Lee Sang-Bae;Kim Hyun-Kyung;Oh Ho-Kyun;Hong Yong-Kil;Joe Young-Ae
Biomolecules & Therapeutics
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제14권1호
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pp.30-35
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2006
Tissue-type plasminogen activator (t-PA) is a multidomain serine protease containing two kringle domains, TK1-2. Previously, Pichia-derived recombinant human TK1-2 has been reported as an angiogenesis inhibitor although t-PA plays an important role in endothelial and tumor cell invasion. In this work, in order to improve in vivo efficacy of TK1-2 through elimination of immune reactivity, we mutated wild type TK1-2 into non-glycosylated form (NE-TK1-2) and examined whether it retains anti-angiogenic activity. The plasmid expressing NE-TK1-2 was constructed by replacing $Asn^{l17}\;and\;Asn^{184}$ with glutamic acid residues. After expression in Pichia pastoris, the secreted protein was purified from the culture broth using S-sepharose and UNO S1-FPLC column. The mass spectrum of NE-TK1-2 showed closely neighboring two peaks, 19631.87 and 19,835.44 Da, and it migrated as one band in SDS-PAGE. The patterns of CD-spectra of these two proteins were almost identical. Functionally, purified NE-TK1-2 was shown to inhibit endothelial cell migration in response to bFGF stimulation at the almost same level as wild type TK1-2. Therefore, the results suggest that non-glycosylated NETK1-2 can be developed as an effective anti-angiogenic and anti-tumor agent devoid of immune reactivity.
Park, Joon-Woo;Kim, Do-Hee;Ahn, Hye-Na;Song, Yun-Seon;Lee, Young-Joo;Ryu, Jae-Ha
Biomolecules & Therapeutics
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제20권2호
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pp.183-188
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2012
In this study, we examined the estrogenic activity of bavachin, a component of Psoralea corylifolia that has been used as a traditional medicine in Asia. Bavachin was purified from ethanolic extract of Psoralea corylifolia and characterized its estrogenic activity by ligand binding, reporter gene activation, and endogenous estrogen receptor (ER) target gene regulation. Bavachin showed ER ligand binding activity in competitive displacement of [$^3H$] $E_2$ from recombinant ER. The estrogenic activity of bavachin was characterized in a transient transfection system using $ER{\alpha}$ or $ER{\beta}$ and estrogen-responsive luciferase plasmids in CV-1 cells with an $EC_{50}$ of 320 nM and 680 nM, respectively. Bavachin increased the mRNA levels of estrogen-responsive genes such as pS2 and PR, and decreased the protein level of $ER{\alpha}$ by proteasomal pathway. However, bavachin failed to activate the androgen receptor in CV-1 cells transiently transfected with the corresponding receptor and hormone responsive reporter plasmid. These data indicate that bavachin acts as a weak phytoestrogen by binding and activating the ER.
Paratuberculosis (Johne's disease), a chronic enteritis produced by Mycobacterium paratuberculosis, affects a large proportion of ruminants in all continents and causes important economic losses. The identification of well-characterized and species-specific components of M paratuberculosis would provide the means to improve the specificity and sensitivity of immunodiagnostic assays for Johne's disease. The aims of this study were to express the recombinant C-terminal of 34kDa protein (rC34P) of M paratuberculosis in E coli and to investigate the effectiveness of this protein in detecting antibodies to the native protein in sera from paratuberculosis infected cattle. The C-terminal of the gene encoding the 34kDa protein was amplified by polymerase chain reaction from the chromosomal DNA of M paratuberculosis (ATCC 19698) and cloned into vector pGEX-4T-2. Then, cloned plasmid was transformed into E coli DH5${\alpha}$ and the rC34P was overexpressed. The rC34P was purified by affinity chromatography and gel filtration. The rC34P was examined antigenicity by Western blot. The rC34P was reactive with culture positive bovine serum and hyperimmune rabbit anti-M paratuberculosis serum but was not reactive with culture negative bovine serum and tuberculin positive bovine serum in Western blot. In conclusion, the rC34P produced in this study is expected as a useful candidate for antigen in serological diagnosis of Johne's disease.
Shigella sonnei 는 인체의 장내 감염을 일으키는 병원균의 일종이며, 본 연구에 사용된 S.sonnei KNIH104S는 국내에서 쉬겔라증을 나타내는 환자로부터 분리하였다. S. sonnei KNIH104s의 염색체로부터 aspartate $\beta$-semial-dehyde dehydrogenase를 암호화하는 asd 유전자를 포함하는 1.7 kb BamHI 절편을 pBluescript SK(+) 벡터를 이용하여 클로닝하였으며 pSAB17이라 명명하였다. asd 결실돌연변이주인 E.coli $\chi$6097은 세포벽을 구성하는 중요한 성분인 DL-$\alpha$, $\varepsilon$-diaminopimelic acid가 없는 Luria-Bertani 배지에서 생장함을 확인하였다. 클로닝된 asd 유전자의 염기서열 분석결과 ATG 개시코돈 및 TAA 종결코돈을 지니는 1,104 bp 로 이루어져 있으며, 여기서 유추한 아미노산은 367개로 분자량 40.0 kDa 의 폴리펩타이드를 만들어내고 있다. 염기서열은 대장균의 asd 유전자와 한 부위에서 다르게 나타났지만 아미노산의 서열은 동일함을 알 수 있었다. 그리고 pBluescript SK(+) 벡터와 본 연구에서 클로닝된 asd 유전자를 이용하여 balanced-lethal vector인 pSKA47 및 pSKA47A를 제조하였다.
Kim, Chi-Kyung;Park, Sang-Ho;Lim, Jai-Yun;Kim, Young-Chang;Kim, Youngsoo;Min, Kyung-Hee;Lee, Ki-Sung
Journal of Microbiology
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제34권2호
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pp.144-150
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1996
During growth of the genetically engineered E. coli CU103 in different media, extracellular DNAs released from the cells were studied. The extracellular DNAs released in the medium were concentrated by an thanol precipitation method and then quantified by a fluorescence method using Hoechst 33258. The released extracellular DNAs were also examined by gel electrophoresis and identified by Southern hybridization for the cloned pcbCD genes. The chromosomal DNAs and recombinant plasmid containing the cloned genes were observed to be released in an exponential growth phase. In Luria-Bertani (LB) broth and MM2-GLUCOSE, 210 and 69 ng/ml of DNAs were detected, respectively, after 3-4 days incubation at $30^{\circ}C$ and at pH 7.0. But the released DNAs were measured to be about 10-15 ng/ml in filtered river water (FW) and Tris-EDTA (TE). The at both $15^{\circ}C$ and $4^{\circ}C$, but the released DNAs were more easily degraded at the higher temperature. The extracellular DNAs were produced about 2 times more at pH 7.0 than at both pH 5.0 and pH 9.0 in MM2-glucose medium at $30^{\circ}C$. Therefore, the extracellular DNAs were found to be released actively from the cells during growth in liquid media.
사람의 serine palmitoyltransferase(SPT, EC 2.3.1.50)에 대한 항체를 제작하기 위하여 E. coli발현 vector인 pRset vector에 SPTLC1 및 SPTLC2 유전자를 subcloning하고 BL21 (DE3)pLys cell에 발현시켰다. 포유동물의 SPT는 원핵세포의 SPT homodimer와는 달리 SPTLC1 및 SPTLC2 2개의 sub-unit로 된 heterodimer이다. Human embryo kidney cell인 HEK293 cell의 total RNA로부터 RT-PCR을 행하여 cDNA library를 얻은 다음 SPTLC1 및 SPTLC2의 특이적인 primer 들을 이용하여 PCR을 행하였다. SPTLC1 및 SPTLC2 DNA를 hexahistidine fusion 단백질을 발현시킬 수 있는 pRset vector에 cloning하여 pRsetB/SPTLC1 및 pRsetA/SPTLC2를 얻고 염기서열을 확인하였다. 재조합 plasmid를 발현세포인 BL21 cell에 형질전환시킨 다음 ampicillin 및 chroramphenicol 배지에서 선별하여 재조합세포를 얻었다. 1 mM IPTG로서 발현을 유도하였으며 세포 단백질을 SDS-PAGE로 분리한 다음 His-tag antibody로 western blotting을 행하여 SPTLC 및 SPTLC2가 발현되었음을 확인하였다.
The cloning and expression of $\beta-glucosidase$ II, encoded by the gene ${\beta}glu2$, from thermotolerant yeast Pichia etchellsii into Escherichia coli is described. Cloning of the 7.3 kb BamHI/SalI yeast insert containing ${\beta}glu2$ in pUC18, which allowed for reverse orientation of the insert, resulted in better enzyme expression. Transformation of this plasmid into E. coli JM109 resulted in accumulation of the enzyme in periplasmic space. At $50^{\circ}C$, the highest hydrolytic activity of 1686 IU/g protein was obtained on sophorose. Batch and fed-batch techniques were employed for enzyme production in a 14 L bioreactor. Exponential feeding rates were determined from mass balance equations and these were employed to control specific growth rate and in turn maximize cell growth and enzyme production. Media optimization coupled with this strategy resulted in increased enzyme units of 1.2 kU/L at a stabilized growth rate of $0.14\;h^{-l}$. Increased enzyme production in bioreactor was accompanied by formation of inclusion bodies.
Single base substitution and deletion mutation have been introducted into the verotoxin 2 (VT2)A subunit gene from O157:H7 isolates to reduce cytotoxicity of VT2 and the cytotoxicity between wild type toxin and mutant toxoid were compared. A M13-derived recombinant plasmid pEP19RF containing a 940bp EcoRI-PstI fragment of VT2A gene was constructed for oligonucleotide-directed mutagenesis. The duoble mutant pDOEX was constructed by point and deletion mutation of two different highly conserved regions of VT2A encoding active site cleft of enzymatic domain. The key residue, Glu 167(GAA) and the pentamer(WGRIS) consisting of the enzymatic domain were replaced by ASP(GAC) and completely deleted in nucleotide sequence analysis of mutant, respectively. In the comparision of vero cell cytotoxicity between wide type toxin and toxoid from mutant, the wild type toxin expressed cytotoxicity in dilution of $10^{-6}$, but the toxid from mutant did not show cytotoxicity to vero cells.
A balance between production and degradation of reactive oxygen species (ROS) is critical for maintaining cellular homeostasis. Increased levels of ROS during oxidative stress are associated with disease conditions. Antioxidant enzymes, such as extracellular superoxide dismutase (EC-SOD), in the extracellular matrix (ECM) neutralize the toxicity of superoxide. Recent studies have emphasized the importance of EC-SOD in protecting the brain, lungs, and other tissues from oxidative stress. Therefore, EC-SOD would be an excellent therapeutic drug for treatment of diseases caused by oxidative stress. We cloned both the full length (residues 1-240) and truncated (residues 19-240) forms of human EC-SOD (hEC-SOD) into the donor plasmid pFastBacHTb. After transposition, the bacmid was transfected into the Sf9-baculovirus expression system and the expressed hEC-SOD purified using FLAG-tag. Western blot analysis revealed that hEC-SOD is present both as a monomer (33 kDa) and a dimer (66 kDa), as detected by the FLAG antibody. A water-soluble tetrazolium (WST-1) assay showed that both full length and truncated hEC-SOD proteins were enzymatically active. We showed that a potent superoxide dismutase inhibitor, diethyldithiocarbamate (DDC), inhibits hEC-SOD activity.
Even though neutralizing antibodies against the Hantaan virus (HTNV) has been proven to be critical against viral infections, the cellular immune responses to HTNV are also assumed to be important for viral clearance. In this report, we have examined the cellular and humoral immune responses against the HTNV nucleocapsid protein (NP) elicited by virus infection or DNA vaccination. To examine the cellular immune response against HTNV NP, we used $H-2K^b$ restricted T-cell epitopes of NP. The NP-specific $CD8^+$ T cell response was analyzed using a $^{51}Cr-release$ assay, intracellular cytokine staining assay, enzyme-linked immunospot assay and tetramer binding assay in C57BL/6 mice infected with HTNV. Using these methods, we found that HTNV infection elicited a strong NP-specific $CD8^+$ T cell response at eight days after infection. We also found that several different methods to check the NP-specific $CD8^+$ T cell response showed a very high correlation among analysis. In the case of DNA vaccination by plasmid encoding nucleocapsid gene, the NP-specific antibody response was elicited $2\~4$ weeks after immunization and maximized at $6\~8$ weeks. NP-specific $CD8^+$ T cell response reached its peak 3 weeks after immunization. In a challenge test with the recombinant vaccinia virus expressing NP (rVV-HTNV-N), the rVV-HTNV-N titers in DNA vaccinated mice were decreased about 100-fold compared to the negative control mice.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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