Polyglutamine extension in the coding sequence of mutant huntingtin causes neuronal degeneration associated with the formation of insoluble polyglutamine aggregates in Huntington's disease (HD). Mutant huntingtin can form aggregates within the nucleus and processes of neurons possibly due to misfolding of the proteins. To better understand the mechanism by which an elongated polyglutamine causes aggregates, we have developed an in vitro binding assay system of polyglutamine tract from truncated huntingtin. We made GST-HD exon1 fusion proteins which have expanded polyglutamine epitopes (e.g., 17, 23, 32, 46, 60, 78, 81, and 94 CAG repeats). In the present emergence of new study adjusted nanotechnology on protein chip such as surface plasmon resonance strategy which used to determine the substance which protein binds in drug discovery platform is worth to understand better neurodegenerative diseases (i.e., Alzheimer disease, Parkinson disease and Huntington disease) and its pathogenesis along with development of therapeutic measures. Hence, we used strengths of surface plasmon resonance (SPR) technology which is enabled to examine binding specificity and explore targeted molecular epitope using its electron charged wave pattern in HD pathogenesis utilize conjugated mutant epitope of HD protein and its interaction whether wild type GST-HD interacts with mutant GST-HD with maximum binding affinity at pH 6.85. We found that the maximum binding affinity of GST-HD17 with GST-HD81 was higher than the binding affinities of GST-HD17 with other mutant GST-HD constructs. Furthermore, our finding illustrated that the mutant form of GST-HD60 showed a stronger binding to GST-HD23 or GST-HD17 than GST-HD60 or GST-HD81. These results indicate that the binding affinity of mutant huntingtin does not correlate with the length of polyglutamine. It suggests that the aggregation of an expanded polyglutamine might have easily occurred in the presence of wild type form of huntingtin.
Specific [$^{3}H$] ouabain binding and $Ca^{2+}$ -uptake were measured to elucidate the role of high affinity [$^{3}H$] ouabain binding site in rat cardiac myocytes which contain 65% of rod cells. High affinity [$^{3}$H] ouabain binding site, which is about 3% of total pump sites, with apparent dissociation constant ($K_{D}$) of $1.1{\times}10^{-7}M$ and maximum binding site concentration (Bmax) of 1.2 pmol/mg protein ($1.754{\times}10^{5}cells$) were identified. At the concentration of $10^{-7}M$ to $10^{-4}M$, ouabain produced concentration dependent increase in $Ca^{2+}$-uptake of myocytes. The effect of ouabain on $Ca^{2+}$-uptake was not effected by membrane depolarization (elevated K+ in incubation medium) or verapamil. These results suggest that in rat ventricular myocytes the ouabain receptor complex to high affinity site may increase Na+ - $Ca^{2+}$ exchange across the sarcolemmal membrane by inhibition of Na+, K+ - ATPase.
To investigate whether human $\beta$$_2$-adrenergic receptor devoid of the C-terminal two transmembrane helices retain its ligand binding activity and specificity, 5'780-bp DNA fragment of the receptor gene which encodes amino acid 1-260 of human $\beta$$_2$-adrenergic receptor was subcloned into the bacterial fusion protein expression vector and expressed as a form of glutathione-S-transferase (GST) fusion protein in E. coli DH5$\alpha$. The receptor fusion protein was expressed as a membrane bound form which was verified by SDS-PAGE and Western blot. The fusion protein expressed in this study specifically bound $\beta$-adrenergic receptor ligand [$^3$H] Dihydroalprenolol. In saturation ligand binding assay, the $K_{d}$ value was 7.6 nM which was similar to that of intact $\beta$$_2$-adrenergic receptor in normal animal tissue ( $K_{d}$=1~2 nM) and the $B_{max}$ value was 266 fmol/mg membrane protein. In competition binding assay, the order of binding affinity of various adrenergic receptor agonists to the fusion protein was isoproterenol》epinephrine norepinephrine, which was similar to that of intact receptor in normal animal tissue. These results suggest that N-terminal five transmembrane helices of the $\beta$$_2$-adrenergic receptor be sufficient to determine the ligand binding activity and specificity, irrespective of the presence or absence of the C-terminal two transmembrane helices.s.s.s.
Proceedings of the Korean Vacuum Society Conference
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2013.02a
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pp.84-84
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2013
FcBP consisting of 13 amino acids specifically binds to Immunoglobulin G Fc domain. Initially, we utilized this peptide for preparation of antibody chip as a PEG composite for enhanced solubility. After then, the peptide conjugate was immobilized on agarose resin, resulting in highly efficient affinity column for antibody purification. The efficiency was comparable to commercial Protein A column. Recently, this peptide was conjugated with cell penetratingpeptide (CPP) on a backbone of GFP, affording antibody transducer, which carries antibody into live cells by simple mixing of antibody and the transducer in cell culture media. Antibody transduction into cells was monitored by live cell imaging. More recently, the FcBP was fused to ferritin cage, which consists of 24 ferritin protein molecules. The FcBP-ferritin cage showed greatly increased binding affinity to human IgG. Its binding was analyzed by QCM and SPR analysis. Finally, it was selectively delivered by Herceptin to SKBR3, a breast cancer cell, over MCF10A, non-tumorigenic cells.
Carbohydrate-binding proteins have been isolated from various sources, including plants, animals, fungi, and bacteria, and they have been used extensively in the detection, localization, and isolation of glycoconjugates. Many carbohydrate-binding proteins are purified from mushrooms, however, only a few proteins with sialic acid-binding specificity have been reported. In the present study, a novel sialic acid-binding protein, designated PJA, has been purified from the mushroom Paecilomyces japonica. followed by extraction and affinity chromatography. (omitted)
Protein affinity membranes were prepared via coating of chitosan gel on the porous flat and hollow-fiber polysulfone membranes, followed by the immobilization of the reactive dye (Cibacron Blue 3GA) to the chitosan gel. Maximum protein binding capacity of these affinity membranes was about 70 $\mu{g/cm}^2$. Using the affinity flat membrane module, the elution chromatography of human serum albumin (HSA) was performed to determine the optimum condition of eluent buffer. The optimum condition of eluent was the universal buffer solution of 0.06 M concentration containing 1 M KCl at pH 10. For the frontal chromatography of HSA using the flat module, the dynamic protein binding capacity was rapidly decreased from the equilibrium values with increasing flow rate and HSA concentration of the loading solution. However, in the case of hollow-fiber module, the dynamic binding capacity was maintained an equilibrium value without depending on the operating conditions. These results showed that the hollow-fiber module was more effective than the flat module as an affinity chromatography column.
A binding protein of radio-labeled sanjoinine-A (fangufoline) in rat brain cytoplasm was investigated, using an equilibrium dialysis technique. The labeled agent was bound to the cytosol fraction with two distinctly different types of sets in calclum ion-dependent manner. The bound protein was identified as calmodulin by dgel filtration of the sanjoinine-A bound cytosol fraction on a Sephadex G-75 column. Calmodulin was bound to sanjoinine-A bound at two sets of binding sites in the calculated as two at high affinity sites $(Kd=1.1\;mu{M)}$ and four at low affinity sites $(Kd=3.1\;\mu{M)}$.
Kim, Chong-Kook;Lim, Yun-Su;Yang, Ji-Sun;Jeong, Eun-Ju
Journal of Pharmaceutical Investigation
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v.19
no.3
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pp.163-171
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1989
To investigate the protein binding characteristics of cephalothin, the effects of ionic strength, pH and temperature on the binding of cephalothin to bovine serum albumin (BSA) were studied by UV difference spectrophotometric method. With increasing ionic strength at constant PH and temperature, association constant decreased, but the number of binding sites sites was about 2 constantly. It may be deduced that the binding process is not only due to electrostatic forces. And the increased association constant at high ionic strength is explained by conformational changes of BSA from complex to subunits. The pH effect on the affinity of interaction indicated that the binding affinity of drug is higher in the neutral region than in the alkaline region. And, at high pH value, the number of binding sites decreased from 2 to 1 because of the conformational changes of BSA in alkaline region. The decrease in binding affinity of BSA to drug with increasing temperature was characteristic of an exothermic reaction. And the negative sign of ${\Delta}G^{\circ}$ meant that the binding process occurs spontaneously under the experimental conditions. In cephalothin-BSA complex formation, since the net enthalpy change value and entropy change value are positive, it is assumed that hydrophobic bindings are predominant in this binding process.
As an initial effort to elucidate RNA: protein binding in a way to regulate translation initiation and phosphorylation, a cDNA encoding a double-stranded RNA binding factor (RBFII)was isolated from Hela ZAPII cDNA library by affinity screening using [$\alpha$$^{-32}$P] UMP-labeled HIV Rev-responsive element(RRE) RNA. The nucleotide sequence of RBF (or TRBP) cDNA except the 5’end. At the 5’end, This common ORF was fused in-frame to N-terminal residues of Lac-Z through a unique 138 nt sequence encoding 46residues in the case of RBFII and a 63 nt sequence encoding 21 residuces in the case of RBFI. The context of ATG appearing first in the sequences suggests that both these cDNA inserts are incomplete at the 5’end.
Porous chitosan and chitin membranes were prepared by using silica particles as porogen. Membrane preparation was achieved via the following three steps: (1) chitosan film formation by casting an chitosan solution containing silica particles, (2) preparation of porous chitosan membrane by dissolving the silica particles by immersing the film into an alkaline solution and (3) preparation of porous chitin membrane by acetylation of chitosan membrane with acetic anhydride. The optimum preparation conditions which could provide a chitosan and chitin membranes with good mechanical strength and adequate pure water flux were determined. To allow protein affinity, a reactive dye (Cibacron Blue 3GA) was immobilized on porous chitosan membrane. Binding capacities of affinity chitosan and chitin membranes for protein and enzyme were determined by the batch adsorption experiments of BSA protein and lysozyme enzyme. The maximum binding capacity of affinity chitosan membrane for BSA protein is about 22 mg/mL, and that of affinity chitin membrane for lysozyme enzyme is about 26 mg/mL. Those binding capacities are about $several{\sim}several$ tens times larger than those of chitosan and chitin-based hydrogel beads. Those results suggest that the porous chitosan and chitin membranes are suitable in affinity filtration chromatography for large scale separation of proteins.
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