It has been known that Δ-desaturase (TAD5) in the biosynthetic pathway of long chain polyunsaturated fatty acids of Thraustochytrium aureumis responsible for the conversion of di-homo-${\gamma}$-linolenic acid (C20:4) into arachidonic acid (C20:4). The genetic sequence analysis on TAD5 of Thraustochytrium aureum ATCC34304 used in this study showed that it has two amino acid changes when compared to that of Thraustochytrium aureum TAD5 first reported in 2003. Accordingly, Thraustochytrium aureum ATCC34304 TAD5 was named TAD5_1. TAD5_1-inserted methylotropic Pichia pastoris was prepared and then cultured with a precursor fatty acid, di-homo-${\gamma}$-linolenic acid. GC analysis confirmed that a certain amount of the precursor fatty acid was converted into arachidonic acid. In this study, not only a recombinant Pichia pastoris with the typical activity of ${\Delta}5$-desaturase which plays an essential role in the biosynthesis of LCPUFAs was successfully made but also the preparationpotential of a recombinant Pichia pastoris strain which may synthesize eicosapentaenoic acid (EPA) and docosahexaenoic acid (DHA) that are important in maintaining and improving human's brain function was proposed.
The expression and antibacterial. activity of recombinant human lactoferrin (hLf) was studied from methylotrophic yeast Pichia pastoris. The gene encoding hLf, isolated from human breast cDNA library, was subcloned into the expression vector, pPIC3.5K under the control of AOX1 promoter. The gene was integrated into the host chromosome and was identified by Southern blotting. The expression of the integrated gene was investigated by RT-PCR, Northern blotting, SDS-PAGE and Western blotting. Discrete band corresponding to hLf was detected from the SDS-PAGE, which was confirmed by Western blotting. The expression was also confirmed by RT-PCR and Northern blotting. The antibacterial activity of the recombinant hLf (rhLf) was investigated using Staphylococcus aureus ATCC 6538P and Micrococcus flavus ATCC 10240 as test organisms. The rhLf showed strong antibacterial activities against the bacteria. Furthermore, many Gram-negative animal pathogens such as E.coli ATCC8739, 25922, and Salmonella typhimurium 114 and 115, Pseudomonas fluorescens ID 963 I, P. aeruginosa KCCM 11802, and Gram-positive bacteria Bacillus mesentericus were also inhibited in their growth by the rhLf.
Interleukin-2 (IL-2) is a vital cytokine secreted by activated T lymphocytes, and plays an important role in the regulation of cellular functions and immunity of animals. In this study, the recombinant duck IL-2 (rduIL-2) was secretory expressed in Pichia pastoris (P. pastoris). The recombinant P. pastoris strain was cultured in shake flasks and then scaled up in a 5.0-l bioreactor. The result showed that the maximal fresh-cell-weight of 594.1 g/l and the maximal $OD_{600}$ of 408 were achieved in the bioreactor. The rduIL-2 was purified by two steps of purification procedures, and approximately 311 mg of rduIL-2/L fermentation supernatant was obtained. SDS-PAGE showed that the purified rduIL-2 constituted a homogeneous band of ~16 kDa or ~14 kDa corresponding to the glycosylated or non-glycosylated duIL-2 protein in size, respectively. The bioactivity of rduIL-2 was determined by lymphocyte proliferation assay. The result indicated that the rduIL-2 greatly promoted the proliferation of ConA-stimulated lymphocytes in vitro. The P. pastoris expression system described here could provide promising, inexpensive, and large-scale production of the rduIL-2, which lays the foundation for development of novel immunoadjuvants to enhance both the immunity of ducks against various infectious pathogens and vaccine efficacy.
CHOI, JAE-MUN;DOO-SANG KIM;MOON-SICK YANG;HYUNG-RAK KIM;JAE-HO KIM
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.11
no.6
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pp.1066-1070
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2001
The PhyA gene, encoding myo-inositol hexakisphosphate phosphohydrolase in Aspergillus niger var. awamori (wild-type), was cloned and sequenced. The cDNA was overexpressed by a multicopy gene expression system in Pichia pastoris KM71. Recombinant, wild-type and commercial phytase from Aspergilus ficuum NRRL 3135 (Natuphos) were purified. The PhyA gene of Aspergillus niger var awamori showed perfect homology to the phytase of Aspergillus ficcum and $97\%$ homology to A. niger var awamori (L02421). Wild-type phytase was highly glycosylated and more thermostable than the other two, while deglycosylated farms of three phytases showed identical molecular weight, 507 kDa. After heating at $80^{\circ}C$, wild-type, commercial, and recombinant phytases retained $57\%, 32%,\;and\;8\%$ of their original activities, respectively. In conclusion, glycosylation plays a key role in the thermostability of phytase and its enzymatic characterization.
The Pichia pastoris expression system is widely used for e production of recombinant proteins. In this study, we investigated the characteristics of cell growth and PLC production of recombinant Pichia pastoris. Especially, severed carbon sources like glycerol, glucose, sucrose, mannose, dextrose, xylitol, lactic acid, and acetic acid etc. were used to fermentations. The PLC activity was measured photometically.
Ferritin is an iron storage protein found in most living organisms. For expression and industrial use, human light chain ferritin (L-ferritin) was cloned from human liver cDNA library and expressed in Pichia pastoris strain GS115. The recombinant L-ferritin in Pichia pastoris was glycosylated. In a fed-batch culture, the cell mass reached about 57 g/l of dry cell weight, and the L-ferritin in the cell was increased to about 95 mg/l after 150 h. In an atomic absorption spectrometry analysis, the intracellular content of iron in the L-ferritin transformant was measured as $1,694{\pm}85\;\mu\textrm{g}g/g$, which is 5.4-fold more than that of the control strain. This L-ferritin transformant could serve as iron-fortified nutrients in animal feed stock.
As host for the production of eucaryotic heterologous proteins, methylotrophic yeast Pichia pastoris and Hansenula polymorpha are the most highly developed of a small group of alternative yeast species chosen for their perceived advantages. This paper describes the method to enhance the recombinant protein productivity with P. pastoris and H. Plymorpha. In these experiments, the effects of methanol induction timing, induction method, pH, culture temperature and kinds of nitrogen sources on foreign protein production were tested with P. pastoris and compared with H. polymorpha.. In addition, optimum methanol concentration as inducer and the effects of carbon sources on AOX1 or MOX promoter repression and secretion efficiency were also studied in both cases.
Candida Antarctica lipase A (CalA) has been used because of its suitability in industrial applications. CalA has unique features capable to accept tertiary and sterically hindered alcohols among many hydrolases. CalA gene was cloned and constructed in expression vector such as pColdIII/CalA and $pPICZ{\alpha}A$/CalA. The gene encoding pColdIII/CalA was functionally expressed in the cytoplasm of Escherichia coli $Origami^{TM}$ B (DE3) cells. The plasmid $pPICZ{\alpha}A$/CalA linearized by BstX I was integrated into 5'AOX1 region of the chromosomal DNA and was functionally expressed in the methyl atrophic yeast Pichia pastoris. Expressed CalA in P. pastoris (0.7 Unit/mL) showed 35 times higher activity than that in E. coli expression system (0.02 Unit/mL).
Acetyl xylan esterase gene (AXE) from Aspergillus ficuum was cloned and its Pichia expression plasmid, pPICZ$\alpha$C-AXE (4.6 kb), was constructed, in which the AXE gene was under the control of the AOXI promoter and connected downstream of mating factor u-1 signal sequence. The plasmid linearized by Sacl was integrated into the 5'AOXI region of the chromosomal DNA of P. pastoris. In the flask batch culture of P. pastoris transformant on methanol medium, the cell concentration and total AXEase activity reached at 6.0 g-dry cell weight/1 and 77 unit/ml after 36 h cultivation, respectively. In the fed-batch culture employing the optimized methanol and histidine feeding strategy, the cell concentration and total AXEase activity were significantly increased to about 97 g-dry cell weight/1 and 930 unit/ml. Most of AXEase activity (>90%) was found in the extracellular medium and the majority of extracellular protein (>80%) was AXEase enzyme (33.5 kDa). This result means that about 9.8 g/1 of AXEase protein was produced in the extracellular medium.
A recombinant Pichia pastoris carrying double expression cassette of Rhodotorula glutinis epoxide hydrolase(RgEH) gene was developed and used for preparing enantiopure (S)-styrene oxide from racemic mixture of styrene oxide. BglII restriction site of original RgEH gene (pPICZ B/RgEH #2) of previous report was mutated using PCR technique for the construction of double expression cassette containing promoter ($P_{AOX1}$), EH gene and transcription terminator ($TT_{AOX1}$) in pPICZ C vector. Double expression cassette with RgEH was inserted into the chromosomal DNA of P. pastoris. $V_{max}$ ($2.2{\mu}mol\;min^{-1}mg\;dcw^{-1}$) on (R)-styrene oxide of P. pastoris with double expression cassette was about 6-fold higher than that ($0.4{\mu}mol\;min^{-1}mg\;dcw^{-1}$) of P. pastoris with single expression cassette. For the determination of the optimal condition, the effects of detergent and temperature on the enantioselective hydrolytic activity and yield of the enantiomer were investigated. When the reaction was performed at $10^{\circ}C$ for 10 min in the presence of 0.5% Tween 20, enantiopure (S)-styrene oxide with 99.9% ee was obtained as the yield 43.4 % from 20 mM racemic sustrate.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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