Journal of mucopolysaccharidosis and rare diseases
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제5권1호
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pp.39-41
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2021
Prader-Willi syndrome (PWS) is a rare genetic neurodevelopmental disorder of hyperphagia leading to severe obesity, intellectual deficits, compulsivity, and other behavioral problems. PWS is caused by the inactivation of contiguous genes on chromosome 15q11-q13, which complicates the development of targeted, effective therapeutics. Various preclinical studies have been conducted by developing mouse models that exhibit phenotypes similar to PWS. Oxytocin deficiency in PWS is associated with hyperphagia with impaired satiety and, food-seeking and behavior disorders. Here, we summarize the oxytocin study of ingestion behavior tested in the PWS mouse model and published data from clinical trials that have evaluated treatment effectiveness on ingestion behavior and social dysfunction in patients with PWS.
Although many diseases could be treated by the development of modern medicine, there are some incurable diseases including brain cancer, Alzheimer disease, etc. To study human brain cancer, various animal models were reported. Among these animal models, mouse models are valuable tools for understanding brain cancer characteristics. In spite of many mouse brain cancer models, it has been difficult to find a new target molecule for the treatment of brain cancer. One of the reasons is absence of large animal model which makes conducting preclinical trials. In this article, we review a recent study of molecular characteristics of human brain cancer, their genetic mutation and comparative analysis of the mouse brain cancer model. Finally, we suggest the need for development of large animal models using somatic cell nuclear transfer in translational research.
DMSO (dimethyl sulfoxide)는 친유성 화합물을 용해하는 성질과 뇌혈관장벽(Blood-brain barrier)을 투과하는 화학적 특성으로 인해 근위축성 측삭경화증(amyotrophic lateral sclerosis) 등의 퇴행성 뇌신경질환을 타겟으로 하는 전임상 연구에서 용매로 널리 활용되고 있다. 그러나 DMSO를 활용한 연구 결과에 대하여 본 물질에 대한 생화학적 효과는 간과되고 있다. 본 연구에서는 근위축성 측삭경화증의 질환동물 모델인 SOD1-G93A형질 전환 마우스에 5% DMSO를 장기간 경구 투여하여 질병 표현형에 미치는 영향을 생존기간을 포함하여 신경학적, 기능학적, 조직학적으로 분석하였다. DMSO를 투여한 SOD1-G93A 동물군에서 DMSO 비투여군 보다 생존 기간과, 로타로드와 악력 측정으로 평가한 근육 기능이 유의미하게 증가했고, neurological score 가 감소했다. 반면, DMSO 투여군에서 DMSO 비투여군 대비하여 척수 운동 신경 세포와 신경근접합부가 보존되지 않았다. DMSO 투여는 SOD1-G93A형질 전환 마우스의 운동 신경 세포의 조직학적 영향을 미치지 않았지만, 신경 증상 완화와 생존 기간 등 개선된 마우스의 quality of life을 확인하였다. 본 연구 결과, DMSO를 이용한 퇴행성 뇌 질환 전임상 연구 및 후보 약물 효능 평가 시 DMSO의 생화학적 특성에 대한 종합적인 고려가 필요한 것으로 보인다.
Gastric cancer is one of the most common cancers in the world. Animal models have been used to elucidate the details of the molecular mechanisms of various cancers. However, most inbred strains of mice have resistance to gastric carcinogenesis. Helicobacter infection and carcinogen treatment have been used to establish mouse models that exhibit phenotypes similar to those of human gastric cancer. A large number of transgenic and knockout mouse models of gastric cancer have been developed using genetic engineering. A combination of carcinogens and gene manipulation has been applied to facilitate development of advanced gastric cancer; however, it is rare for mouse models of gastric cancer to show aggressive, metastatic phenotypes required for preclinical studies. Here, we review current mouse models of gastric carcinogenesis and provide our perspectives on future developments in this field.
Breast cancer remains the second leading cause of cancer death among woman, worldwide, despite advances in identifying novel targeted therapies and the development of treating strategies. Classification of clinical subtypes (ER+, PR+, HER2+, and TNBC (Triple-negative)) increases the complexity of breast cancers, which thus necessitates further investigation. Mouse models used in breast cancer research provide an essential approach to examine the mechanisms and genetic pathway in cancer progression and metastasis and to develop and evaluate clinical therapeutics. In this review, we summarize tumor transplantation models and genetically engineered mouse models (GEMMs) of breast cancer and their applications in the field of human breast cancer research and anti-cancer drug development. These models may help to improve the knowledge of underlying mechanisms and genetic pathways, as well as creating approaches for modeling clinical tumor subtypes, and developing innovative cancer therapy.
V. Michael Holers;Francisco G. La Rosa;Nirmal K. Banda
IMMUNE NETWORK
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제21권6호
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pp.45.1-45.13
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2021
Many mouse models of rheumatoid arthritis have been identified, but only a limited number are present for axial spondyloarthritis (AxSpA). Collagen Ab-induced arthritis (CAIA) is one of the most widely used mouse models of arthritis, and it is complement-dependent. We found that mice developing CAIA also developed spinal lesions similar to those found in AxSpA. To induce CAIA, mice were injected intraperitoneally at day 0 with anti-collagen Abs, followed by LPS injection at day 3. CAIA mice demonstrated a significant kyphosis through the spine, as well as hypertrophic cartilage and osseous damage of the intravertebral joints. Immunohistochemical staining of the kyphotic area revealed increased complement C3 deposition and macrophage infiltration, with localization to the intravertebral joint margins. Near Infrared (NIR) in vivo imaging showed that anti-collagen Abs conjugated with IRDye® 800CW not only localized to cartilage surface in the joints but also to the spine in arthritic mice. We report here a novel preclinical mouse model in which, associated with the induction of CAIA, mice also exhibited salient features of AxSpA; this new experimental model of AxSpA may allow investigators to shed light on the local causal mechanisms of AxSpA bone and soft tissue changes as well as treatment.
Objective: The effects of cryopreservation with or without coculture on the in vitro development of blastomere-biopsied 8-cell mouse embryos were investigated. This experimental study was originally designed for the setup of a preclinical mouse model for the preimplantation genetic diagnosis (PGD) in human. Methods: Eight-cell embryos were obtained after in vitro fertilization (IVF) from F1 hybrid mice (C57BL(표현불가)/CBA(표현불가)). Using micromanipulation, one to four blastomeres were aspirated through a hole made in the zona pellucida by zona drilling (ZD) with acid Tyrode's solution (ATS). A slow-freezing and rapid-thawing protocol with 1.5M dimethyl sulfoxide (DMSO) and 0.1M sucrose as cryoprotectant was used for the cryopreservation of blastomere- biopsied 8-cell mouse embryos. After thawing, embryos were cultured for 110 hours in Ham's F-10 supplemented with 0.4% bovine serum albumin (BSA). In the coculture group, embryos were cultured for 110 hours on the monolayer of Vero cells in the same medium. The blastocyst formation was recorded, and the embryos developed beyond blastocyst stage were stained with 10% Giemsa to count the total number of nuclei in each embryo. Results: The survival rate of embryos after cryopreservation was significantly lower in the blastomere-biopsied (7/8, 6/8, 5/8, and 4/8 embryos) groups than in the non-biopsied, zona intact (ZI) group. Without the coculture, the blastocyst formation rate of embryos after cryopreservation was not significantly different among ZI, the zona drilling only (ZD), and the balstomere-biopsied groups, but it was significantly lower than in the non-cryopreserved control group. The mean number of cells in embryos beyond blastocyst stage was significantly higher in the control group ($50.2{\pm}14.0$) than in 6/8 ($26.5{\pm}6.2$), 5/8 ($25.0{\pm}5.5$), and 4/8 ($17.8{\pm}7.8$) groups. With the coculture using Vero cells, the blastocyst formation rate of embryos after cryopreservation was significantly lower in 5/8 and 4/8 groups, compared with the control, 7/8, and 6/8 groups. The mean number of cells in embryos beyond blastocyst stage was also significantly lower in 4/8 group ($25.9{\pm}10.2$), compared with the control ($50.2{\pm}14.0$), 7/8 ($56.0{\pm}22.2$), and 6/8 ($55.3{\pm}25.5$) groups. Conclusion: After cryopreservation, blastomere-biopsied mouse embryos have a significantly impaired developmental competence in vitro, but this detrimental effect might be prevented by the coculture with Vero cells in 8-cell mouse embryos biopsied one or two blastomeres. Biopsy of mouse embryos after ZD with ATS is a safe and highly efficient preclinical model for PGD of human embryos.
Kim, Kyoung-Tae;Streijger, Femke;Manouchehri, Neda;So, Kitty;Shortt, Katelyn;Okon, Elena B.;Tigchelaar, Seth;Cripton, Peter;Kwon, Brian K.
Journal of Korean Neurosurgical Society
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제61권5호
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pp.539-547
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2018
Traumatic spinal cord injury (SCI) research has recently focused on the use of rat and mouse models for in vivo SCI experiments. Such small rodent SCI models are invaluable for the field, and much has been discovered about the biologic and physiologic aspects of SCI from these models. It has been difficult, however, to reproduce the efficacy of treatments found to produce neurologic benefits in rodent SCI models when these treatments are tested in human clinical trials. A large animal model may have advantages for translational research where anatomical, physiological, or genetic similarities to humans may be more relevant for pre-clinically evaluating novel therapies. Here, we review the work carried out at the University of British Columbia (UBC) on a large animal model of SCI that utilizes Yucatan miniature pigs. The UBC porcine model of SCI may be a useful intermediary in the pre-clinical testing of novel pharmacological treatments, cell-based therapies, and the "bedside back to bench" translation of human clinical observations, which require preclinical testing in an applicable animal model.
To develop a biomarker predicting tumor treatment efficacy is helpful to reduce time, medical expenditure, and efforts in oncology therapy. In clinics, microvessel density using immunohistochemistry has been proposed as an indicator that correlates with both tumor size and metastasis of cancer. In the preclinical study, we hypothesized that vascular morphometrics using optical coherence tomography angiography (OCTA) could be potential indicators to estimate the treatment efficacy of breast cancer. To verify this hypothesis, a 13762-MAT-B-III rat breast tumor was grown in a dorsal skinfold window chamber which was applied to a nude mouse, and the change in vascular morphology was longitudinally monitored during tumor growth and metronomic cyclophosphamide treatment. Based on the daily OCTA maximum intensity projection map, multiple vessel parameters (vessel skeleton density, vessel diameter index, fractal dimension, and lacunarity) were compared with the tumor size in no tumor, treated tumor, and untreated tumor cases. Although each case has only one animal, we found that the vessel skeleton density (VSD), vessel diameter index and fractal dimension (FD) tended to be positively correlated with tumor size while lacunarity showed a partially negative correlation. Moreover, we observed that the changes in the VSD and FD are prior to the morphological change of the tumor. This feasibility study would be helpful in evaluating the tumor vascular response to treatment in preclinical settings.
The genetic defects in human gametes and embryos can cause adverse effects on overall reproductive events. Biopsy of embryos for preimplantation genetic diagnosis (PGD) offers a new possibility of having children free of the genetic disease. In addition, advanced embryo culture method may enhance the effectiveness of embryo biopsy for the practical application of PGD. This experimental study was undertaken to evaluate the effects of coculture on the development in vitro of biopsied mouse embryos as a preclinical model for PGD of human embryos. Embryos were obtained after in vitro fertilization (IVF) from F1 hybrid mice (C57BLfemale/CBAmale). Using micromanipulation, 1, 2, 3 or 4 blastomeres of 8-cell stage embryos were aspirated through a hole made in the zona pellucida by zona drilling (ZD) with acidic Tyrode's solution (ATS). After biopsy of blastomeres, embryos were cultured in vitro for 110 hours in Ham's F-10 supplemented with 0.4% BSA or cocultured on the monolayer of Vero cells in the same medium. The frequence of blastocyst formation were recorded, and the embryos beyond blastocyst stage were stained with 10% Giemsa to count the total number of nuclei in each embryo. There was no significant difference in the blastocyst formation between the zona intact control group and the zona drilling (ZD) only, or biopsied groups. The hatching rate of all the treatment groups except 4/8 group was significantly higher than that of control group. In all the treatment groups, there was a significant reduction in the mean cell number of embryos beyond blastocyst stage ($50.2{\pm}14.0$ in control group vs. $41.2{\pm}7.9$ in ZD, $39.3{\pm}8.8$ in 7/8, $29.7{\pm}6.4$ in 6/8, $25.1{\pm}5.7$ in 5/8, and $22.1{\pm}4.3$ in 4/8 groups, p<0.05). When the same treatments were followed by coculture with Vero cells, a similar pattern was seen in the blastocyst formation and the hatching rate. However, in all the treatment groups, there was a significant increase in the mean cell number of embryos beyond blastocyst stage with coculture, compared with the parallel groups without coculture. In the cleavage rate of biopsied blastomeres cultured for 110 hours after IVF, there was no significant difference between coculture and non-coculture groups (87.2% vs. 78.7%). However, the mean cell number of embryos developed from the biopsied blastomeres was significantly higher in coculture group ($11.5{\pm}4.7\;vs.\;5.9{\pm}1.9$, p<0.05). In conclusion, biopsy of mouse embryos after ZD with ATS is a safe and highly efficient method for PGD, and coculture with Vero cells showed a positive effect on the development in vitro of biopsied mouse embryos and blastomeres as a preclinical model for PGD of human embryos.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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