Loop-mediated isothermal amplification (LAMP)법은 등온에서 DNA 주형을 변성시키지 않고 실시하기 때문에, autocycling 가닥 변위 DNA 합성에 의존한다. 그래서 고가의 PCR 장비를 필요로 하지 않고 등온 유지가 가능한 저가의 장비인 항온 수조, 오븐, 온장고 등에서 증폭이 가능하다. 본 연구진은 Streptococcus parauberis의 random primer중에서 5개를 선정하여, 신장도가 높은 2개의 primer를 이용하여 최적 반응온도 및 최적 반응시간, 최적 반응 조건들을 확립하였다. 그리고 기존의 PCR과 LAMP의 민감도의 비교 분석을 측정한 결과, LAMP의 높은 검출 한계를 확인할 수 있었다. 본 논문에서는 non-target DNA의 영향을 받지 않고 등온 조건 하에서 DNA를 증폭시킬 수 있는 LAMP법과 SYBR-green I를 이용하여 시각화시켰으며, 기존의 PCR과 비교 분석함으로써, S. parauberis에 대한 신속하고 정확한 진단법을 확립하였다.
Bovine tuberculosis is an important zoonosis worldwide. Mycobacterium bovis, the causative agent of this disease in cattle, is also a pathogen for humans and several economically important animals. The cases of tuberculosis are reported in two cow found at slaughter house located in Gwangju city. Histopathologically, in the lymph nodes, granulomas consisted of large areas of necrosis surrounded by variable thick bands of cellular infiltrate containing macrophages, Langhans-type multinucleated giant cells and lymphocytes. Lesions in the lung followed the same developmental pattern as did lesions in the lymph nodes with some exceptions. With the acid-fast staining, numerous mycobacteria were revealed in the lung and lymph nodes. M bovis was confirmed as a causative agent in these cattle using bacterial isolation and PCR and restriction fragment length polymorphism method based on a unique 12.7 kb fragment insertion sequence from the Mycobacterium tuberculosis genome and the pncA polymorphism, The insertion element IS6110 and IS1081 were present M bovis isolated from lungs and lymph nodes of cattle using PCR assay. These cases are interesting and important in public health aspect that M bovis-infected cattle were found during a routine post-mortem inspection at slaughter house.
Brown Ring Disease (BRD) is a bacterial disease caused by Vibrio tapetis which affects cultured clam Ruditapes philippinarum and causes heavy economic losses on Atlantic coasts of france, Spain and England. In this study, to evaluate the effective detection of the pathogen, specific primer set based on 16S ribosomal RNA (rRNA) sequences designed for rapid detection of V. tapetis. Polymerase chain reaction (PCR) with this primer set produced the specific band for each V. tapetis. The length of PCR product using designed primer set of Vbts-F and Vbts-R was about 400 bp. Therefore, these primers will be provided with a basic tool for rapid detection of V. tapetis in the various cases such as examination of imported aquatic products, diagnosis of aquatic organisms, and etc.
We developed a multiplex PCR (mPCR) assay to simultaneously detect Chlamydia trachomatis, Neisseria gonorrhoeae, Mycoplasma genitalium, Ureaplasma urealyticum, Corynebacterium spp. and seudomona aeruginosa. This method employs a single tube and multiple specific primers which yield 200, 281, 346, 423, 542, and 1,427 bp PCR products, respectively. All the PCR products were easily detected by agarose gel electrophoresis and were sequenced to confirm the specificity of the reactions. To test this method, DNA extracted from urine samples was collected from 96 sexually transmitted disease or prostatitis patients at a local hospital clinical center, and were subjected to the mPCR assay. The resulting amplicons were cloned and sequenced to exactly match the sequences of known pathogenic isolates. N. gonorrhoeae and Corynebacterium spp. were the most frequently observed pathogens found in the STDs and prostatitis patients, respectively. Unexpectedly, P. aeruginosa was also detected in some of the STD and prostatitis samples. More than one pathogen species was found in 10% and 80.7% of STD and prostatitis samples, respectively, indicating that STD and prostatitis patients may have other undiagnosed and associates. The sensitivity of the assay was determined by sing purified DNA from six pathogenic laboratory strains and revealed that this technique could detect pathogenic DNA at concentrations ranging from 0.018 to $1.899\;pg/{\mu}l$. Moreover, the specificities of this assay were found to be highly efficient. Thus, this mPCR assay may be useful for the rapid diagnosis of causative infectious STDs and prostatitis. useful for the infectious STDs and prostatitis.
Tetanus is a specific infectious disease, which is often associated with catastrophic events such as earthquakes, traumas, and war wounds. The obligate anaerobe Clostridium tetani is the pathogen that causes tetanus. Once the infection of tetanus progresses to an advanced stage within the wounds of limbs, the rates of amputation and mortality increase manifold. Therefore, it is necessary to devise a rapid and sensitive point-of-care detection method for C. tetani so as to ensure an early diagnosis and clinical treatment of tetanus. In this study, we developed a detection method for C. tetani using loop-mediated isothermal amplification (LAMP) assay, wherein the C. tetani tetanus toxin gene was used as the target gene. The method was highly specific and sensitive, with a detection limit of 10 colony forming units (CFU)/ml, and allowed quantitative analysis. While detecting C. tetani in clinical samples, it was found that the LAMP results completely agreed with those of the traditional API 20A anaerobic bacteria identification test. As compared with the traditional API test and PCR assay, LAMP detection of C. tetani is simple and rapid, and the results can be identified through naked-eye observation. Therefore, it is an ideal and rapid point-of-care testing method for tetanus.
Background: Klebsiella spp. is an important conditional pathogen in humans and animals. However, due to the indiscriminate use of antibiotics, the incidence of antimicrobial resistance has increased. Objectives: The purpose of this study was to investigate antimicrobial resistance in strains of Klebsiella strains and the phylogenetic relatedness of extended-spectrum cephalosporin (ESC)-resistance among Klebsiella strains isolated from clinically ill companion animals. Methods: A total of 336 clinical specimens were collected from animal hospitals. Identification of Klebsiella species, determination of minimum inhibitory concentrations, detection of ESC resistance genes, polymerase chain reaction-based replicon typing of plasmids by conjugation, and multilocus sequence typing were performed. Results: Forty-three Klebsiella strains were isolated and, subsequently, 28 were identified as K. pneumoniae, 11 as K. oxytoca, and 4 as K. aerogenes. Eleven strains were isolated from feces, followed by 10 from ear, 7 from the nasal cavity, 6 from urine, 5 from genitals, and 4 from skin. Klebsiella isolates showed more than 40% resistance to penicillin, cephalosporin, fluoroquinolone, and aminoglycoside. ESCresistance genes, CTX-M groups (CTX-M-3, CTX-M-15, and CTX-M-65), and AmpC (CMY-2 and DHA-1) were most common in the K. pneumoniae strains. Some K. pneumoniae carrying CTX-M or AmpC were transferred via IncFII plasmids. Two sequence types, ST709 and ST307, from K. pneumoniae were most common. Conclusions: In conclusion, this is the first report on the prevalence, ESCresistance genotypes, and sequence types of Klebsiella strains isolated from clinically ill companion animals. The combination of infectious diseases and antimicrobial resistance by Klebsiella in companion animals suggest that, in clinical veterinary, antibiotic selection should be made carefully and in conjunction with the disease diagnosis.
Background: Chlamydophila felis, formerly known as Chlamydia psittaci var. felis, is frequently associated with ocular, respiratory, and occasionally reproduction tract infections. Even though the infection is sometimes asymptomatic, it potentially results in a latent immunosuppressive infection. Objective: This study aimed to identify occurrences of feline chlamydophilosis, rarely reported in cats in Indonesia. Methods: The observation was conducted in three cats with clinical signs of Cp. felis infection, particularly relapsing conjunctivitis. The cats' histories were recorded based on owners' information. Conjunctival swabs were sampled for cytology examination and molecular assay detection. A phylogenetic tree was generated using MEGA-X software to reveal group clustering. A post-mortem examination was performed on the cat that died during an examination. Results: Cp. felis was detected in both cytological examination and polymerase chain reaction assay. The phylogenetic tree demonstrated that the Cp. felis isolated in this study clustered with several other isolates from the other countries. Cp. felis can be isolated from cats with different clinical manifestations and levels of severity. The chronic fatal infection demonstrated interstitial broncho-pneumonia under histopathological examination. Conclusions: Molecular assay of Cp. felis is always recommended to obtain a definitive diagnosis of feline chlamydophilosis since the disease can have various clinical manifestations. Even though it may be subclinical and is often not fatal, an infected cat may be a carrier that could spread the pathogen in the surrounding environment. Serious disease management is suggested to avoid high costs associated with regularly relapsing disease.
Background: The microsporidian parasite Nosema ceranae is a global problem in honeybee populations and is known to cause winter mortality. A sensitive and rapid tool for stable quantitative detection is necessary to establish further research related to the diagnosis, prevention, and treatment of this pathogen. Objectives: The present study aimed to develop a quantitative method that incorporates ultra-rapid real-time quantitative polymerase chain reaction (UR-qPCR) for the rapid enumeration of N. ceranae in infected bees. Methods: A procedure for UR-qPCR detection of N. ceranae was developed, and the advantages of molecular detection were evaluated in comparison with microscopic enumeration. Results: UR-qPCR was more sensitive than microscopic enumeration for detecting two copies of N. ceranae DNA and 24 spores per bee. Meanwhile, the limit of detection by microscopy was 2.40 × 104 spores/bee, and the stable detection level was ≥ 2.40 × 105 spores/bee. The results of N. ceranae calculations from the infected honeybees and purified spores by UR-qPCR showed that the DNA copy number was approximately 8-fold higher than the spore count. Additionally, honeybees infected with N. ceranae with 2.74 × 104 copies of N. ceranae DNA were incapable of detection by microscopy. The results of quantitative analysis using UR-qPCR were accomplished within 20 min. Conclusions: UR-qPCR is expected to be the most rapid molecular method for Nosema detection and has been developed for diagnosing nosemosis at low levels of infection.
Background and Objectives : Necortizing fasciitis in the cervical region is a very rare disease with high mortality and morbidity rates. The purpose of this study was to analyze the clinical characteristics, treatment results, complication and prognosis of necrotizing fasciitis patients. Materials and Methods : We retrospectively reviewed the inpatient charts treated for cervical necrotizing fasciitis at our Otorhinolaryngology clinic. We diagnosed necrotizing fasciitis by the clinical findings such as swelling, redness and pain of infected area and necrosis of subcutaneous fat layer and fascia observed during surgery. Twenty such patients were identified and treated from January 2011 to December 2016. Results : 20 adults consisting of 14 male and 6 females with cervical necrotizing fasciitis were diagnosed and treated. The most commonly known associated preceding illness were dental abscess and tonsillitis. The most pathogen was Streptococcus species (12/20), followed by Klebsiella pneumonia (6/20), Staphylococcus species (2/20). The mean duration of hospitalization was 32.2 days (range,14-86). The mean Modified Laboroatory Risk Indicator for Necrotizing Fasciitis (M-LRINEC) score is 7.4 and more than 4 points was eighteen. All patients received parenteral antibiotics and surgical drainage after admission. Conclusions : The reason for the high survival rate in the study was the early diagnosis, as well as the early surgical procedure and antibiotics. After the operation, frequent betadine irrigation could improve the patient's condition and recover without severe complication.
Choi, Cheol Woo;Hyun, Jae Wook;Hwang, Rok Yeon;Powell, Charles A
The Plant Pathology Journal
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제34권6호
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pp.499-505
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2018
Huanglongbing (HLB, Citrus greening disease) is one of the most devastating diseases that threaten citrus production worldwide. Although HLB presents systemically, low titer and uneven distribution of these bacteria within infected plants can make reliable detection difficult. It was known loop-mediated isothermal amplification (LAMP) method has the advantages of being highly specific, rapid, efficient, and laborsaving for detection of plant pathogens. We developed a new LAMP method targeting gene contained tandem repeat for more rapid and sensitive detection of Candidatus Liberibacter asiaticus (CLas), putative causal agent of the citrus huanglongbing. This new LAMP method was 10 folds more sensitive than conventional PCR in detecting the HLB pathogen and similar to that of real-time PCR in visual detection assay by adding SYBR Green I to mixture and 1% agarose gel electrophoresis. Positive reactions were achieved in reaction temperature 57, 60 and $62^{\circ}C$ but not $65^{\circ}C$. Although this LAMP method was not more sensitive than real-time PCR, it does not require a thermocycler for amplification or agarose gel electrophoresis for resolution. Thus, we expect that this LAMP method shows strong promise as a reliable, rapid, and cost-effective method of detecting the CLas in citrus and can be applied for rapid diagnosis is needed.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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