This study describes viscoelasticity analysis of carbon-fiber reinforced polymer matrix composite material. One of the most important problem during high temperature molding process is residual stress. Residual stress can cause warpage and cracks which can lead to serious defects of the final product. For the difference in thermal expansion coefficient and change of resin property during curing, it is difficult to predict the final deformed shape of carbon-fiber reinforced polymer matrix composite. The consideration of chemical shrinkage can reduce the prediction errors. For this reason, this study includes the viscoelasticity and chemical shrinkage effects in FE analysis by creating subroutines in ABAQUS. Analysis results are compared with other researches to verify the validity of the subroutine developed, and several stacking sequences are introduced to compare tested results.
Bacteriocin-producing lactic acid bacteria were isolated from kimchi. One isolate producing the most efficient bacteriocin was identified and named Lactococcus lactis B2, based on the biochemical properties and 16S rDNA sequences. The B2 bacteriocin inhibited many different Gram positive bacteria including Lactococcus, Lactobacillus, Leuconostoc, Enterococcus, Streptococcus, and Staphylococcus, but did not inhibit Gram-negative bacteria. The bacteriocin was maximally produced at temperatures between $25^{\circ}C\;and\;30^{\circ}C$ and at the initial pH of 7.0. Ninety $\%$ of the activity remained after 10 min of heat treatment at $121^{\circ}C,\;and\;100\%$, after 1 h exposure to organic solvents. The bacteriocin was purified from culture supernatant by ammonium sulfate precipitation, CM Sepharose column chromatography, ultrafiltration, and finally, by reverse-phase HPLC. A 1.58-kb fragment was amplified from B2 chromosome by using a primer set designed from the published nisA sequence. Sequencing result showed that the fragment contained the whole nisZ and 5' portion of nisB, whose gene product was involved in postmodification of nisin. The upstream sequence, however, was completely different from those of reported nisin genes.
Cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV) was a major pathogen of watermelon and had affected seriously to watermelon production in Korea. Rapid and sensitive detection method of CGMMV associated with bottle gourd (Lagenafia siceraria) seeds was developed by using RT-PCR in this study. A pair of primeri Wmfl and Wmrl, specific for CGMMV was designed from coat protein gene sequences of CGMMV-W and used for amplifying 420 bp product in RT-PCR. To simplify the virus extraction procedure and reduce an inhibitor from the extract for the RT-PCR, some methods using ethanol precipitation, double filtration, polyethylene glycol precipitation and phenol/chloroform/isoamyl alcohol extraction procedure were compared and the phenol/chloroform/isoamyl alcohol extraction procedure was selected by its enhanced sensitivity. This detection method using the selected extraction step and the primers for RT-PCR could reliably detect an infected level of one CGMMV-infested seed in 1,000 seeds. This rapid and sensitive RT-PCR assay provides auseful tool for the specific detection of CGMMV in bottle gourd seed samples containing high levels of back-ground inhibitors.
An isolate of Peanut stunt virus (PSV) isolated from black locust tree (Robinia pseudo-acacia L.) showing severe mosaic and malformation symptoms, was designated as PSV-Rp. PSV-Rp was characterized by the tests of host range, physical properties, RNA and coat protein composition and RT-PCR analysis. Nucleotide sequences of the cucumoviruses CP genes were also used for identification and differentiation of PSV-Rp. Six plant species were used in the host range test of PSV-Rp. PSV-Rp could be differentiated from each Cucumovirus strain used as a control by symptoms of the plants. The physical properties of PSV-Rp virus were TIP $65^{\circ}C$, DEP $10^{-3}$, and LIP $2{\sim}3$ days. In dsRNA analysis, PSV-Rp consisted of four dsRNAs, but satellite RNA was not detected. Analysis of the coat proteins by SDS-PAGE showed one major protein band of about 31 kDa. RT-PCR using a part of Cucumovirus RNA3 specific primer amplified ${\sim}950bp$ DNA fragments from the crude sap of virus-infected black locust leaves. RFLP analysis of the RT-PCR product could differential PSV-RP from CMV The nucleotide sequence identity between the PSV-Rp CP and the TAV-P CP genes and the PS-V-RP CP and CMV-Y CP genes were 61.6% and 40.5%, respectively. On the other hand, the nucleotide sequence identity of the PSV-Rp CP gene was $70.9%{\sim}73.4%$ in comparison with those of PSV subgroup I (PSV-ER and PSV-J) and 67.3% with that of PSV subgroup II(PSV-W). Especially, the nucleotide sequence identity of PSV-Rp CP gene and that of PSV-Mi that was proposed recently as the type member of a novel PSV subgroup III was 92.4%.
Kim, Hyun-Ran;Lee, Sin-Ho;Lee, Bong-Choon;Kim, Yeong-Tae;Park, Jin-Woo
The Plant Pathology Journal
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v.20
no.2
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pp.127-130
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2004
Grapevine leaf roll-associated virus 3 (GLRaV-3) is one of the most important viral diseases of grapevine in the world. In this study, GLRaV-3 Ampelovirus was identi-fied from grapevines in Korea by analyzing viral coat protein size, nucleotide, and amino acid sequences. The molecular weight of viral coat protein from virus-infected in vitro plantlets was determined by western blot using a commercial GLRaV-3 polyclonal antibody. Western blot analysis showed a coat protein of about 43 kDa. RT-PCR product of about 942 bp which encoded the coat protein (CP) gene was amplified with specific primers. When the viruses existed at low titers in the host plant, the dsRNA had very specific template in RT- PCR amplification of fruit tree viruses. Especially, small-scale dsRNA extraction method was very reliable and rapid. Sequence analysis revealed that the CP of the GLRaV-3 Ko consisted of 942 bp nucleotide, which encoded 314 amino acid residues. The CP gene of GLRaV-3 Ko had 98.9% nucleotide sequence and 98.7% amino acid sequence identities with earlier reported GLRaV-3. This is the first report on molecular assay of GLRaV-3 Ampelovirus identified from Korea. The GLRaV-3 Ko CP clone would be very useful for breeding of virus resistant grapevines.
Kimchi is a traditional Korean fermented vegetable food, the production of which involves brining of Korean cabbage, blending with various other ingredients (red pepper powder, garlic, ginger, salt-pickled seafood, etc.), and fermentation. Recently, kimchi has also become popular in the Western world because of its unique taste and beneficial properties such as antioxidant and antimutagenic activities, which are derived from the various raw materials and secondary metabolites of the fermentative microorganisms used during production. Despite these useful activities, analysis of the microbial community present in kimchi has received relatively little attention. The objective of this study was to evaluate the bacterial community structure from the raw materials, additives, and final kimchi product using the culture-independent method. Specifically, polymerase chain reaction-denaturing gradient gel electrophoresis (PCR-DGGE) was used to analyze the 16S rRNA partial sequences of the microflora. One primer set for bacteria, 341FGC-518R, reliably produced amplicons from kimchi and its raw materials, and these bands were clearly separated on a 35-65% denaturing gradient gel. Overall, 117 16S rRNA fragments were identified by PCR-DGGE analysis. Pediococcus pentosaceus, Leuconostoc citreum, Leuconostoc gelidum, and Leuconostoc mesenteroides were the dominant bacteria in kimchi. The other strains identified were Tetragenococcus, Pseudomonas, Weissella, and uncultured bacterium. Comprehensive analysis of these microorganisms could provide a more detailed understanding of the biologically active components of kimchi and help improve its quality. PCR-DGGE analysis can be successfully applied to a fermented food to detect unculturable or other species.
Indole-3-acetic acid (IAA) is produced commonly by plants and many bacteria, however, little is known about the genetic basis involving the key enzymes of IAA biosynthetic pathways from Bacillus spp. IAA intermediates from the Gram-positive spore-forming bacterium Paenibacillus polymyxa E681 were investigated, which showed the existence of only an indole-3-pyruvic acid (IPA) pathway for IAA biosynthesis from the bacterium. Four open reading frames (ORFs) encoding indole-3-pyruvate decarboxylase-like proteins and putative indole-3-pyruvate decarboxylase (IPDC), a key enzyme in the IPA synthetic pathway, were found on the genome sequence database of P. polymyxa and cloned in Escherichia coli DH5$\alpha$. One of the ORFs, PP2_01257, was assigned as probable indole-3-pyruvate decarboxylase. The ORF consisted of 1,743 nucleotides encoding 581 amino acids with a deduced molecular mass of 63,380 Da. Alignment studies of the deduced amino acid sequence of the ORF with known IPDC sequences revealed conservation of several amino acids in PP2_01257, essential for substrate and cofactor binding. Recombinant protein, gene product of the ORF PP2_01257 from P. polymyxa E681, was expressed in E. coli BL21 (DE3) as a glutathione S-transferase (GST)-fusion protein and purified to homogeneity using affinity chromatography. The molecular mass of the purified enzyme showed about 63 kDa, corresponding closely to the expected molecular mass of IPDC. The indole-3-pyruvate decarboxylase activity of the recombinant protein, detected by HPLC, using IPA substrate in the enzyme reaction confirmed the identity and functionality of the enzyme IPDC from the E681 strain.
Pneumocystis carinii is a major opportunistic pathogen which has been found in the lungs of a wide variety of mammalian host species, and the fact suggests the possibility of intraspecific variation. Until now, P. carinii from different mammalian species are differentiated as subspecies, and the rats are known to be infected by two subspecies. The present study investigated genetic heterogeneity of P. carinii isolates from two strains of rats in Korea and China by molecular karyotyping, RFLP and sequencing analysis. Karyotypes of P. carinii were grouped into three, two from two strains of rats In Korea and one from rats in China. However RFLP of PCR product of ribosomal and MSG gene of the P. carinii isolates showed same pattern. The sequence homology rates of ${\alpha}-tubulin$ DNA of the P. carinii isolates were 96% in Seoul Wistar rats, 93% in Seoul Sprague-Dawley rats, and 85% in Chinese Sprague-Dawley rats. The present finding confirmed that P. carinii from rats in Korea are grouped into two karyotype strains which are different from that of P. carinii from rats in China. The Chinese isolate shows a little different sequences of ${\alpha}-tubulin$ DNA.
Jeong, Haeyoung;Choi, Sanghaeng;Park, Gun-Seok;Ji, Yosep;Park, Soyoung;Holzapfel, Wilhelm Heinrich;Mathara, Julius Maina;Kang, Jihee
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.47
no.1
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pp.25-33
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2019
Lactobacillus rhamnosus BFE5264, isolated from a Maasai fermented milk product ("kule naoto"), was previously shown to exhibit bile acid resistance, cholesterol assimilation, and adhesion to HT29-MTX cells in vitro. In this study, we re-annotated and analyzed the previously reported complete genome sequence of strain BFE5264. The genome consists of a circular chromosome of 3,086,152 bp and a putative plasmid, which is the largest one identified among L. rhamnosus strains. Among the 2,883 predicted protein-coding genes, those with carbohydrate-related functions were the most abundant. Genome analysis of strain BFE5264 revealed two consecutive CRISPR regions and no known virulence factors or antimicrobial resistance genes. In addition, previously known highly variable regions in the genomes of L. rhamnosus strains were also evident in strain BFE5264. Pairwise comparison with the most studied probiotic strain L. rhamnosus GG revealed strain BFE5264-specific deletions, probably due to insertion sequence-mediated recombination. The latter was associated with loss of the spaCBA pilin gene cluster and exopolysaccharide biosynthetic genes. Comparative genomic analysis of the sequences from all available L. rhamnosus strains revealed that they were clustered into two groups, being within the same species boundary based on the average nucleotide identities. Strain BFE5264 had a sister group relationship with the group that contained strain GG, but neither ANI-based hierarchical clustering nor core-gene-based phylogenetic tree construction showed a clear distinctive pattern associated with the isolation source, implying that the genotype alone cannot account for their ecological niches. These results provide insights into the probiotic mechanisms of strain BFE5264 at the genomic level.
Kim, Ki-Chan;Lee, Seung-Don;Han, Ju-Hee;Sohng, Jae-Kyung;Liou, Kwang-Kyoung
한국생물공학회:학술대회논문집
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2000.11a
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pp.749-754
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2000
PCR primers were designed based on consensus sequences of dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase, one of the enzymes involved in the biosynthesis of deoxysugar. The PCR product (360 bp) was obtained from Thermus caldophilus GK24. Colony hybridization was carried out to the cosmid library constructed from T. caldophilus GK24 genomic DNA by the PCR product DNA fragment. We isolated a cosmid clone (pSMTC-1) that was subcloned to call pKCB series plasmid (BamHI fragments), partially sequenced and analyzed. pKCB80 (4.2 kb-BamHI DNA fragment) of them showed ORFs that was orfA, orfB, orfC and orfD. The orfABCD gene cluster is the deosysugar biosynthetic gene ; orfA (glucose-1-phosphate thymidylytransferase), orfB (dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase), orfC (dTDP-4-keto-L-rhamnose reductase) and orfD (dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose 3,5-epimerase). The gene cluster that was related in biosynthesis of dTDP-L-rhamnose was also identified by computer analysis, and we proposed that the biosynthetic pathway of deoxysugar analyzed from DNA sequencing of pKCB80 is from D-glucose-1-phosphate, dTDP-D-glucose, dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose via dTDP-4-keto-L-rhamnose to dTDP-L-rhamnose.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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