세포기질에 존재하는 많은 종류의 단백질들은 N-말단에 존재하는 짧은 펩타이드들에 의해서 trans-golgi network(TGN)의 세포질쪽 막에 타기팅될때 중요한 역할을 수행한다고 보고되고 있다. 본 연구실에서도 이전에 바다달팽이인 군소에서 클로닝된 phosphodiesterase 4의 long-form의 경우 N-말단에 존재하는 20개의 아미노산 서열만으로도 충분히 HEK293T세포의 TGN의 세포질막에 타기팅 되게 하며, 이 펩타이드가 sulfatide와 PI4P에 결합성이 있다는 사실을 in vitro에서 확인하였다. 그래서, 본 연구에서는 sulfatide결합성과 TGN막 타기팅과의 연관성을 연구하고자 하였다. 이를 위해 우선 이전 문헌을 통해 sulfatide결합 펩타이드를 찾았고, 이를 GFP단백질과 융합하여 재조합 단백질(mHSBP-EGFP)을 만들어 세포내 타기팅을 실험해 보았다. 이러한 연구를 수행한 결과, mHSBP-EGFP가 HEK293T세포에서 TGN에 타기팅 되고, sulfatide결합이 망가진 돌연변이는 타기팅이 사라짐을 확인하였다. 또한, mHSBP-EGFP가 TGN에 타기팅 되는 것은 억제제인 antimycin A와 PAO와 adenosine에 의해 억제됨을 확인할 수 있었다. 이러한 사실을 통해, PAO와 adenosine에 민감한 인산화효소들, 그중에 PI4KII의 활성이 mHSBP-EGFP를 TGN으로 위치하게 하는데 중요한 역할을 수행한다고 추론할 수 있다.
Calcium entry through $Ca_v3.2Ca^{2+}$ channels plays essential roles for various physiological events including thalamic oscillation, muscle contraction, hormone secretion, and sperm acrosomal reaction. In this study, we examined how protein tyrosine phosphatases or protein tyrosine kinases affect $Ca_v3.2Ca^{2+}$ channels reconstituted in Xenopus oocytes. We found that $Ca_v3.2$ channel activity was reduced by 25% in response to phenylarsine oxide (tyrosine phosphatase inhibitor), whereas it was augmented by 19% in response to Tyr A47 or herbimycin A (tyrosine kinase inhibitors). However, other biophysical properties of $Ca_v3.2$ currents were not significantly changed by the drugs. These results imply that $Ca_v3.2$ channel activity is capable of being increased by activation of tyrosine phosphatases, but is decreased by activation of tyrosine kinases.
2-deoxy-D-glucose(2DG)-caused endoplasmic reticulum (ER) stress inhibits protein phosphorylation at tyrosine residues. However, the accurate regulatory mechanisms, which determine the inflammatory response of chondrocytes to ER stress via protein tyrosine phosphorylation, have not been systematically evaluated. Thus, in this study, we examined whether protein phosphorylation at tyrosine residues can modulate the expression and glycosylation of COX-2, which is reduced by 2DG-induced ER stress. We observed that protein tyrosine phosphatase (PTP) inhibitors, sodium orthovanadate (SOV), and phenylarsine oxide (PAO) significantly decreased expression of ER stress inducible proteins, glucose-regulated protein 94 (GRP94), and CCAAT/ enhancer-binding-protein- related gene (GADD153), which was induced by 2DG. In addition, we demonstrated that SOV and PAO noticeably restored the expression and glycosylation of COX-2 after treatment with 2DG. These results suggest that protein phosphorylation of tyrosine residues plays an important role in the regulation of expression and glycosylation during 2DG-induced ER stress in rabbit articular chondrocytes.
Gap junction protein, connexin, is expressed in endothelial cells of vessels, glomerulus, and renin secreting cells of the kidney. The purpose of this study was to investigate the role of gap junction in renin secretion and its underlying mechanisms using As 4.1 cell line, a renin-expressing clonal cell line. Renin release was increased proportionately to incubation time. The specific gap junction inhibitor, 18-beta glycyrrhetinic acid (GA) increased renin release in dose-dependent and time-dependent manners. Heptanol and octanol, gap junction blockers, also increased renin release, which were less potent than GA. GA-stimulated renin release was attenuated by pretreatment of the cells with amiloride, nifedipine, ryanodine, and thapsigargin. GA dose-dependently increased intracellular $Ca^{2+}$ concentration, which was attenuated by nifedipine, nimodipine, ryanodine, and thapsigargin. However, RP-cAMP, chelerythrine, tyrphostin A23, or phenylarsine oxide did not induced any significant change in GA-stimulated increase of intracellular $Ca^{2+}$ concentration. These results suggest that gap junction plays an important role on the regulation of renin release and intracellular $Ca^{2+}$ concentration in As 4.1 cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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