus thuringiensis (Bt) CryIAc crystal protein. The recombinant polyhedra produced by the recombinant baculovirus, Btrus, in insect cells was characterized. The recombinant baculovirus has two independent transcription units in opposite orientations with two promoters, p10 or polyhedrin gene promoter each initiating transcription of either native polyhedrin or fusion protein with polyhedrin and Bt Cry1Ac crystal protein. Surprisingly, this recombinant baculovirus stably produced recombinant polyhedra which were nearly similar to those of wild-type AcNPV. The immunogold staining experiment showed that the recombinant polyhedra were assembled with polyhedrin and Bt Cry1Ac crystal protein, and contained virus particles. Insecticidal toxicity of recombinant polyhedra of Btrus to the fall webworm, Hyphantria cunea, was strikingly improved in comparison with the wild-type AcNPV.
This report describes a high-level expression of human alpha-2a interferon ($IFN{\alpha}-2a$) in Escherichia coli and its pilot scale purification by using a monoclonal antibody-independent chromatographic procedure that is based on anion-exchange, cation-exchange, hydrophobic interaction, and gel filtration. The recombinant E. coli produced much more $IFN{\alpha}-2a$ in a soluble form, when cultivated at low temperatures than at high-temperature fermentation. However, if the bacterial growth was taken into consideration, fermentation at $30^{\circ}C$ seemed optimal for the interferon production. By using our new protocol, we recovered approximately 160 mg of $IFN{\alpha}-2a$ with a specific activity of $3.59{\times}10^8$ IU/mg from 201 of the broth. The gel permeation chromatographic and SDS-PAGE indicated that the interferon preparation was purified to homogeneity and was of the correctly folded fast-migrating monomer.
Five independent Actinomycetes harboring plasmids were isolated from soil. Molecular weight of these plasmids was 55kb, 6.2kb, 4.4kb, 55kb and 7.0kb, respectively. Among them small and apprent high copy number plasmids, pJY501 of 4.4kb and pHY711 of 7.0kb, were selected. The plasmids purified by CsCl-EtBr density gradient centrifugation preserved the conformation of supercoiled covalently closed circular molecule, and an apparent copy number was estivated about 150 and about 35 per chromosome. The isolates carrying plasmids were assigned to the genus Streptomyces. For the purpose of introducing selection markers into the isolated plasmids, the tsr fragmemt of pIJ702 was inserted into the BclI site of pJY 501 and pJY711. And the recombinant plasmids constructed designated as pJY502 and pJY712 respectively.
PARK, HEE-SEOP;KANG, SEUNG-HOON;PARK, HYUN-JOO;KIM, EUNG-SOO
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제15권1호
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pp.66-71
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2005
Doxorubicin is a clinically important anticancer polyketide compound that is typically produced by Streptomyces peucetius var. caesius. To improve doxorubicin productivity by S. peucetius, a doxorubicin pathway-specific regulatory gene, dnrI, was cloned into a high-copy-number plasmid containing a catechol promoter system. The S. peucetius containing the recombinant plasmid exhibited approximately 9.5-fold higher doxorubicin productivity compared with the wild-type S. peucetius. The doxorubicin productivity by this recombinant S. peucetius strain was further improved through the optimization of culture media composition. Based on the Fractional Factorial Design (FFD), cornstarch, $K_2HPO_4$, and $MgSO_4$ were identified to be the key factors influencing doxorubicin productivity. The Response Surface Method (RSM) results based on 20 independent culture conditions with varying amounts of key factors predicted the highest theoretical doxorubicin productivity of 11.1 mg/l with corn starch of 46.33 g/l, $K_2HPO_4$ of 4.63 g/l, and $MgSO_4$ of 9.26 g/l. The doxorubicin productivity of the recombinant S. peucetius strain with the RSM-based optimized culture condition was experimentally verified to be 11.46 mg/l, which was approximately 30.8-fold higher productivity compared with the wild-type S. peucetius without culture media optimization.
PARK JUNHO;YU SUNGRYUL;YOON JAESEUNG;BAEK KWANGHEE
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제15권6호
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pp.1397-1401
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2005
Bone morphogenetic protein-4 (BMP-4) is a signaling homodimeric molecule that acts as a morphogen to influence cell fate in a concentration-dependent manner. The limited supply of a pure preparation of BMP-4, due to very low level of their expression in vivo, makes it difficult not only to study the biological activities of BMPs, but also to use them as a clinical tool. For a large-scale production of BMP-4, human BMP-4 cDNA was expressed in Chinese hamster ovary (CHO) cells by a recently development vector system, which confers position-independent stable expression of the foreign genes. The CHO cell line expressing recombinant human BMP-4 (rhBMP-4) at the level of $7\;{\mu}g/ml$ could be obtained after stepwise selection with methotrexate. This level of expression is about 70 times higher than those previously reported. The partially processed form of BMP-4 as well as mature form could be detected, when the aliquots of culture media were analyzed by Western blot. The glycosylation pattern and biological activity of the rhBMP-4 were determined by glycosidase treatment and the induction rate of alkaline phosphatase in mouse osteoblastic cells.
Park, Hye-Jin;Lee, Kwang-Sik;Cho, Eun-Sook;Yun, Eun-Young;Kang, Seok-Woo;Kim, Keun-Young;Sohn, Hung-Dae;Jin, Byung-Rae
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제2권1호
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pp.19-26
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2001
Transformed Spodoptera frugiperda (Sf9) cells expressing baculovirus very late factor (VLF-1) were constructed by using Autograha nuclear polyhedrosis virus (AcNPV) immediate earthy gene (ie1). Neomycin-resistance gene as a selectable marker was introduced under the control of AcNPV ie1 promoter, and Bombyx mori nuclear polyhedrosis (BmNPV-K1) vlf-1 gene was introduced under the control of the Drosophila heat shock protein gene (hspr70) promoter to yield dual expression plasmid with two independent transcription units. It was transfected into Sf9 cells and cell clones expressing vlf-1 were selected by G4l8 treatment. Genomic DNA from transformed cells was isolated and integration of AcNPV iel harboring vlf-1 was confirmed by PCR using AcNPV iel-specific primers and Southern blot analysis. The transformed cells expressing VLF-1 in an infection-independent manner expressed foreign gene product of recombinant baculovirus in the earlier stage of infection compared with control Sf9 cells. These results suggest the possible to develop highly efficient transformed insect cells for baculovirus expression vector system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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