Acute toxicity of pectenotoxin 2 (PTX2) was examined in mice. Treatment of mice with a toxic dose of PTX2 resulted in clinical signs such as ataxia, cyanosis and an abrupt decrease in body temperature. Histopathological studies revealed that the liver is the major target organ for PTX2. Activities of serum alanine aminotransferase (ALT), aspartate aminotransferase (AST) and sorbitol dehydrogenase (SDH) were significantly elevated by PTX2 administration. Glucose-6-phosphatase activities were not changed by the treatment. The PTX2 treatment decreased relative liver weight without changing the body weight. The effect of PTX2 on hepatic drug metabolizing enzyme system was determined. An ip dose of PTX2 (200 $\mu$g/kg) induced a significant decrease in the hepatic microsomal protein content. Cytochrome P-450 content, cytochrome b$_5$ content, NADPH cytochrome c reductase, aminopyrine N-demethylase activities, or hepatic glutathione content were not altered by PTX2 treatment.
Pectenotoxin 2 (PTX2), isolated from marine sponges, was examined for its hepatotoxic potential using male ICR mice. PTX2 $(20\;or\;100\;{\mu}g/kg/day,\;ip)$ was administered to mice repeatedly for one or two week. Histopathological examination revealed an increase in granularity in the liver from the mice treated with PTX2. PTX2 did not alter the parameters for hepatotoxicity and nephrotoxicity such as sorbitol dehydrogenase (SDH), alanine aminotransferase (ALT), aspartate aminotransferase (AST) and blood urea nitrogen (BUN). Cytochrome P-450, cytochrome $b_5$, or NADPH cytochrome c reductase was net changed by repeated administration of PTX2. Hepatic microsomal activity of p-nitroanisole O-demethylase, but not aminopyrine N-demethylase, was slightly depressed by PTX2 administerd repeatedly $(100\;{\mu}g/kg/day,\;ip)$ fur 2 weeks. The toxicity of PTX2 $(200\;{\mu}g/kg/day,\;ip)$ was determined in mice pretreated with a metabolic inducer or inhibitor such as phenobarbital, 3-methyl-cholanthrene, $CoCl_2$, or SKF 525-A. Significant alterations in lethality and hepatotoxicity of PTX2 were observed in mice pretreated with a metabolic modulator. The results suggest that liver seems to be the target organ for PTX2 toxicity and also that induction of the PTX2 toxicity may be associated with hepatic drug metabolizing activity.
Shin, Dong Yeok;Kang, Ho Sung;Bae, Song-Ja;Jung, Jee H.;Choi, Yung Hyun
Journal of Marine Bioscience and Biotechnology
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v.1
no.2
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pp.63-70
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2006
Natural product compounds are the source of numerous therapeutic agents. The marine environment produces natural products from a variety of structural classes exhibiting activity against numerous disease targets including anticancer agents. Among these, pectenotoxin-2 (PTX-2), which was first identified as a cytotoxic entity in marine sponges, which depolymerizes actin filaments, was found to be highly effective and more potent to activate an intrinsic pathway of apoptosis in p53-deficient tumor cells compared to those with functional p53 both in vitro and in vivo. However, the anti-proliferative mechanism of the compound at non-cytotoxic concentrations has not yet been explored. In the current study, we sought to investigate anti-proliferation and apoptosis of PTX-2 against U937 human leukemic cells and its underlying molecular mechanism. Exposure of U937 cells to PTX-2 resulted in growth inhibition and induction of apoptosis in dose- and time-dependent manner as measured by MTT assay, fluorescent microscopy and flow cytometric analysis. The anti-proliferative effect of PTX-2 was associated with a marked increase in the expression of cyclin-dependent kinase p21 (WAF1/CIP1) mRNA which was tumor suppressor p53-independent. The increase in apoptosis was connected with a time-dependent down-regulation of anti-apoptotic Bcl-XL and inhibitor of apoptosis proteins (IAPs) family such as XIAP and cIAP-2. Though additional studies are needed, these findings suggested that PTX-2-induced inhibition of U937 cells was associated with the induction of apoptotic cell death and the results provided important new insights into the possible molecular mechanisms of the anti-cancer activity of PTX-2.
Through the screening of marine natural compounds that inhibit cancer cell proliferation, we previously reported that pectenotoxin-2 (PTX-2) isolated from marine sponges exhibits selective cytotoxicity against several cell lines in p53-deficient tumor cells compared to those with functional p53. However, the molecular mechanisms of its anti-proliferative action on malignant cell growth are not completely known. To further explore the mechanisms of its anti-cancer activity and to test whether the status of p53 in liver cancer cells correlates with their chemo-sensitivities to PTX-2, we used two well-known hepatocarcinoma cell lines, p53-deficient Hep3B and p53-wild type HepG2. We have demonstrated that PTX-2 markedly inhibits Hep3B cell growth and induces apoptosis whereas HepG2 cells are much more resistant to PTX-2 suggesting that PTX-2 seems to act by p53-independent cytotoxic mechanism. The apoptosis induced by PTX-2 in Hep3B cells was associated with the modulation of DNA fragmentation factor (DFF) family proteins, up-regulation of pro-apoptotic Bcl-2 family members such as Bax and Bcl-xS and activation of caspases (caspase-3, -8 and -9). Blockade of the caspase-3 activity by caspase-3 inhibitor, z-DEVD-fmk, prevented the PTX-2-induced growth inhibition in Hep3B cells. Moreover, treatment with PTX-2 also induced phosphorylation of AKT and extracellular-signal regulating kinase (ERK), but not c-Jun N-terminal kinase (JNK) and p38 mitogen-activated protein kinase (MARK). Specific inhibitors of PI3K inhibitor (LY294002) and ERK1/2 inhibitor (PD98059) significantly blocks PTX-2-induced-anti-proliferative effects, whereas a JNK inhibitor (SP600125) and a p38 MAPK inhibitor (SB203580) have no significant effects demonstrating that the pro-apoptotic effect of PTX-2 mediated through activation of AKT and ERK signal pathway in Hep3B cells.
We previously reported that p53 plays a role as a key regulator in the tetraploid G1 checkpoint, which is activated by actin damage-induced cytokinesis blockade and then prevents uncoupled DNA replication and nuclear division without cytokinesis. In this study, we investigated a role of Skp2, which targets CDK2 inhibitor p27/Kip1, in actin damage-induced tetraploid G1 arrest. Expression of Skp2 was reduced, but p27/Kip1 was increased, after actin damage-induced cytokinesis blockade. The role of Skp2 repression in tetraploid G1 arrest was investigated by analyzing the effects of ectopic expression of Skp2. After actin damage, ectopic expression of Skp2 resulted in DNA synthesis and accumulation of multinucleated cells, and ultimately, induction of apoptosis. These results suggest that Skp2 repression is important for sustaining tetraploid G1 arrest after cytokinesis blockade and is required to prevent uncoupled DNA replication and nuclear division without cytokinesis.
Lim, Young-Ja;Kim, Jung-Sun;Chung J. Shim;Lee, Chong-O.;Im, Kwang-Sik;Jee H. Jung
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1998.11a
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pp.89-94
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1998
Marine sponges are recognized as a plentiful source of diverse biologically active secondary metabolites. Recently, we have initiated a research to discover antitumor constituents from the marine sponges collected from Korean Waters. Marine sponges collected from the South Sea of Korea were screened for several biological activities including such as brine shrimp lethality and cytotoxicity. Significant brine shrimp lethality was detected in the crude extract of a two-sponge association of Poecillastra sp. and Jaspis sp. A cross-section of this sample showed two layers of morphologically distinct sponges. The thin and dirty yellow outer layer was identified as Poecillastra sp. (Pachastrellidae), the surface of which was very rough. The light-grey inner layer was identified as Jaspis sp. (Jaspidae), the surface of which was smooth. This two-sponge association appears to be consistent as these sponges were always found in associated form regardless of collection site or collection period. Investigation of the bioactive constituents monitored by brine shrimp lethality assay led to the isolation of pectenotoxin II (PTX2) and psammaplin A as causative compounds for the brine shrimp lethality. $^1$H- and $\^$13/C-nmr signals of PTX2 was fully assigned utilizing TOCSY, HETCOR, Long-range HETCOR, and Homonuclear J-resolved 2D experiments. PTX2 displayed very potent and selective cytotoxicities in the 60 cell line panel antitumor assay at the NCI. PTX2 has progressed to acute toxicity determination and in vivo antitumor assay at the NCI (Table 1). However, significant in vitro antitumor activity of PTX2 can not be affirmed in the in vivo assay.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.36
no.7
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pp.926-931
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2007
Diarrhetic shellfish poisons (DSP) such as okadaic acid (OA), dinophysistoxin-1 (DTX1), pectenotoxin-1(PTX1), PTX2, PTX6 and yessotoxin (YTX) were determined simultaneously by LC-MS/MS and mouse bioassay in the shellfishes (oyster, mussel, Washington purple clam, ark shell, scallop and short necked clam) collected at Tongyeong, from March to September, 2006. Oyster and mussel were found to contain DSP (0.05${\sim}$0.1 MU/g) in March by mouse bioassay; however, no DSP components were detected on the LC-MS/MS. Also, a small amount of DTX1 (0.05 ${\mu}g/g$) in mussel (June) and OA (0.01${\sim}$0.02 ${\mu}g/g$) in 5 species of shellfishes(August) were determined by LC-MS/MS.
To establish and validate a liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) method for the rapid and accurate quantitation of diarrhetic shellfish poisoning (DSP) toxins, we compared the results from different mobile phases and columns used for their analysis and collision energies for MS/MS experiments. Clear peaks of okadaic acid (OA) and dinophysistoxin-1 (DTX1) were obtained by using a mobile phase comprising aqueous acetonitrile containing 2 mM ammonium formate and 50 mM formic acid. The collision energies were optimized to facilitate the most sensitive detection for each toxin, namely, OA, DTX1, pectenotoxin-2 (PTX2), or yessotoxin (YTX). Further, the maximum ion response was obtained at a collision energy of 48 V for OA and DTX1. We compared the analytical performance of $C_8$ and $C_{18}$ columns. A wide range of toxins namely, OA, DTX1, PTX2, and YTX, except DTX3, were detected by both the columns. Although DTX3 was only detected by the $C_8$ column, we found that the $C_{18}$ column was also suitable for the quantitation of OA and DTX1 the toxins responsible for inducing diarrhea. The limit of detection of OA and DTX1 by the established LC-MS/MS conditions was 1 ng/g, and the limit of quantitation of the toxins under the same conditions was 3 ng/g. The process efficiencies were 91-118% for oysters (Crassostrea gigas) and 96-117% for mussels (Mytilus galloprovincialis) further, we observed no significant effect of matrix during the ionization process in LC-MS/MS. The comparison between mouse bioassay (MBA) and LC-MS/MS yielded varying results because low concentrations of OA and DTX1 were detected by LC-MS/MS in some shellfish samples, which provided positive results on MBA for DSP. The analysis time required by MBA for DSP analysis can be reduced by LC-MS/MS.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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