Jeong, Eun-Jeong;Choi, Yoo-Jeong;Lee, Gunyoung;Yun, Sang Soon;Lim, Ho Soo;Kim, MeeKyung;Kim, Yong-Suk
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.33
no.6
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pp.466-473
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2018
An analytical method of sodium polyacrylate in processed food products was developed and monitored by using size-exclusion chromatography. GF-7M HQ column and UV/VIS detector were selected based on peak shape and linearity. Flow rate, column oven temperature, and mobile phase were selected as 0.6 mL/min, $45^{\circ}C$, and 50 mM sodium phosphate buffer of pH 9.0, respectively. Samples for analysis of sodium polyacrylate were extracted with 50 mM sodium phosphate buffer of pH 7.0 for 3 hr at $20^{\circ}C$ and 150 rpm. Analytical method validation revealed proper selectivity and calibration curve was selected in the range of 50-500 mg/L, and correlation coefficient of calibration curve was more than 0.9985. Limit of detection of sodium polyacrylate was 10.95 mg/kg and limit of quantification was 33.19 mg/kg. Accuracy and coefficient of variation for sodium polyacrylate analysis was 99.6-127.6%, 3.0-8.3% for intra-day and 94.3-121.9%, 1.3-2.6% for inter-day, respectively. Sodium polyacrylate was detected in 40 samples among monitored 125 processed food products. Detected contents were less than 0.2%, limited by the Food Additives Code. Results suggest the established size-exclusion chromatography method could be used to analyze sodium polyacrylate in processed food products.
An analytical method was developed for the determination of fenpropimorph, a morpholine fungicide, in hulled rice, potato, soybean, mandarin and green pepper using QuEChERS (Quick, Easy, Cheap, Effective, Rugged and Safe) sample preparation and LC-MS/MS (liquid chromatography-tandem mass spectrometry). The QuEChERS extraction was performed with acetonitrile followed by addition of anhydrous magnesium sulfate and sodium chloride. After centrifugation, d-SPE (dispersive solid phase extraction) cleanup was conducted using anhydrous magnesium sulfate, primary secondary amine sorbents and graphitized carbon black. The matrix-matched calibration curves were constructed using seven concentration levels, from 0.0025 to 0.25 mg/kg, and their correlation coefficient ($R^2$) of five agricultural products were higher than 0.9899. The limits of detection (LOD) and quantification (LOQ) were 0.001 and 0.0025 mg/kg, respectively, and the limits of quantification for the analytical method were 0.01 mg/kg. Average recoveries spiked at three levels (LOQ, $LOQ{\times}10$, $LOQ{\times}50$, n=5) and were in the range of 90.9~110.5% with associated relative standard deviation values less than 5.7%. As a result of the inter-laboratory validation, the average recoveries between the two laboratories were 88.6~101.4% and the coefficient of variation was also below 15%. All optimized results were satisfied the criteria ranges requested in the Codex guidelines and Food Safety Evaluation Department guidelines. This study could serve as a reference for safety management relative to fenpropimorph residues in imported and domestic agricultural products.
Floral scent emitted from many plants is the critical factors for pollinator attraction and defense for adaptation in environments. The fragrance components of flowers are different in composition by geographical origins, climate factors and the development stages of flowers. In the present study, we investigated the volatile-floral compounds in flowers of Robinia pseudoacacia L. and defined the chemical contribution for flowering periods. The volatile compounds analysis was performed by gas chromatography with mass selective detector after solid phase microextraction (SPME). We reported different compositional features of fragrance compounds according to flowering periods. The abundant compounds identified in stage 1 were ${\alpha}$-pinene (66.80%) and ${\beta}$-pinene (26.53%). Those of the stage 2 were (Z)-${\beta}$-ocimene (37.57%), ${\alpha}$-pinene (15.16%), benzaldehyde (16.63%), linalool (12.13%). The volatiles of stage 3 comprised an abundance of (Z)-${\beta}$-ocimene (64.94%), ${\alpha}$-pinene (9.84%), linalool (8.92%), benzaldehyde (1.71%). Leaf volatiles were distinct from those in the reproductive plant parts by their high relative amount of (E)-${\beta}$-ocimene (23.50%) and (Z)-3-Hexenyl acetate (27.87%). Differences in flower scents of the different stages and leaves are discussed in light of biochemical constraints on volatile chemical synthesis and of the role of flower scent in evolutionary ecology of R. pseudoacacia.
Park, Ji-Su;Do, Jung-Ah;Lee, Han Sol;Park, Shin-min;Cho, Sung Min;Kim, Ji-Young;Shin, Hye-Sun;Jang, Dong Eun;Jung, Yong-hyun;Lee, Kangbong
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.34
no.2
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pp.124-134
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2019
An analytical method was developed for the determination of broflanilide and its metabolites in agricultural products. Sample preparation was conducted using the QuEChERS (Quick, Easy, Cheap, Effective, Rugged and Safe) method and LC-MS/MS (liquid chromatograph-tandem mass spectrometer). The analytes were extracted with acetonitrile and cleaned up using d-SPE (dispersive solid phase extraction) sorbents such as anhydrous magnesium sulfate, primary secondary amine (PSA) and octadecyl ($C_{18}$). The limit of detection (LOD) and quantification (LOQ) were 0.004 and 0.01 mg/kg, respectively. The recovery results for broflanilide, DM-8007 and S(PFP-OH)-8007 ranged between 90.7 to 113.7%, 88.2 to 109.7% and 79.8 to 97.8% at different concentration levels (LOQ, 10LOQ, 50LOQ) with relative standard deviation (RSD) less than 8.8%. The inter-laboratory study recovery results for broflanilide and DM-8007 and S (PFP-OH)-8007 ranged between 86.3 to 109.1%, 87.8 to 109.7% and 78.8 to 102.1%, and RSD values were also below 21%. All values were consistent with the criteria ranges requested in the Codex guidelines (CAC/GL 40-1993, 2003) and the Food and Drug Safety Evaluation guidelines (2016). Therefore, the proposed analytical method was accurate, effective and sensitive for broflanilide determination in agricultural commodities.
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