Obesity is a worldwide epidemic as well as being a major risk factor for diabetes, cardiovascular diseases and several types of cancers. Obesity is mainly due to the overgrowth of adipose tissue arising from an imbalance between energy intake and energy expenditure. Adipose tissue, primarily composed of adipocytes, plays a key role in maintaining whole body energy homeostasis. In view of the treatment of obesity and obesity-related diseases, it is critical to understand the detailed signal transduction mechanisms of adipogenic differentiation. Adipogenic differentiation is tightly regulated by many key signal cascades, including insulin signaling. These signal cascades generally transfer or amplify the signal by using serial tyrosine phosphorylations. Thus, protein tyrosine kinases and protein tyrosine phosphatases are closely related to adipogenic differentiation. Compared to protein tyrosine kinases, protein tyrosine phosphatases have received little attention in adipogenic differentiation. This review aims to highlight the involvement of protein tyrosine phosphatases in adipogenic differentiation and the possibility of protein tyrosine phosphatases as drugs to target obesity.
Protein tyrosine kinases (PTKs) play a central role in the modulation of a wide variety of cellular events such as differentiation, proliferation and metabolism, and their unregulated activation can lead to various diseases including cancer and diabetes. PTKs represent a diverse family of proteins including both receptor tyrosine kinases (RTKs) and non-receptor tyrosine kinases (NRTKs). Due to the diversity and important cellular roles of PTKs, accurate classification methods are required to better understand and differentiate different PTKs. In addition, PTKs have become important targets for drugs, providing a further need to develop novel methods to accurately classify this set of important biological molecules. Here, we introduce a novel statistical model for the classification of PTKs that is based on their structural features. The approach allows for both the recognition of PTKs and the classification of RTKs into their subfamilies. This novel approach had an overall accuracy of 98.5% for the identification of PTKs, and 99.3% for the classification of RTKs.
The regulation of protein tyrosine phosphorylation is mediated by protein tyrosine kinases (PTKs) and protein tyrosine phosphatases (PTPs) and is essential for cellular homeostasis. Co-expression of PTKs with PTPs in Pichia pastoris was used to facilitate the expression of active PTKs by neutralizing their apparent toxicity to cells. In this study, the gene encoding phosphatase PTP1B with or without a blue fluorescent protein or peroxisomal targeting signal 1 was cloned into the expression vector pAG32 to produce four vectors. These vectors were subsequently transformed into P. pastoris GS115. The tyrosine kinases EGFR-2 and $PDGFR{\beta}$ were expressed from vector pPIC3.5K and were fused with a His-tag and green fluorescent protein at the N-terminus. The two plasmids were transformed into P. pastoris with or without PTP1B, resulting in 10 strains. The EGFR-2 and $PDGFR{\beta}$ fusion proteins were purified by $Ni^{2+}$ affinity chromatography. In the recombinant P. pastoris, the PTKs co-expressed with PTP1B exhibited higher kinase catalytic activity than did those expressing the PTKs alone. The highest activities were achieved by targeting the PTKs and PTP1B into peroxisomes. Therefore, the EGFR-2 and $PDGFR{\beta}$ fusion proteins expressed in P. pastoris may be attractive drug screening targets for anticancer therapeutics.
Roundabout (Robo) is the transmembrane receptor for slit, the neuronal guidance molecule. In this study, the tyrosine phosphorylation of Robo was observed in Robo-transfected human embryonic kidney cells and developing rat brains, and found to be increased by the treatment with protein kinase A activator, forskolin. In contrast, protein kinase C activation by phorbol-12-myristate-13-acetate decreased the phosphorylation of Robo. Intracellular calcium was required for the tyrosine phosphorylation. Furthermore, the transfection of an Eph receptor tyrosine kinase dramatically enhanced the tyrosine phosphorylation. These findings indicate that the tyrosine phosphorylation of Robo is regulated by multiple mechanisms, and that Eph receptor kinases may play a role in the regulation of tyrosine phosphorylation of Robo in the rat brain.
Calcium entry through $Ca_v3.2Ca^{2+}$ channels plays essential roles for various physiological events including thalamic oscillation, muscle contraction, hormone secretion, and sperm acrosomal reaction. In this study, we examined how protein tyrosine phosphatases or protein tyrosine kinases affect $Ca_v3.2Ca^{2+}$ channels reconstituted in Xenopus oocytes. We found that $Ca_v3.2$ channel activity was reduced by 25% in response to phenylarsine oxide (tyrosine phosphatase inhibitor), whereas it was augmented by 19% in response to Tyr A47 or herbimycin A (tyrosine kinase inhibitors). However, other biophysical properties of $Ca_v3.2$ currents were not significantly changed by the drugs. These results imply that $Ca_v3.2$ channel activity is capable of being increased by activation of tyrosine phosphatases, but is decreased by activation of tyrosine kinases.
Bogoyevitch, Marie A.;Thien, Marilyn;Ng, Dominic C.H.
BMB Reports
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v.34
no.6
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pp.517-525
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2001
Six renaturable protein kinases that utilize the myelin basic protein (MBP) as a substrate were activated during prolonged exposure of cardiac myocytes to okadaic acid (OA). We characterized the substrate preference and activation of these kinases, with particular emphasis on 3 novel kinases-MBPK-55, MBPK-62 and MBPK-87. The transcription factors c-Jun, Elk, ATF2, and c-Fos that are used to assess mitogen-activated protein kinase activation were all poor substrates for these three kinases. MAPKAPK2 was also not phosphorylated. In contrast, Histone IIIS was phosphorylated by MBPK-55 and MBPK-62. These protein kinases were activated in cultured cardiac fibroblasts, H9c2 cardiac myoblasts, and Cos cells. High concentrations (0.5 to $1\;{\mu}M$) of OA were essential for the activation of the protein kinases in all of the cell types examined, whereas calyculin A [an inhibitor of protein phosphatase 1 (PP1) and PP2A], cyclosporin A (a PP2B inhibitor), and an inactive OA analog all failed to activate these kinases. The high dose of okadaic acid that is required for kinase activation was also required for phosphatase inhibition, as assessed by immunoblotting whole cell lysates with anti-phosphothreonine antibodies. A variety of chemical inhibitors, including PD98059 (MEK-specific), genistein (tyrosine kinase-specific) and Bisindolylmaleimide I (protein kinase C-specific), failed to inhibit the OA activation of these kinases. Thus, MBPK-55 and MBPK-62 are also Histone IIIS kinases that are widely expressed and specifically activated upon exposure to high OA concentrations.
Plant genome analyses, including Arabidopsis thaliana showed a large gene family of plant receptor kinases with various extracellular ligand-binding domain. Now intensively studies to understand physiological and cellular functions for higher plant receptor kinases in diverse and complex biological processes including plant growth, development, ligands perception including steroid hormone and plant-microbe interactions. Brassinosteroids (BRs) as a one of well know steroid hormone are plant growth hormones that control biomass accumulation and also tolerance to many biotic and abiotic stress conditions and hence are of relevance to agriculture. BRI1 receptor kinase, which is localized in plasma membrane in the cell sense BRs and it bind to a receptor protein known as BRASSINOSTEROID INSENSITIVE 1 (BRI1). Recently, we reported that BRI1 and its co-receptor, BRI1-ASSOCIATED KINASE (BAK1) autophosphorylated on tyrosine residue (s) in vitro and in vivo and thus are dual-specificity kinases. Other plant receptor kinases are also phosphorylated on tyrosine residue (s). Post-translational modifications (PTMs) can be studied by altering the residue modified by directed mutagenesis to mimic the modified state or to prevent the modification. These approaches are useful to not only characterize the regulatory role of a given modification, but may also provide opportunities for plant improvement.
To investigate the effects of protein kinases on endothelin-1-induced phospholipase C activation and $Ca^{2+}$ mobilization in Rat-2 fibroblast, we measured the formation of inositol phosphates and intracellular $Ca^{2+}$ concentration with [$^3$H]inositol and Fura-2/AM, respectively. Endothelin-1 dose-dependently activated phospholipase C and increased intracellular $Ca^{2+}$ concentration. Protein kinase C activator PMA, significantly inhibited both phospholipase C activity and $Ca^{2+}$ mobilization induced by endothelin-1. Tyrosine kinase inhibitor, genistein, inhibited both. On the other hand, cyclic nucleotide (cAMP and cGMP) did not have any influence on the signaling pathway of phospholipase C-Ca$^{2+}$ mobilization induced by endothelin-1. These results suggest that protein kinase C and tyrosine kinase counteract on the signaling pathway of phospholipase C-Ca$^{2+}$ mobilization induced by endothelin-1 in Rat-2 fibroblast. fibroblast.
Together with protein tyrosine kinases (PTKs), protein tyrosine phosphatases (PTPs) serve as hallmarks in cellular signal transduction by controlling the reversible phosphorylation of their substrates. The human genome is estimated to encode more than 100 PTPs, which can be divided into eleven sub-groups according to their structural and functional characteristics. All the crystal structures of catalytic domains of sub-groups have been elucidated, enabling us to understand their precise catalytic mechanism and to compare their structures across all sub-groups. In this review, I describe the structure and mechanism of catalytic domains of PTPs in the structural context.
A role of Src family protein Tyrosine kinases (SFK) as mediators of receptor-ligand initiated responses is well established. Well documented, but less well understood is the role of SFK in cellular reaction to stresses. Evidence from the wide variety of experimental systems indicates that SFK mediate responses to all major classes of stress, including oxidation, DNA damage, mechanical impacts, and protein denaturing. SFK may be activated by stresses directly or via regulatory circuits whose identity is not yet fully understood. Depending on the cell type and the nature of activating stimulus, SFK may activate known downstream signaling cascades leading to cell survival, proliferation, cytoskeletal rearrangement, and apoptosis; the identity of these cascades is discussed. As in the case of receptor-initiated signaling, roles of individual SFK in various stress response may be redundant or non-redundant. Although signals generated by different stresses are generally transduced via distinct SFK pathways, these pathways may overlap or exhibit crosstalk. In some cell types stress-induced activation of SFK promotes survival and inhibits apoptosis, whereas the opposite may be true for other cell types. Stress responses constitute a new and rapidly developing area of SFK-mediated signaling.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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