Glycosyltransferases are enzymes (EC 2.4) that catalyze the transfer of monosaccharide moieties from activated nucleotide sugar to a glycosyl acceptor molecule which can be a carbohydrate, glycoside, oligosaccharide, or a polysaccharide. In this study, a UDP-glucosyltransferase cDNA was isolated from Brassica rapa using a rapid amplification of cDNA ends (RACE) and subsequently named BrUGT. It has a full-length cDNA of 1,236 bp with 119 bp 5'-untranslated region (UTR), a complete ORF of 834 bp encoding a polypeptide of 277 amino acids (31.19 kDa) and a 3'-UTR of 283 bp. BLASTX analysis hits a catalytic domain of Glycos_transf_1 super family (cl12012) that belongs to the Glycosyltransferases group 1 with tetratricopeptide (TPR) regions located between 165 to 350 bp. Expression analysis showed high mRNA transcripts in pistil, followed by petal, seed and calyx of flower. Moreover, expression analysis of BrUGT in Chinese cabbage seedlings under stresses of cold, salt, PEG, $H_2O_2$, drought and ABA showed elevated mRNA transcript. Furthermore, when BrUGT gene was transformed into rice using pUbi-1 promoter, overexpression was evident among the $T_1$ plants. This study provides insights into the function of BrUGT in plants.
We tried to analyze the growth time for secretion of the iron containing superoxide dismutase by comparing the intra-and extracellular enzyme activity from Streptomyces subrutilus P5 and analyze possible genetic information for this enzyme secretion. The mycelial dry weights and glucose concentrations in culture filtrates were determined during growth. Glucose was consumed rapidly during logarithmic growth phase and almost exhausted at 24 h of cultivation. While the intracellular activity of iron containing superoxide dismutase was first appeared at three hours, the extracellular activity of this enzyme appeared from 7.5 h of cultivation, early logarithmic growth phase. This early presence of the superoxide dismutase might not be the result of cell lysis but active secretion pathway. There was no information for signal peptide responsible for the enzyme secretion in sodF. However, we found a type three secretion box in the promoter region of sodF that has been known for the genes of type III secreted proteins in other bacteria. This is the first report on the possible existence of type III secretion in Streptomyces.
Kim, Joongkyu;Choi, Young-Il;Park, Sang-D;Seong, Rho-H
Animal cells and systems
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v.1
no.4
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pp.657-663
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1997
The CD4 and CDS coreceptors, in conjunction with the T cell receptor (TCR) , make important contributions to the differentiation of thymocytes. They have been shown to be involved in the clonal deletion and positive selection processes during T cell development in thymus. To further analyze the role of CD4 and CDS proteins during T cell differentiation, we have generated transgenic mice constitutively expressing high levels of a native CD4 and a CD4{CDSa hybrid protein. The hybrid protein is composed of CD4 extracellular domain linked to the CD8a transmembrane region and cytoplasmic tail. The transgenes were driven by human beta-actin promoter, and therefore, they were expressed in all tissues examined including thymus, spleen, and lymph nodes. The resulting CD4 and CD4{CD8${\alpha}$transgenic mice were found to express the CD4 and CD4{CD8${\alpha}$ respectively, in developing thymocytes and peripheral T cells. The expression levels of transgenic proteins were 5-10 times higher than that of endogenous CD4 in thymus. However, total surface CD4 expression (CD4 or CD4{CD8${\alpha}$ transgenic protein plus endogenous CD4) of the transgenic mice were main. tained at similar levels compared to control littermates. Surface CD4 expression on CDS T cells, however, was significantly lower than that on cells expressing endogenous CD4. These results suggest that a total avidity between developing thymocytes and thymic stromal cells is impor. tant for differentiation of thymocytes.
Blood pressure refers to the force exerted by circulating blood on the walls of blood vessels, and chronical elevation of blood pressure is known as hypertension. Although hypertension is affected by genetic and environmental factors, the genetic background of hypertension is not fully understood. One of the candidate genetic factors, Prostaglandin-endoperoxide synthase 2 (PTGS2), is a membrane-bound enzyme, catalyzing the conversion of arachidonic acid to prostaglandin, and recently SNPs of PTGS2 gene was associated with hypertension in Japanese population. Therefore the association of PTGS2 polymorphisms was investigated with blood pressure in healthy Korean subjects, 470 unrelated individuals randomly selected from Ansung and Ansan cohorts. The 25 SNPs of PTGS2 gene were identified by the sequencing analysis of 24 Korean samples. Among identified polymorphisms, three SNPs (rs689466, -1329A>G; rs5275, +6365T>C; rs4648308, +8806G> A) were selected for further association analysis, and rs689466 located in promoter region was associated with blood pressure as well as triglyceride level in the blood. By in silico analysis, rs689466 locates in v-Myb transcription factor binding site, and the v-Myb site disappears when the SNP is changed from A to G nucleotide. Individuals with A/G and G/G genotype in rs689466 have higher blood pressure than those with A/A genotype, and the regression p-value is 0.008 for systolic and 0.004 for diastolic blood pressure. In summary, the PTGS2 polymorphism (rs689466) is associated with blood pressure in Asian populations based on this and Japanese studies, shedding light on it as a genetic risk marker of hypertension.
Mac-2BP is a ligand of the galectin family that has been suggested to affect tumor proliferation and metastasis formation. We assessed Mac-2BP expression at the transcriptional and translational levels to evaluate nerve growth factor (NGF)-induced Mac-2BP expression. A time kinetic analysis using reverse transcription-polymerase chain reaction showed that NGF-induced Mac-2BP transcript levels were 4-5 times higher than in controls. Mac-2BP enzyme-linked immunosorbent assay and immuno-fluorescence staining showed a 2-3-fold increase in intracellular and secreted Mac-2BP as a result of NGF stimulation. This increase was regulated by Akt activation and NF-${\kappa}B$ binding. p65 and p50-NF-${\kappa}B$ are major transcriptional factors in the Mac-2BP promoter region, and were shown to be regulated in accordance with the Akt activation states. Collectively, these results suggest that NGF induces Mac-2BP expression via the PI3K/Akt/NF-${\kappa}B$ pathway.
Background: Glycosylation of natural compounds increases the diversity of secondary metabolites. Glycosylation steps are implicated not only in plant growth and development, but also in plant defense responses. Although the activities of uridine-dependent glycosyltransferases (UGTs) have long been recognized, and genes encoding them in several higher plants have been identified, the specific functions of UGTs in planta remain largely unknown. Methods: Spatial and temporal patterns of gene expression were analyzed by quantitative reverse transcription (qRT)-polymerase chain reaction (PCR) and GUS histochemical assay. In planta transformation in heterologous Arabidopsis was generated by floral dipping using Agrobacterium tumefaciens (C58C1). Protein localization was analyzed by confocal microscopy via fluorescent protein tagging. Results: PgUGT72AL1 was highly expressed in the rhizome, upper root, and youngest leaf compared with the other organs. GUS staining of the promoter: GUS fusion revealed high expression in different organs, including axillary leaf branch. Overexpression of PgUGT72AL1 resulted in a fused organ in the axillary leaf branch. Conclusion: PgUGT72AL1, which is phylogenetically close to PgUGT71A27, is involved in the production of ginsenoside compound K. Considering that compound K is not reported in raw ginseng material, further characterization of this gene may shed light on the biological function of ginsenosides in ginseng plant growth and development. The organ fusion phenotype could be caused by the defective growth of cells in the boundary region, commonly regulated by phytohormones such as auxins or brassinosteroids, and requires further analysis.
Artificial chromosome manipulation and amplification of single-copy yeast artificial chromosome (YAC) are usually required in order to use YACs for applications such as physical mapping and functional analysis in eukaryotes. We designed and implemented a Simultaneous YAC Manipulation-Amplification (SYMA) system that combines the copy number amplification system of YAC with a convenient YAC manipulation system. To achieve the desired split and to amplify a YAC clone-harboring plant chromosome, a pBGTK plasmid containing a conditional centromere and thymidine kinase (TK) gene was constructed as a template to amplify the splitting fragment via PCR. By splitting, new 490-kb and 100-kb split YACs containing the elements for copy number amplification were simultaneously generated from a 590-kb YAC clone. The 100-kb split YAC was then successfully amplified 14.4-fold by adding 3 mg/ml sulfanilamide and $50\;{\mu}g/ml$ methotrexate (S3/M50) as inducing substances.
We assessed the regulation of cryparin, a class II hydrophobin, using three representative mitogen-activated protein kinase (MAPK) pathways in Cryphonectria parasitica. Mutation of the CpSlt2 gene, an ortholog of yeast SLT2 in the cell wall integrity (CWI) pathway, resulted in a dramatic decrease in cryparin production. Similarly, a mutant of the CpBck1 gene, a MAP kinase kinase kinase gene in the CWI pathway, showed decreased cryparin production. Additionally, mutation of the cpmk1 gene, an ortholog of yeast HOG1, showed decreased cryparin production. However, mutation of the cpmk2 gene, an ortholog of yeast Kss1/Fus3, showed increased cryparin production. The easy-wet phenotype and accumulation of the cryparin transcript in corresponding mutants were consistent with the cryparin production results. In silico analysis of the promoter region of the cryparin gene revealed the presence of binding motifs related to downstream transcription factors of CWI, HOG1, and pheromone responsive pathways including MADS-box- and Ste12-binding domains. Real-time reverse transcriptase PCR analyses indicated that both CpRlm1, an ortholog of yeast RLM1 in the CWI pathway, and cpst12, an ortholog of yeast STE12 in the mating pathway, showed significantly reduced transcription levels in the mutant strains showing lower cryparin production in C. prasitica. However, the transcription of CpMcm1, an ortholog of yeast MCM1, did not correlate with that of the mutant strains showing downregulation of cryparin. These results indicate that three representative MAPK pathways played a role in regulating cryparin production. However, regulation varied depending on the MAPK pathways: the CWI and HOG1 pathways were stimulatory, whereas the pheromone-responsive MAPK was repressive.
The infectious full-length cDNA clones of Cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV) isolates KW and KOM, which were isolated from watermelon and oriental melon, respectively, were constructed under the control of the cauliflower mosaic virus 35S promoter. We successfully inoculated Nicotiana benthamiana with the cloned CGMMV isolates KW and KOM by Agrobacterium-mediated infiltration. Virulence and symptomatic characteristics of the cloned CGMMV isolates KW and KOM were tested on several indicator plants. No obvious differences between two cloned isolates in disease development were observed on the tested indicator plants. We also determined full genome sequences of the cloned CGMMV isolates KW and KOM. Sequence comparison revealed that only four amino acids (at positions 228, 699, 1212, and 1238 of the replicase protein region) differ between the cloned isolates KW and KOM. A previous study reported that the isolate KOM could not infect Chenopodium amaranticolor, but the cloned KOM induced chlorotic spots on the inoculated leaves. When compared with the previously reported sequence of the original KOM isolate, the cloned KOM contained one amino acid mutation (Ala to Thr) at position 228 of the replicase protein, suggesting that this mutation might be responsible for induction of chlorotic spots on the inoculated leaves of C. amaranticolor.
Suppression of bone morphogenetic protein (BMP) signaling induces neural induction in the ectoderm of developing embryos. BMP signaling inhibits neural induction via the expression of various neural suppressors. Previous research has demonstrated that the ectopic expression of dominant negative BMP receptors (DNBR) reduces the expression of target genes down-stream of BMP and leads to neural induction. Additionally, gain-of-function experiments have shown that BMP downstream target genes such as MSX1, GATA1b and Vent are involved in the suppression of neural induction. For example, the Vent1/2 genes are involved in the suppression of Geminin and Sox3 expression in the neural ectodermal region of embryos. In this paper, we investigated whether PV.1, a BMP downstream target gene, negatively regulates the expression of FoxD5b, which plays a role in maintaining a neural progenitor population. A promoter assay and a cyclohexamide experiment demonstrated that PV.1 negatively regulates FoxD5b expression.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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