이 연구에서는 질편모충의 단백질 분해효소를 부분정제하고 그 특성을 관찰하였다. 질염환 자에서 얻은 질편모충 분리주 KT-9을 sonicator로 분쇄 원심분리하여 상청액을 얻어 bacitracin-sepharose affinity chromatography로 부분정제하였고 합성기질 인 Bz-Pro-Phe-Arg-Nan로 효소의 활성을 측정하였다. 정제한 효소는 pH 7에서 최적 활성을 보였고 Dn를 넣었을 때에는 pH 6 및 pH 9이었다. 최적 온도는 $37^{\circ}C$이었지만 높은 온도에서도 활성이 나타났다. 정제한 효소는 cysteine계열의 저해제인 E-64, antipain, leupeptin에 의해, 그리고 $Hg^{2+},{\;}Zn^{2+}$ 이온에 의해 활성이 저해되었고. DTF와 cysteine에 의해서는 효소의 활성띠 2~3배 증가하였다. 등전점(pl)은 7.2이었고, gelatin SDS-PAGE에서 정제한 효소는 gelatin을 분해하였으나 cysteine계열 저해제인 I-64. iodoacetic acid(IAA), leupeptin, antipain과 반응한 후에는 gelatin을 분해하지 못하였고, PMSF나 EUfA는 영향을 미치지 못했다. 정제한 효소는 SDS-PAGE에서 분자량이 60 kDa이었고 면역이적법에서 면역 혈청과 반응하여 항원성을 나타내었다. 이상의 결과로 보아 60 kDa의 정제한 단백질 분해효소는 항원성을 갖는 cysteine계열 분해효소로 숙주-기생충 상호 관계에서 중요한 역할을 할 것으로 생각된다.
한국산 유혈목이에서 스파르가눔 충체를 수집하고, 이들 충체의 추출액에서 ion-exchange chromatography와 affinity chromatography를 실시하여 cysteine proteinase를 순수 정제하였다. 경제된 효소의 최적 pH는 5.5이었고, 최적 mole 농도는 0.IM (0.1M sodium acetate, pH5.5) 이었다. 정제된 대소는 thiol-dependent이고, $4^{\circ}C$에서 pH 5.0일 때 24시간 동안 안전성을 보였다. 효소의 환성도는 저분자 합성기질인 CBZ-phe-arg-AFC에 대 해 활성이 높았다. 정제된 효소는 척추동물의 산성 cysteine proteinase의 억제인자에 감수성을 보였다. UItrogel AcA54 column chromatography로 정제된 cysteine proteinase의 분자량을 측정한 결과 28,000 dalton이었다. 정제된 효소는 collagen type I과 hemoglobin을 분해하였다. Immunoblot한 결과 정제된 효소는 스파르가눔증 환자의 혈청과 반응하였다. 이상의 결과에서 스파르가눔의 cysteine proteinase는숙주 체내이동, 조직침수성 및 영양소 섭취에 관여할 것이라 추정되며, 정제된 효소는 스파르가눔 현중의 혈청학적 진단에 이용될 수 있을 것으로 생각된다.
The present study intended to verify activities of cysteine proteinase of Pneumocystis carinii from rats and to purify the enzyme. In order to exclude the contamination of host-derived enzymes, concentrates of P. carinii was primarily treated with a mixture of proteinase inhibitors before Iysis of P carinii. A 68-kDa cysteine proteinase was finally purified from the crude extract of P. carinii by 4 sequential chromatographic methods. The enzyme showed an optimal activity at pH 5.5 in 0.1 M sodium acetate, and its activity was specifically inhibited by L-trans-epoxy-succinylleucylamido (4-guanidino) butane (E-64) and iodoacetic acid, suggesting that the enzyme is a cysteine proteinase. The 68-kDa proteinase weakly digested rnacrornolecules such as collagen, hemoglobin and fibronectin. The present study demonstrated the activity of cysteine proteinase at the 68-kDa band of P. carinii, and purified and characterized the molecule.
Hyun PARK;Man Young KO;Moon Kee PAIK;Ching Thack SOH;Jang Hoon SEO;Kyung-il IM
Parasites, Hosts and Diseases
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제33권3호
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pp.211-218
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1995
간흡충의 병원성과 단백분해효소 활성도의 상관성을 밝히기 위하여 간흡충 추출물과 분비배설물 의 단백분해효소 활성도와 세포독성을 평가하였고 분비배설물에서 단백분해효소를 부분정제하고 생화학적 성질을 규명하였다. 여러 가지 단백분해효소 억제제를 사용하여 단백분해효소의 활성을 측정한 결과 간흡충에는 Rf값을 서로 달리하는 효소분획으로 되어있음이 관찰되었으며. 이러한 효소 분획은 azocasein을 기질로 한 활성부위 잔기 억제 실험에서 서로 상이한 활성부위잔기를 갖고 있음을 알 수 있었다. 간흡충 분비배설물의 세포독성은 단백질 농도를 $120\mu\textrm{g}/ml$까지 증가시키자 세포독성이 3배 증가했고. 이 효과는 NEM과 ntipain에 의해 억제되었다. 이 사실은 cysteine 단백 분해효소가 세포독성에 관여하는 것을 보여주고 있었다 이 단백분해효소는 최적활성치가 pH 7.5 이었다. 이 효소를 분비배설물로부터 23배 정제하였고 이때 회수율은 14.5%이었다. 부분정제한 단백분해효소의 분자량은 24 kDa이었다. 이 효소는 NEM, antipain에 의해 효소활성이 억제되었고, 동시에 세포독성도 억제되었다. 이 사실로부터 부분정제한 효소의 활성부위잔기는 cysteine이고 이 효소가 또한 분비배설되어 세포독성을 나타낸다는 것을 알 수 있었다.
Aspergillus 속 균주 MK-24로부터 venom proteinase inhibitor의 생산조건을 검토한 결과 질소원으로서는 유기능질소가 균생육에 있어서는 매우 좋았으나 물질생성에 있어서는 무기능질소보다 못하였다. 무기질소원으로서는 sodium nitrate가 가장 좋은 효과를 보였다. 단소원으로서는 glucose가 대부분 당류와 비슷한 결과를 나타내었고 특히 arabitol, xylitol, salicin 등은 본 균주가 단소원으로 사용치 못하는 것으로 추정되었으며, vitamin 류는 물질생성에 무관하였으며 금속염류로서는 효과적인 것은 없으나, Ag$^+$, Co$^{++}$, $Zn^{++}$ 등은 억제하였다. 배양온도와 pH는 각각 3$0^{\circ}C$와 pH 5가 균의 생육과 저해물질생성에 제일 적당하였고, 단소원과 질소원으로서 glucose 2%, NaNo$_3$ 0.3%을 가한 액체배지에서 7일간 정치배양 하였을 때 저해물질생육이 가장 좋았다.
Although considerable effort has been devoted in the mass spectrometric analysis of phosphorylated peptides, successful identification of multi-phosphorylated peptides in enzymatically digested protein samples still remains challenging. The ionization behavior of multi-phosphorylated peptides appears to be somewhat different from that of mono- or di-phosphorylated peptides. In this study, we demonstrate increased sensitivity of detection of multi-phosphorylated peptides of beta casein without using phosphopeptide enrichment techniques. Proteinase K digestion alone increased the detection limit of beta casein multi-phosphorylated peptides in the LC-MS analysis almost 500 fold, compared to conventional trypsin digestion (~50 pmol). In order to understand this effect, various factors affecting the ionization of phosphopeptides were investigated. Unlike ionizations of phosphopeptides with minor modifications, those of multi-phosphorylated peptides appeared to be subject to effects such as selectively suppressed ionization by more ionizable peptides and decreased ionization efficiency by multi-phosphorylation. The enhanced detection limit of multi-phosphorylated peptides resulting from proteinase K digestion was validated using a complex protein sample, namely a lysate of HEK 293 cells. Compared to trypsin digestion, the numbers of phosphopeptides identified and modification sites per peptide were noticeably increased by proteinase K digestion. Non-specific proteases such as proteinase K and elastase have been used in the past to increase detection of phosphorylation sites but the effectiveness of proteinase K digestion for multi-phosphorylated peptides has not been reported.
누에의 소화액 proteinase 및 중장조직 Sucrase의 활성에 미치는 영양 및 환경의 영향을 알기 위하여, 사료조성중에 당의 함량이 많은 A사료(따라서 단백질의 함량은 적음), 당과백질과의 량비가 약 1 : 2로 적당하다고 생각되는 B사료, 단백질의 함량이 많은 C사료(따라서 당의 함량이 적음)의 3종의 준합성사료를 사용하여 유충을 사육하고, 4면기를 16$^{\circ}C$, $25^{\circ}C$, 32$^{\circ}C$로 각각 보호한 5령 5일째 유충의 소화액 proteinase 및 중장조직 Sucrase의 활성을 조사하였던바 다음과 같은 결과를 얻었다. 1. 유충의 혈당량은 4 면기보호온도와 상관하지 않고 A사료> B사료> C사료의 순으로 많었으나 소화액 proteinase 및 중장조직 Sucrase의 활성은 C사료> B사료 >A사료의 순으로 강하였다. 2. 유충의 소화액 proteinase 활성은 A,B,C의 각 사료에 있어서 대개 같은 경향으로, 32$^{\circ}C$ 보다 16$^{\circ}C$에 있어서 강하였으나 혈당량의 변화와는 상반되는 경향이 없다. 3. 유충의 소화액 Sucrase 활성은 A,B,C의 각 사료에 있어서 같은 경향으로, 32$^{\circ}C$> $25^{\circ}C$ >16$^{\circ}C$의 순으로 강하였으며 또한 혈당량의 변화와 같은 경향이었다. 4. 유충의 소화액 proteinase 활성은 사료조성과 4 면기보호온도와의 교호작용이 웅에서만 인정되었으나 중장조직 Sucrase 활성은 교호작용이 자웅 다같이 인정되었다.
Southern hybridization of genomic DNAs with radioactively labeled cDNA of tomato proteinase inhibitor II revealed that proteinase inhibitor II proteins in potato plants are encoded by a family of about 10 related sequences. Screening of potato EcoRI genomic library with the cDNA resulted in isolation of 13 recombinant phage clones which carry 3 different genomic regions. Of these clones, clones 8, 18, and 39 were subjected to restriction mapping and subcloning. Further characterization of the subclones of clones 8, 18 and 39 indicated that two inhibitor II genes are present on a 8.0 kb EcoRI fragment of clone 8, one on 3.3 and 0.8 kb EcoRI fragments of clone 18 and two genes on a 13.5 kb EcoRI fragment of clone 39.
외래 저항성 유전자, Proteinase inhibitor II가 형질전환된 3계통의 벨기에 포플러를 대상으로 딱정벌레에 대한 유전자 발현정도가 기내에서 조사되었다. 포플러 계통은 선발 유전자로서 Nos-promoter와 Neomycin phosphotransferase gene에 의하여 조절되고 곤충에 대한 저항성 유전자로서 CaMV-35S와 Pin2(Proteinase inhibitor II)에 의한 형질전환체이다. 특히, 형질전환된 포플러의 내충성 저항력을 조기검정하기 위하여, 조직배양을 응용한 새로운 방법으로서 곤충의 알을 표면 살균하여 기내의 조직배양묘와 배양하는 동시배양 방법이 이용되었다. 형질전환된 포플러의 저항성은 기내에서 유충에 의해 섭취된 잎면적, 잎 섭취에 의한 유충의 무게 증감, 유충의 성장단계 등에 의하여 조사되었다. 특히, 잎면적은 각각의 LPI(Leaf plastochron index)별로 측정되었고, 잎면적, 유충의 무게, 곤충의 성장 속도는 형질전환체와 비형질전환체 간에 큰 차이를 보였다. 기내에서 무병상태로 배양된 알들이 부화된 후, 유충의 잎 섭취도는 LPI 4와 5사이에서 가장 높았다. 본 실험의 기내 배양법은 외래유전자를 삽입한 이후에 곧바로 발현을 빠른 시간내에 조기검정 할 수 있는 새로운 방법의 개발이라 할 수 있다.
본 연구에서는 단백질분해효소의 산업적 이용을 위하여 kiwifruit 과육 속에 들어 있는 gelatin분해활성을 조사하였다. Kiwifruit 과육에는 3개의 단백질분해효소의 활성 밴드(PI, PII, PIII)가 관찰되었다. 단백질분해효소 PI은 220 kD, PII는 51 kD, PIII는 26 kD에 해당하는 것으로 추정할 수 있었다. 이들 단백질분해효소 PI, PII, PIII는 모두 pH 2.0~5.0 범위에서 높은 활성을 보였으며 pH 4.0에서 가장 높게 나타났다. 이들 단백질분해효소 PI, PII, PIII는 모두 cysteine proteinase 저해제인 E-64와 iodoacetate에 의해서 저해되었으며, cysteine proteinase를 촉진하는 DTT, cysteine 및 $\beta$-mercaptoethanol에 의해서 활성이 증가하였다. 그 중 단백질분해효소 PIII는 분자량과 효소의 특성으로 보아 actinidin (EC 3.4.22.14)과 동일한 것으로 판단되었다. 단백질분해효소 PI, PII, PIII는 모두 $Ca^{2+}$, $Mg^{2+}$과 $Mn^{2+}$에 의해 촉진되었으며 $Zn^{2+}$과 $Hg^{2+}$에 의해 완전히 저해되는 것으로 나타났다. 하지만, $Co^{2+}$, $Cu^{2+}$, $Al^{3+}$, $Fe^{3+}$ 등 금속이온의 영향이 다소 다르게 나타났다. Kiwifruit 과육의 단백질분해효소 PI, PII, PIII 중에서 PI과 PII는 온도가 증가함에 따라 활성이 점차 낮아졌으나 PIII는 비교적 안정한 것으로 조사되었다. 특히, PIII는 $50^{\circ}C$ 이내의 범위에서 48시간 경과시에도 75% 이상의 활성을 보여 이 범위의 온도에서는 상당 시간 동안 안정한 것으로 나타났다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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