Application of vaccine materials through oral mucosal route confers great economical advantage in animal farming industry due to much less vaccination cost compared with that of injection-based vaccination. In particular, oral administration of recombinant protein antigen against foot-and- mouth disease virus (FMDV) is an ideal strategy because it is safe from FMDV transmission during vaccine production and can induce antigen-specific immune response in mucosal compartments, where FMDV infection has been initiated, which is hardly achievable through parenteral immunization. Given that effective delivery of vaccine materials into immune inductive sites is prerequisite for effective oral mucosal vaccination, M cell-targeting strategy is crucial in successful vaccination since M cells are main gateway for luminal antigen influx into mucosal lymphoid tissue. Here, we applied previously identified M cell-targeting ligand Co1 to VP1 of FMDV in order to test the possible oral mucosal vaccination against FMDV infection. M cell-targeting ligand Co1-conjugated VP1 interacted efficiently with M cells of Peyer's patch. In addition, oral administration of ligand-conjugated VP1 enhanced the induction of VP1-specific IgG and IgA responses in systemic and mucosal compartments, respectively, in comparison with those from oral administration of VP1 alone. In addition, the enhanced VP1-specific immune response was found to be due to antigen-specific Th2-type cytokine production. Collectively, it is suggested that the M cell-targeting strategy could be applied to develop efficient oral mucosal vaccine against FMDV infection.
Transgenic rice cells using RAmy3D promoter can provide high productivity, and the production of recombinant protein is induced by sugar starvation. In this system, productivity was reduced during the scale-up processes. To ensure the influences of shear stress and oxygen transfer rate, working volume and mixing performances were investigated under various agitation speeds and working volumes. In addition, inoculation methods including suspended cells and filtered cells were compared. Working volumes and shaking speeds were 300, 450 mL and 80, 120 rpm, respectively. Hydrodynamic environment of each condition was measured numerically like mixing time and $k_La$. Good mixing performance and high shear stress were measured at high agitation speed and low volume. The highest level of hCTLA4Ig was 30.7 mg/L at 120 rpm, 300 mL. When conditioned medium was used for inoculation, increased cell growth was noticed during the day 0~4 and decreased slower than filtered cells. Compared with filtered cells, the maximum hCTLA4Ig level reached 37.8 mg/L at 120 rpm, 300 mL and lower protease activity level was observed. In conclusion mixing performance is critical factor for productivity and conditioned medium can have a positive effect on damaged cells caused by hydrodynamic shear stress.
The production of Streptomyces griseus trypsin (SGT) by S. griseus IFO13350 transformed with the expression vector pWHM3-TR1R2, containing sprT encoding SGT and the two positive regulatory genes sgtR1 and sgtR2, was investigated in various media. Cultivation in Ferm-0 gave 1.4 times more trypsin activity than in C5/L medium. In addition, replacement of 2% glucose and 1% skim milk in Ferm-0 with 2% dextrin and 1% tryptone (designated Ferm-II) enhanced trypsin activity 4.1-fold. To simplify the purification process, the supernatant from the S. griseus transformant cultured in Ferm-II medium was fractionated with ammonium sulfate (25-55%), then subjected to Hitrap Benzamidine FF affinity column chromatography. The specific activity of SGT purified by one-step chromatography was 69,550 unit/mg protein and the overall purification yield was above 8%, indicating that this method is more effective than those previously reported. Purified SGT was most active at pH 8.0 and $50^{\circ}C$, and it maintained activity between pH 7.0 and 9.0 and at temperatures up to $70^{\circ}C$. These enzymatic properties are very similar to those of authentic eukaryotic trypsin purified from bovine pancreas.
The objective of the present study was to determine the effect of exogenous bovine somatotropin on the mammary function in late lactating crossbred Holstein cows. Twelve 87.5% late lactating Holstein cows, approximately 30 weeks postpartum, were divided into two groups of 6 animals each. Animals in the control group were given sodium bicarbonate buffer by subcutaneous injection, while animals in the treated group were given recombinant bovine somatotropin (bST) by subcutaneous injection with 500 mg of bST (14 day prolonged-release bST). After bST injection, milk yield significantly increased from the control level on day 8 to day 20 (p<0.05) with a concomitant increase in mammary blood flow (p<0.01). An increase in mammary blood flow in response to bST treatment was greater than an increase in milk production. An increased plasma concentration of IGF-I coincided with an increase in mammary blood flow in animals treated with bST. There were no significant changes in the concentration of arterial plasma glucose concentration, the arteriovenous concentration difference (A-V difference) and mammary extraction ratio while the mammary glucose uptake increased when compared to the control group. The concentration of arterial plasma triglyceride decreased throughout the experimental period in animals give bST. The plasma concentration of acetate, and the mammary uptake for acetate significantly increased (p<0.05) after bST treatment. The action of bST did not affect the plasma concentration, A-V difference and extraction ratio across the mammary gland for $\beta$-hydroxybutyrate. The concentrations of milk fat and lactose tended to increase during bST treatment. Milk protein concentration initially increased in the first few days and decreased after bST injection when compared to the pretreated period. The present results indicated that bST could affect the mammary function in late lactating cows by increase in milk yield involving changes in both extra-mammary and intra-mammary mechanisms. The exogenous bST exerted its galactopoietic action through an increase in circulating IGF-I of the late lactating Crossbred Holstein cattle.
A maltogenic amylase gene from Lactobacillus gasseri ATCC33323 (LGMA) was expressed in Lactococcus lactis MG1363 using the P170 expression system. The successful production of recombinant LGMA (rLGMA) was confirmed by the catalytic activity of the enzyme in liquid and solid media. The N-terminal amino acid sequencing analysis of the rLGMA showed that it was Met-Gln-Leu-Ala-Ala-Leu-, which was the same as that of genuine protein, meaning the signal peptide was efficiently cleaved during secretion to the extracellular milieu. The optimal reaction temperature and pH of rLGMA ($55^{\circ}C$ and pH 5, respectively) and enzymatic hydrolysis patterns on various substrates (${\beta}$-cyclodextrin, starch, and pullulan) supported that rLGMA was not only efficiently secreted from the Lactococcus lactis MG1363 but was also functionally active. Finally, the branched maltooligosaccharides were effectively produced from liquefied com starch, by using rLGMA secreted from Lactococcus lactis, with a yield of 53.1%.
To investigate a novel ${\beta}$-glucosidase from Bifidobacterium breve ATCC 15700 (BbBgl) to produce compound K (CK) via ginsenoside $F_2$ by highly selective and efficient hydrolysis of the C-3 glycoside from ginsenoside Rd, the BbBgl gene was cloned and expressed in E. coli BL21. The recombinant BbBgl was purified by Ni-NTA magnetic beads to obtain an enzyme with specific activity of 37 U/mg protein using pNP-Glc as substrate. The enzyme activity was optimized at pH 5.0, $35^{\circ}C$, 2 or 6 U/ml, and its activity was enhanced by $Mn^{2+}$ significantly. Under the optimal conditions, the half-life of the BbBgl is 180 h, much longer than the characterized ${\beta}$-glycosidases, and the $K_m$ and $V_{max}$ values are 2.7 mM and $39.8{\mu}mol/mg/min$ for ginsenoside Rd. Moreover, the enzyme exhibits strong tolerance against high substrate concentration (up to 40 g/l ginsenoside Rd) with a molar biotransformation rate of 96% within 12 h. The good enzymatic properties and gram-scale conversion capacity of BbBgl provide an attractive method for large-scale production of rare ginsenoside CK using a single enzyme or a combination of enzymes.
Recently, Psychrobacter sp. ArcL13 strain showing the extracellular lipase activity was isolated from the Chuckchi Sea of the Arctic Ocean. However, due to the low expression levels of the enzyme in the natural strain, the production of recombinant lipase is crucial for various applications. Identification of the gene for the enzyme is prerequisite for the production of the recombinant protein. Therefore, in the present study, a novel lipase gene (ArcL13-Lip) was isolated from Psychrobacter sp. ArcL13 strain by gene prospecting using PCR, and its complete nucleotide sequence was determined. Sequence analysis showed that ArcL13-Lip has high amino acid sequence similarity to lipases from bacteria of some Psychrobacter genus (84-90%) despite low nucleotide sequence similarity. The lipase gene was cloned into the bacterial expression plasmid and expressed in E. coli. SDS-PAGE analysis of the cells showed that ArcL13-Lip was expressed as inclusion bodies with a molecular mass of about 35 kDa. Refolding was achieved by diluting the unfolded protein into refolding buffers containing various additives, and the highest refolding efficiency was seen in the glucose-containing buffer. Refolded ArcL13-Lip showed high hydrolytic activity toward p-nitrophenyl caprylate and p-nitrophenyl decanoate among different p-nitrophenyl esters. Recombinant ArcL13-Lip displayed maximal activity at $40^{\circ}C$ and pH 8.0 with p-nitrophenyl caprylate as a substrate. Activity assays performed at various temperatures showed that ArcL13-Lip is a cold-active lipase with about 40% and 73% of enzymatic activity at $10^{\circ}C$ and $20^{\circ}C$, respectively, compared to its maximal activity at $40^{\circ}C$.
Severe acute respiratory syndrome (SARS) is a severe respiratory infectious disease caused by a novel human coronavirus, SARS-CoV. The 3CL protease is a key enzyme in the proteolytic processing of replicase polyprotein precursors, pp1a and pp1ab, which mediate all the functions required for viral genomic replication and transcription. Therefore, this enzyme is a target for the development of chemotherapeutic agents against SARS. A large quantity of active SARS-3CL protease is required for development of anti-SARS agents. Here we have constructed overexpression vector for the production of the SARS-3CL protease. The gene encoding SARS-3CL protease was amplified using polymerase chain reaction and cloned into the pET29a expression vector, resulting in pET29a/SARS-3CLP. Recombinant SARS-3CL protease was successfully synthesized by the dialysis mode of the cell-free protein expression system, and purified by three-step fast protein liquid chromatography using HighQ and MonoP column chromatographies and Sephacryl S-300 gel filtration. In addition, the produced SARS-3CL protease was found to be an active mature form. This study provides efficient methods not only for the development of anti-SARS materials from natural sources, but also for the study of basic properties of the SARS-3CL protease.
Vascular endotherial growth factor (VEGF) is a potent mitogen that stimulates vascular permeability and angiogenesis and has a potential in therapeutic applications. An industrial production method that provides high yield as well as purity is needed. Researches for various factors of mild solubilization with combination of ubiquitin fusion protein to increase solubility were carried out as well as by changing pH and denaturant concentration. Usage of pET28-a bacteral expression vector in BL21 (DE3) host cell was capable of producing approximately 14 g/L VEGF fusion protein in 20L fermentor. A purification process consisting of four chromatography steps including refolding and digestion with UBP1 resulted in mild solublization under the conditions of 2M urea and pH 10.0 due to ubiquitin fusion tag protein that increases in solubility of target protein VEGF. High yield of refolding and dimerization could be obtained between two step Ni-affinity chromatography. Multimeric and misfolded proteins and endotoxin were removed by DEAE anion exchange chromatography. Final monomers were removed from dimers by gel filtration chromatography. Characterization analysis of purified dimeric VEGF was performed using SDS-PAGE and RP-HPLC with a purity of 97%.
Avian influenza virus (AIV) is recognized as key to the emergence of pandemic influenza for humans; there are growing concerns that AIV H9N2 may become more efficient to transmit to humans in the near future, since the infection of poultry with AIV H9N2 has been common in recent years. In this study, we aimed to produce antisera recognizing the HA and NA proteins of AIV H9N2. Initially, coding sequences corresponding to the N-terminal regions of the HA and NA proteins of the Korean AIV H9N2 (A/Ck/Kr/MS96/96) isolated from a domestic chicken were amplified from the genomic RNA. Following cloning of the amplified cDNA fragments into pGEX4T-1 vector, two GST-fusion proteins (GST-HAln and GST-NAn) were expressed in E. coli BL21 and purified with glutathione sepharose columns; the recombinant GST-HAln and GST-NAn proteins were both used as immunogens in rabbits. The antigenicity of the rabbit antisera was analyzed by immunoblotting of the cell lysates prepared from AIV H9N2-infected MDCK cells. Overall, the recombinant HAln and NAn proteins fused to the C-terminus of GST and the rabbit antisera raised against the corresponding recombinant proteins would provide a valuable reagent for AIV diagnosis and basic research.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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