Gene-expression analysis is increasingly important in biological research, with real-time reverse PCR (RTPCR) becoming the method of choice for high-throughput and accurate expression profiling of selected genes. However, this technique requires important preliminary work for standardizing and optimizing the many parameters involved in the analysis. Plant stress studies are more and more based on gene expression. The analysis of gene expression requires sensitive and reproducible measurements for specific mRNA sequence. Several genes are regulated in response to abitoic stresses, such as salinity, and their gene products function in stress response and tolerance. The design of the primers and TaqMan probes for real-time PCR assays were carried out using the Primer $Express^{TM}$ software 3.0. The PCR efficiency was estimated through the linear regression of the dilution curve. To understand the expression pattern of various genes under salt stressed condition, we have developed a unique public resource of 9 stress-related genes in poplar. In this study, real-time RT-PCR was used to quantify the transcript level of 10 genes (9 stress-related genes and 1 house keeping gene) that could play a role in adaptation of Populus davidiana. Real-time RT-PCR analyses exhibited different expression ratios of related genes. The data obtained showed that determination of mRNA levels could constitute a new approach to study the stress response of P. davidiana after adaptation during growth in salinity condition.
Gene expression levels of choriogenin, vitellogenin and estrogen receptor were determined using Reverse transcription (RT)-PCR technique after exposure to estrogenic chemical bisphenol A in the Korean wild medaka (Oryzias sinensis). These genes have been known to be induced in male test fish when the fish are exposed to estrogenic chemicals. Therefore they can be suggested as a possible biomarker of endocrine disruption in fish, however, relatively little has been known about these genes expression by estrogenic chemicals in Korean wild fish. Mature male Oryzias sinensis were treated with bisphenol A at nominal concentrations of 0.02, 0.2 and 2 mg/L for 6 days and total RNA was extracted from the livers of treated fish for RT-PCR. When the five biomarker genes were amplified by RT-PCR in the same condition, mRNA induction level of each gene was elevated with different sensitivities. Conclusively, the results of this work indicated that measurement of vitellogenin and choriogenin using RT-PCR is effective as a simple tool for the screening of estrogenic chemicals and suggested that O. sinensis would be a suitable model fish for the environmental risk assessment of potential endocrine disruptors.
Endocrine disruption in crucian carp (Carassius auratus) living in the branch of Han River were examined. Vitellogenin level in plasma was measured using ELISA system and aromatase mRNA level in brain was observed using RT-PCR technique. In all female fish, vitellogenin levels were in the range of 20∼40 $\mu\textrm{g}$/ml and aromatase mRNA expression could be detected on the agarose gel after RT-PCR. However, in case of males, vitellogenin level was elevated in only one fish, while vitellogenin was hardly detected in others. Aromatase was expressed in all males although the levels were relatively lower than the level in female fish. Testis-ova and any other histological changes of reproductive organ were not shown in both sexes.
피부에서 melanin은 자외선 차단의 주요한 역할을 한다. Tyrosinase는 멜라닌 생합성과정에서 초기 단계에 관여하는 중요한 효소로서 이것의 조절을 통한 피부 멜라닌화 억제에 관해 많은 연구가 되어져왔다. 본 연구에서는 해녀콩 추출물에서 mushroom tyrosinase 활성억제, B16F10 melanoma 세포를 이용한 dopa oxidase 활성억제 및 멜라닌 합성 억제 효과를 확인하였다. Tyrosinase mRNA 발현에서의 억제 효과를 확인하기 위하여 RT-PCR을 이용하였으며, $CHCI_3$ 층에서 분리해낸 A 분획에서 tyrosinase mRNA 발현을 억제시킴을 확인하였다.
Techniques to evaluate gene expression profiling, such as sufficiently sensitive cDNA microarrays or real-time quantitative PCR, are efficient methods for monitoring human pluripotent stem cell (hESC/iPSC) cultures. However, most of these high-throughput tests have a limited use due to high cost, extended turn-around time, and the involvement of highly specialized technical expertise. Hence, there is an urgency of rapid, cost-effective, robust, yet sensitive method development for routine screening of hESCs/hiPSCs. A critical requirement in hESC/hiPSC cultures is to maintain a uniform undifferentiated state and to determine their differentiation capacity by showing the expression of gene markers representing all three germ layers, including ectoderm, mesoderm, and endoderm. To quantify the modulation of gene expression in hESCs/hiPSC during their propagation, expansion, and differentiation via embryoid body (EB) formation, we developed a simple, rapid, inexpensive, and definitive multimarker, semiquantitative multiplex RT-PCR platform technology. Among the 9 gene primers tested, 5 were pluripotent markers comprising set 1, and 3 lineage-specific markers were combined as set 2, respectively. We found that these 2 sets were not only effective in determining the relative differentiation in hESCs/hiPSCs, but were easily reproducible. In this study, we used the hES/hiPS cell lines to standardize the technique. This multiplex RT-PCR assay is flexible and, by selecting appropriate reporter genes, can be designed for characterization of different hESC/hiPSC lines during routine maintenance and directed differentiation.
A simple, rapid, specific and sensitive method for the detection of serum hepatitis C virus (HCV) RNA using the reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) technique without conventional RNA extraction was developed. HCV template RNA from serum was obtained by boiling the serum at $95^{\circ}C$ for 2 min, cooling rapidly in ice and removing the proteins by cetrifugation. RT-PCR amplifications including the reverse transcription and first PCR amplification were performed in one vessel containing both of reverse transcriptase and Taq DNA polymerase. The detection of HCV RNA from $10^{-3}{\mu}l$. serum was possible with this method. The suitability of this method for clinical analysis was evaluated by assaying HCV RNA in 225 patient samples including anti-HCV antibody negatives (13 samples) and positives (212 samples) by enzyme-linked immunosorbent assay test (ELISA). Detections of HCV RNA with this method were in 4 of 13 anti-HCV antibody negative samples (30.8%) and 95 of 212 positive samples (44.8%). The present method can be completed in 1 hr and has a wide range of application for the clinical utilities to determine the viral RNAS.
Differential display (DD) of mRNA is a technique in which mRNA species expressed by a cell population are reverse transcribed and then amplified by many separate polymerase chain reactions (PCR). Using DD-RT-PCR we obtained many genes that expressed differentially in healthy and PVX-infected Nicotiana benthamima, using total RNAs extracted from healthy and PVX-infected N. benthamiana plants. Three hundred and twenty-five DNA fragments isolated from DD-RT-PCR were cloned and sequenced for further characterization. Several host genes including SKPI-like protein, heat shock transcription factor and Avr9/Cf-9 rapidly elicited protein were selected to obtain full-length open reading frame and to characterize their potential involvement in virus disease development and/or host's defense against virus infection employing PVX-based expression vector. Transcrips from wild-type and clones containing each selected gene were inoculated onto N. benthamiana Levels of virus replication were confirmedby RT-PCR and RNA blot analysis, Expression profiles and potential role(s) of selected genes upon PVX infection will be discussed.
In the gingival tissues of patients with periodontitis, inflammatory responses are mediated by a wide variety of genes. In this study, we screened for differentially expressed genes (DEGs) in periodontitis compared with normal tissue using an annealing control primer (ACP) system. By ACP RT-PCR analysis, we obtained about 160 amplicons, 8 of which were found to be differentially expressed. DEGs in patients with periodontitis were thus successfully and reliably identified by the ACP-based RT PCR technique. The DEGs identified in the screen may also enhance our understanding of the pathogenesis of periodontitis.
The estrogenic potency of bisphenol A using reverse trancriptase-PCR response of liver vitellogenin mRNA in male carp was studied. For this, six combination of primers which were synthesized on the basis of cDNA consensus region of various species, were evaluated and one pair of primers was selected as the best to show 286 bp size-transcript. By using the selected primers, vitellogenin mRNA induction in carp treated with bisphenol A was measured and the chemical showed dose-and time-dependent Induction response. From this result, it was concluded that RT-PCR technique wing the selected primers in this study can be wed to monitor the estrogenic effects exerted In carp living in Korean freshwater.
본 연구는 siRNA 기반 치료제등의 핵산치료제 개발에 있어서 필수적인 약물의 생체내 흡수, 분포, 대사, 배설에 대한 동태의 확인을 위해 stem-loop RT-qPCR 법을 이용하여 보다 더 정확한 시험법을 확립하고자 하였다. siRNA에 특이적인 primer와 probe를 선별하여 siRNA 정량검출 시험법을 최적화하였다. siRNA 표준시료를 이용하여 최적화된 시험법을 적용하였을 때 siRNA 표준시료에 대한 Cp 값(y)간의 선형분석 결과, 기울기 평균 -3.3, 결정계수 $R^2$>0.99으로 확인되어 siRNA 표준시료와 Cp 값 간의 회귀성이 매우 높아 정량 분석이 가능한 시험법임을 확인하였고, 같은 표준시료를 이용한 stem-loop RT-qPCR의 검출한계(LOD)는 10 fM, 최소정량한계(LLOQ)는 100 fM이었다. 확립된 시험법의 신뢰성을 확인하기 위해 시험자를 다르게 하고, 시험법을 3회 반복하여 각각 진행한 결과, siRNA 표준시료에 대한 Cp 값(y)간의 선형분석 결과 기울기와 결정계수 $R^2$의 재현성(slope ${\pm}-3.2$, 결정계수 $R^2$>0.99)을 확인하였고, 표준 곡선으로부터 환산된 siRNA 표준시료의 회수율(recovery ${\pm}20%$)과 완건성이 우수함을 확인하였다. 확립된 stem-loop RT-qPCR을 생체내 존재하는 약물 검증에 적용할 수 있는지 확인하기 위하여 시험동물에 siRNA를 주입 후 시간별 혈액을 채취하여 확립된 시험법으로 시험을 진행하였고 약물 동태학적 분석을 통해 siRNA치료제의 혈액내의 안정성을 확인하였다. 따라서 본연구에서 개발된 stem-loop RT-qPCR 분석법은 정확성, 정밀성 및 민감도가 높은 분석법으로 핵산치료제 개발 연구의 다양한 생체시료 분석 연구에 적용할 수 있을 것으로 기대한다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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