Park, Sun-Mi;Suh, Key-Hong;Kim, Jae-sung;Park, Youn-Il
Journal of Photoscience
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v.8
no.1
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pp.13-17
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2001
Cucumber leaves subjected to light chilling stress exhibit a preferential inactivation of photosystem(PS) I relative to PSII, resulting in the photoinhibition of photosynthesis. In light chilled cucumber leaves, Cu/Zn-Superoxide dismutase(SOD) is regarded as a primary target of the light chilling stress and its inactivation is closely related to the increased production of reactive oxygen species. In the present study, we further explored that inactivation of PSI in cucumber leaves is not a light chilling specific, but general to various oxidative stresses. Oxidative stress in cucumber leaves was induced by treatment of methylviologen(MV), a producer of reactive oxygen species in chloroplasts. MV treatment decreased the maximal photosynthetic O$_2$ evolution, resulting in the photoinhibition of photosynthesis. The photoinhibition of photosynthesis was attributable to the decline in PSI functionality determined in vivo by monitoring absorption changes around 820 nm. In addition, MV treatment inactivated both antioxidant enzymes Cu-Zn-superoxide dismutase and ascorbate peroxidase known sensitive to reactive oxygen species. From these results, we suggest that chloroplast antioxidant enzymes are the primary targets of photooxidative stress, followed by subsequent inactivation of PSI.
A soluble protein from Saccharomyces cerevisiae provides protection against a thiol-containing oxidation system but not against an oxidation system without thiol. This 25-kDa protein acts as a peroxidase but requires the NADPH-dependent thioredoxin system or a thiol-containing intermediate, and was thus named thioredoxin peroxidase. The protective role of thioredoxin peroxidase against ionizing radiation, which generates reactive oxygen species harmful tocellular function, was investigated in wild-type and mutant yeast strains in which the tsa gene encoding thioredoxin peroxidase was disrupted by homologous recombination. Upon exposure to ionizing radiation, there was a distinct difference between these two strains in regard to viability and the level of protein carbonyl content, which is the indicative marker of oxidative damage to protein. Activities of other antioxidant enzymes, such as catalase, superoxide dismutase, glucose-6-phosphate dehydrogenase, and glutathione reductase were increased at 200-600 Gy of irradiation in wild-type cells. However, the activities of antioxidant enzymes were not significantly changed by ionizing radiation in thioredoxin peroxidase-deficient mutant cells. These results suggest that thioredoxin peroxidase acts as an antioxidant enzyme in cellular defense against ionizing radiation through the removal of reactive oxygen species as well as in the protection of antioxidant enzymes.
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.22
no.5
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pp.1304-1308
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2008
This study was performed to evaluate the effect of persimmon leaves extract on the reactive oxygen species (ROS) in cultured melanoma cells. The B16/F10 melanoma cells were treated with various concentrations of t-butyl hydroperoxide (t-BHP). And also, the effect of persimmon leaves (PL) extract on the cytotoxicity mediated by t-BHP was done on the cell viability, tyrosinase activity and melanogenesis by colorimetric assays. In this study, t-BHP decreased cell viability in dose-dependent manner and XTT90 and XTT50 values were measured at 10 and 35 uM of PL, respectively in these culture. And also, XTT50 value was assessed as a highly toxic effect on cultured melanoma cells by the toxic criteria. In the effect of PL extract on the t-BHP-mediated cytotoxicity, PL extract significantly increased the cell viability injured by t-BHP in cultured B16/F10 melanoma cells. PL also showed the decreased tyrosinase activity and melanogenesis. From these results, it is suggested that ROS such as t-BHP showed highly toxic effect on cultured melanoma cells, and also, PL extract inhibited the tyrosinase activity and melanogenesis in cultured melanoma cells injured by ROS.
Although sanguinarine, a benzophenanthridine alkaloid, possesses anti-cancer properties against several cancer cell lines, the molecular mechanisms by which it inhibits cell growth and induces apoptosis have not been clearly understood. In order to further explore the critical events leading to apoptosis in sanguinarine-treated MCF-7 human breast carcinoma cells, the following effects of sanguinarine on components of the mitochondrial apoptotic pathway were examined: generation of reactive oxygen species (ROS), alteration of the mitochondrial membrane potential (MMP), and the expression changes of Bcl-2 family proteins. We show that sanguinarine-induced apoptosis is accompanied by the generation of intracellular ROS and disruption of MMP as well as an increase in pro-apoptotic Bax expression and a decrease of anti-apoptotic Bcl-2 and Bcl-xL expression. The quenching of ROS generation with N-acetyl-L-cysteine, the ROS scavenger, protected the sanguinarine-elicited ROS generation, mitochondrial dysfunction, modulation of Bcl-2 family proteins, and apoptosis. Based on these results, we propose that the cellular ROS generation plays a pivotal role in the initiation of sanguinarine-triggered apoptotic death.
Reactive oxygen species (ROS) are known to cause oxidative modification of DNA, proteins, lipids and small cellular molecules and are associated with tissue damage and are the contributing factors for inflammation, aging, cancer, arteriosclerosis, hypertension and diabetes. We screened the anti-oxidants in V79-4 hamster lung fibroblast cells induced by hydrogen peroxide with eighteen pure compounds isolated from natural products. Allantoin, brassicasterol, and hypaconitine were found to strongly scavenge intracellular reactive oxygen species, which is measured by dichlorodihydrofluorescin diacetate method (DCHF-DA), and 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) radical.
The aim of this study was to investigate the mechanisms underlying apoptosis induced by a broussochalcone B (BCB) from Broussonetia papyrifera in HepG2 cells. The results showed that BCB treatment for 24 hr significantly inhibited cell viability in a dose-dependent manner, and induced apoptosis in HepG2 cells. More so, BCB treatment triggered the cleavage of caspase-8, -9, -3, poly (ADP-ribose) polymerase (PARP), increase of Bax level, and decrease of Bcl-2 expression. A general caspase inhibitor (z-VAD-fmk) blocked BCB-induced cell death. Furthermore, BCB treatment caused reactive oxygen species (ROS) production in a dose-dependent manner. In addition, an antioxidant N-acetylcysteine (NAC) blocked BCB-induced ROS production and cell death. Therefore, these results indicate that BCB-induced apoptosis is mediated by a caspase dependent pathway and ROS production in HepG2 cells.
Cell migration plays a role in many physiological and pathological processes. Reactive oxygen species (ROS) produced in mammalian cells influence intracellular signaling processes which in turn regulate various biological activities. Here, we investigated whether melanoma cell migration could be controlled by ROS production under normoxia condition. Cell migration was measured by wound healing assay after scratching confluent monolayer of B16F10 mouse melanoma cells. Cell migration was enhanced over 12 h after scratching cells. In addition, we found that ROS production was increased by scratching cells. ERK phosphorylation was also increased by scratching cells but it was decreased by the treatment with ROS scavengers, N-acetylcysteine (NAC). Tumor cell migration was inhibited by the treatment with PD98059, ERK inhibitor, NAC or DPI, well-known ROS scavengers. Tumor cell growth as judged by succinate dehydrogenase activity was inhibited by NAC treatment. When mice were intraperitoneally administered with NAC, the intracellular ROS production was reduced in peripheral blood mononuclear cells. In addition, B16F10 tumor growth was significantly inhibited by in vivo treatment with NAC. Collectively, these findings suggest that tumor cell migration and growth could be controlled by ROS production and its downstream signaling pathways, in vitro and in vivo.
Thioredoxin reductase (TrxR), a component of the redox control system involving thioredoxin (Trx), is implicated in defense against oxidative stress, control of cell growth and proliferation, and regulation of apoptosis. In the present study a stable transfectant was made by introducing the vector pcDNA3.0 harboring the fission yeast TrxR gene into COS-7 African green monkey kidney fibroblast cells. The exogenous TrxR gene led to an increase in TrxR activity of up to 3.2-fold but did not affect glutathione (GSH) content, or glutaredoxin and caspase-3 activities. Levels of reactive oxygen species (ROS), but not those of nitric oxide (NO), were reduced. Conversely, 1-chloro-2,4-dinitrobezene (CDNB), an irreversible inhibitor of mammalian TrxR, enhanced ROS levels in the COS-7 cells. After treatment with hydrogen peroxide, the level of intracellular ROS was lower in the transfectants than in the vector control cells. These results confirm that TrxR is a crucial determinant of the level of cellular ROS during oxidative stress as well as in the normal state.
Previously, we have reported that apigenin, a natural flavonoid found in a variety of vegetables and fruits, stimulated melanogenesis through the activation of $K^+-Cl^-$-cotransport (KCC) in B16 melanoma cells. In this study we investigated the possible involvement of reactive oxygen species (ROS) in the mechanism of apigenin-induced melanogenesis in B16 cells. Apigenin elevated intracellular ROS level in a dose-dependent manner. Treatment with various inhibitors of NADPH oxidase, diphenylene iodonium (DPI), apocynin (Apo) and neopterine (NP) significantly inhibited both the generation of ROS and melanogenesis induced by apigenin. In addition these inhibitors profoundly inhibited apigenin-induced $Cl^-$-dependent $K^+$ efflux, a hallmark of KCC activity. However, the apigenin-induced ROS generation was not significantly affected by treatment with a specific KCC inhibitor R-(+)-[(2-n-butyl-6,7-dichloro-2-cyclopentyl-2,3-dihydro-1-oxo-1H-inden-5-yl)oxy]acetic acid (DIOA). These results indicate that the ROS production may be a upstream regulator of the apigenin-induced KCC stimulation, and in turn, melanogenesis in the B16 cells. Taken together, these results suggest that the NADPH oxidase-mediated ROS production may play an important role in the apigenin-induced melanogenesis in B16 cells. These results further suggest that NADPH oxidase may be a good target for the management of hyperpigmentation disorders.
Pathophysiological oxidative stress results in neuronal cell death mainly due to the generation reactive oxygen species (ROS). In low oxygen situation such as hypoxia and ischemia, excessive ROS is generated. Coptidis Rhizoma (CR) is a traditional medicine used for the incipient stroke. In this report we show that CR water extracts $(1\;{\mu}g/ml)$ exhibited protective effects of neuronal cell death in a hypoxic model (2% $O_2/5%\;CO_2,\;37^{\circ}C,$ 3 hr) of cultured rat cortical cells. We further show that CR water extracts significantly reduced the intensity of green fluorescence after staining with $H_2DCF-DA$ on one hour and three days after hypoxic shock and in normoxia as well. Our results indicate that CR water extracts prevent neuronal death by suppressing ROS generation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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