Lupeol은 pentacyclic triterpene의 일종으로 다양한 질병에 약리 효과가 있는 것으로 보고되어 있으나, lupeol이 포도당 흡수에 미치는 영향은 아직 보고된 바 없다. 본 연구에서 3T3-L1 지방세포에서 포도당 흡수에 대한 lupeol의 효과를 조사하였다. 그 결과, Lupeol은 3T3-L1 지방세포에서 GLUT4를 원형질막으로 이동시켜 포도당 흡수를 촉진하였으며, 이는 PI3K/AKT 및 AMPK 경로의 활성화와 관련되어 있었다. PI3K/AKT 경로에서 lupeol은 PI3K를 활성화시키는 insulin receptor substrate 1의 인산화와 AKT의 인산화를 촉진하지만 비정형 단백질 키나아제 C isoforms ζ 및 λ의 인산화는 촉진하지 않았다. 반면, lupeol은 5 'AMP-activated protein kinase의 인산화를 촉진하였고, Lupeol의 의한 AMPK의 활성화는 원형질막-GLUT4의 발현과 세포내 포도당 흡수를 증가시키는 것으로 확인되었다. 3T3-L1 지방세포에서 lupeol에 의한 포도당 흡수 효과는 PI3K 억제제인 wortmannin 및 AMPK 억제제인 Compound C에 의해 억제됨을 통해 확인하였다. 본 연구 결과는 lupeol이 3T3-L1 지방세포에서 PI3K/AKT 및 AMPK 경로를 통해 원형질막 GLUT4의 발현을 자극함으로써 인슐린 감수성을 증가시켜 포도당 흡수를 촉진할 수 있음을 제시하고 있다.
The leukocyte NADPH oxidase of neutrophils is a membrane-bound enzyme that catalyzes the production of $O_2^-$ from oxygen using NADPH as an electron donor. Dormant in resting neutrophils, the enzyme acquires catalytic activity when the cells are exposed to appropriate stimuli. During activation, the cytosolic oxidase components $p47^{phox}$ and $p67^{phox}$ migrate to the plasma membrane, where they associate with cytochrome $b_{558}$, a membrane-bound flavohemoprotein, to assemble the active oxidase. The oxidase can be activated in a cell-free system; the activating agent usually employed is an anionic amphiphile such as sodium dodecyl sulfate (SDS). Because $p47^{phox}$ can translocate by itself during activation, the conformational change in $p47^{phox}$ may be responsible for the activation of NADPH oxidase. We show here that the treatment of $p47^{phox}$ with SDS leads to an increase in the reactivity of the sutbydryl group of cysteines toward N-ethylmaleimide, indicating that the conformational change occurs when $p47^{phox}$ is exposed to SDS. We propose that this change in conformation results in the appearance of a binding site through which $p47^{phox}$ interacts with cytochrome $b_{558}$during the activation process.
The effect of Ca2+ on auxin-induced ehtylene production in etiolated mungbean (Vigna radiata W.) hypocotyls was studied. Auxin-induced ethylene production by mungbean seedlings which had been germinated in the presence of 5-10mM Ca2+ (High Ca2+ ; HC) is greater than that by seedlings which had been germinated in distilled water (Low Ca2+ ; LC). The effect of Ca2+ on auxin-induced ethylene production was greatly increased after 12hr of incubation period. The stimulation of auxin-induced ethylene production by Ca2+ was specific, since divalent cations, such as Mg2+ and Mn2+ did not enhance auxin-induced ethylene production. Calcium also promoted ethylene evoluation induced by methionine and 1-Aminocyclopropane-1-carboxylic acid(ACC). The effect of Ca2+ on auxin-induced ethylene production was not caused by increase in free IAA or ACC contents of hypocotyl tissue. Dimethyl sulfoxide and Triton X-100, that disrupts the emembranes, inhibited ethylene production to a greater extent in LC segments than in HC segments. Addition of Ca2+ to the incubation medium for LC segments resulted in enchancement of ethylene production probalby because the membrane integrity is supported under these conditions. Comparison of activity of Ethylene Forming Enzyme(EFE) in LC and HC hypocotyl segments indicated that the enzyme activity of HC was about 2 times higher than that of L.C. It is suggested that Ca2+ increases the activity of plasma membrane-bound EFE through its stabilizing effect onn the membrane, which in turn brings about promotion of ethylene production.
Acid-sensing ion channels (ASICs) are proton-gated cation channels widely expressed in the nervous system. Proton sensing by ASICs has been known to mediate pain, mechanosensation, taste transduction, learning and memory, and fear. In this study, we investigated the differential subcellular localization of ASIC2a and ASIC3 in heterologous expression systems. While ASIC2a targeted the cell surface itself, ASIC3 was mostly accumulated in the ER with partial expression in the plasma membrane. However, when ASIC3 was co-expressed with ASIC2a, its surface expression was markedly increased. By using bimolecular fluorescence complementation (BiFC) assay, we confirmed the heteromeric association between ASIC2a and ASIC3 subunits. In addition, we observed that the ASIC2a-dependent surface trafficking of ASIC3 remarkably enhanced the sustained component of the currents. Our study demonstrates that ASIC2a can increase the membrane conductance sensitivity to protons by facilitating the surface expression of ASIC3 through herteromeric assembly.
It is well known that the Escherichia coli inner membrane-bound protease DegS is a periplasmic stress sensor for unfolded outer membrane proteins (OMPs). Previous studies have also shown that the outer membrane protease OmpT activates plasminogen in vitro and this may be exploited by bacteria in the course of pathogenesis. However, there has been no research on the plasminogen activation ability of the important periplasmic protein DegS. Accordingly, in this study, the whole-length and truncated degS genes were separately overexpressed in Escherichia coli, the recombinant proteins purified by affinity chromatography, and their plasminogen activator role tested in vitro. The results suggested that the whole-length DegS was able to activate plasminogen on a plasma plate. The truncated form of DegS (residues 80-345), designated ${\Delta}DegS$, also acted as a plasminogen activator, as confirmed by different assays. The serine protease property of ${\Delta}DegS$ was verified based on the complete inhibition of its enzyme activity by PMSF (phenylmethanesulfonyl fluoride). Therefore, the present results indicate that DegS is a plasminogen activator in vitro.
Ankyrins are a ubiquitously expressed family of intracellular adaptor proteins involved in targeting diverse proteins to specialized membrane domains in both the plasma membrane and the endoplasmic reticulum. Canonical ankyrins are 190-220 kDa proteins expressed in most tissues and cell types and comprise a membrane-binding domain (MBD) of 24 ANK repeats, a spectrin-binding domain, a death domain and a C-terminal domain. Rescue studies with ankyrin-B/G chimeras have identified the C-terminal domain of ankyrin-B as the defining domain in specifying ankyrin-B activity, but the function of C-terminal domain of ankyrin-B is, however, not known. We report here that the C-terminal domain of ankyrin-B is capable of interacting with the C-terminal Region of Hsp40. The Hsps are induced not only by heat shock but also by various other environmental stresses. Hsps are also expressed constitutively at normal growth temperatures and have basic and indispensable functions in the life cycle of proteins as molecular chaperones, as well as playing a role in protecting cells from the deleterious stresses. The binding sites required in the interaction between C-terminal domain of ankyrin-B and C-terminal region of Hsp40 were characterized using the yeast two-hybrid system and GST-pull down assay. The interaction between ankyrin-B and Hsp40 represents the first direct evidence of ankyrin's role as chaperones.
Membrane-type 1 matrix metalloproteinase (MT1-MMP) is a zinc-dependent proteinase found in cholesterol-rich lipid rafts on the plasma membrane. MT1-MMP hydrolyzes extracellular matrix (ECM) proteins, activates pro-matrix metalloproteinase-2 (proMMP-2) and plays an important role in ECM remodeling, cancer cell migration and metastasis. The role of caveolin-1, an integral protein of caveolae, in the activation of MT1-MMP remains largely unknown. Here, we show that the expression of caveolin-1 attenuates the activation of proMMP-2, reduces proteolytic cleavage of ECM and inhibits cell migration. We utilized the cytoplasmic tail domain deletion (${\Delta}CT$) or the E240A mutant of MT1-MMP. Co-expression of caveolin-1 with the wild-type or the ${\Delta}CT$ MT1-MMP decreased the proMMP-2 activation and inhibited collagen degradation and cell migration. Caveolin-1 had no effect on the catalytically inert E240A MT1-MMP. Our findings suggest that caveolin-1 is essential in the down-regulation of MT1-MMP activity by promoting internalization from the cell surface.
Pleurocidin, a 25-mer antimicrobial peptide, has been known to exhibit potent antibacterial activity. To investigate the functional roles in N- and C-terminal regions of pleurocidin on the antibacterial activity, we designed four truncated analogs. The antibacterial susceptibility testing showed that pleurocidin and its analogs exerted antibacterial effect against various bacterial strains and further possessed specific activity patterns corresponding with their hydrophobic scale [pleurocidin > Anal 3 (1-22) > Anal 1 (4-25) > Anal 4 (1-19) > Anal 2 (7-25)]. Fluorescence experiments using 1,6-diphenyl-1,3,5-hexatriene (DPH) and 3,3'-dipropylthiadicarbocyanine iodide [$diSC_3(5)$] indicated that the differences in antibacterial activity of the peptides were caused by its membrane-active mechanisms including membrane disruption and depolarization. Blue shift in tryptophan fluorescence demonstrated that the decrease in net hydrophobicity attenuates the binding affinity of pleurocidin to interact with plasma membrane. Therefore, the present study suggests that hydrophobicity in the N- and C-terminal regions of pleurocidin plays a key role in its antibacterial activity.
Ergosterol, an essential constituent of membrane lipids of yeast, is distributed in both the cell membrane and intracellular endomembrane components such as vacuoles. Honokiol, a major polyphenol isolated from Magnolia officinalis, has been shown to inhibit the growth of Candida albicans. Here, we assessed the effect of honokiol on ergosterol biosynthesis and vacuole function in C. albicans. Honokiol could decrease the ergosterol content and upregulate the expression of genes related with the ergosterol biosynthesis pathway. The exogenous supply of ergosterol attenuated the toxicity of honokiol against C. albicans. Honokiol treatment could induce cytosolic acidification by blocking the activity of the plasma membrane Pma1p H+-ATPase. Furthermore, honokiol caused abnormalities in vacuole morphology and function. Concomitant ergosterol feeding to some extent restored the vacuolar morphology and the function of acidification in cells treated by honokiol. Honokiol also disrupted the intracellular calcium homeostasis. Amiodarone attenuated the antifungal effects of honokiol against C. albicans, probably due to the activation of the calcineurin signaling pathway which is involved in honokiol tolerance. In conclusion, this study demonstrated that honokiol could inhibit ergosterol biosynthesis and decrease Pma 1p H+-ATPase activity, which resulted in the abnormal pH in vacuole and cytosol.
Objective: Sperm vitrification leads to the production of reactive oxygen species (ROS) that can damage the functional parameters of sperm. The present study aimed to investigate the antioxidant effect of Nigella sativa extract on motility, plasma membrane function, mitochondrial membrane potential (MMP), DNA damage, and intracellular ROS production. Methods: A total of 20 sperm samples were used. Samples were divided into six experimental groups, including groups with aqueous extract from N. sativa seeds at concentrations of 1% to 6%, a cryopreserved control group, and a fresh control group. Results: Statistical analysis showed significantly higher total sperm motility at concentrations of 3% to 6% than in the vitrified semen control group. Additionally, progressive motility and all motion characteristics at all concentrations were significantly higher than in the vitrified semen control group. The presence of N. sativa seed extract also improved the quality of the sperm parameters assayed in all experimental groups (1%-6%; intracellular ROS production, DNA damage, MMP, and sperm membrane function) compared to the control group. Conclusion: Higher concentrations of N. sativa led to improvements in all sperm parameters and sperm quality. These findings indicate that N. sativa seed extract is effective for improving the quality of sperm after vitrification.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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