Adrenal chromaffin cells secrete catecholamine in response to acetylcholine. The secretory response has absolute requirement for extracellular calcium, indicating that $Ca^{2+}$ influx through voltage operated $Ca^{2+}$ channels is the primary trigger of the secretion cascade. Although the existence of various types of $Ca^{2+}$ channels has been explored using patch clamp technique in adrenal chromaffin cells, there is still disagreement with the types of $Ca^{2+}$ channels existed in different species. Therefore, we have tried to identify several distinct types of $Ca^{2+}$ channels in rat chromaffin cells. By using nicardipine(L type channel blocker), $\omega$-CgTx GVIA(N type channel blocker), and $\omega$-AgaTx VIA(P type channel blocker), it was identified that L, N, and P type $Ca^{2+}$ channel exist in rat adrenal chromaffin cells and the order of contribution of each channel type to whole cell $Ca^{2+}$ current was L type> N type> P type. type> P type.
Change in intracellular $Ca^{2+}$-concentration ($[Ca^{2+}]_i$) is an essential event for egg activation and further development. $Ca^{2+}$ ion is originated from intracellular $Ca^{2+}$-store via inositol 1,4,5-triphosphate receptor and/or $Ca^{2+}$ influx via $Ca^{2+}$ channel. This study was performed to investigate whether changes in $Ca^{2+}$/calmodulin dependent protein kinase II (CaM KII) activity affect $Ca^{2+}$ influx during artificial egg activation with ethanol using $Ca^{2+}$ monitoring system and whole-cell patch clamp technique. Under $Ca^{2+}$ ion-omitted condition, $Ca^{2+}$-oscillation was stopped within 30 min post microinjection of porcine sperm factor, and ethanol-induced $Ca^{2+}$ increase was reduced. To investigate the role of CaM KII known as an integrator of $Ca^{2+}$- oscillation during mammalian egg fertilization, CaM KII activity was tested with a specific inhibitor KN-93. In the eggs treated with KN-93, ethanol failed to induce egg activation. In addition, KN-93 inhibited inward $Ca^{2+}$ current ($I_{Ca}$) in a time-dependent manner in whole-cell configuration. Immunostaining data showed that the voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels were distributed along the plasma membrane of mouse egg and 2-cell embryo. From these results, we suggest that $Ca^{2+}$ influx during fertilization might be controlled by CaM KII activity.
An impaired smooth muscle cell (SMC) relaxation of coronary artery by alteration of $K^+$ channels would be the most potential explanation for reduced coronary reserve in left ventricular hypertrophy (LVH), however, this possibility has not been investigated. We performed morphometrical analysis of the coronary artery under electron microscopy and measured $Ca^{2+}-activated\;K\;(K_{Ca})$ currents and delayed rectifier K $(K_{dr})$ currents by whole-cell and inside-out patch-clamp technique in single coronary arterial SMCs from rabbits subjected to isoprenaline-induced cardiac hypertrophy. Coronary arterial SMCs underwent significant changes in ultrastructure. The unitary current amplitude and the open-state probability of $K_{Ca}$ channel were significantly reduced in hypertrophy without open-time and closed-time kinetic. The concentration-response curve of $K_{Ca}$ channel to $Ca^{2+}$ is shifted to the right in hypertrophy. The reduction in the mean single channel current and increase in the open channel noise of $K_{Ca}$ channel by TEA were more sensitive in hypertrophy. $K_{dr}$ current density is significantly reduced in hypertrophy without activation and inactivation kinetics. The sensitivity of $K_{dr}$ current on 4-AP is significantly increased in hypertrophy. This is the first study to report evidence for alterations of $K_{Ca}$ channels and $K_{dr}$ channels in coronary SMCs with LVH. The findings may provide some insight into mechanism of the reduced coronary reserve in LVH.
The aim of this study was to clarify the mechanism of the inhibitory action of carbon monoxide (CO) on contraction, by measuring cytosolic $Ca^{2+}$ level $([Ca^{2+}]_i)$ and ionic currents in guinea-pig ileum. CO (10%) inhibited 40 mM KCl-induced contraction and this effect was blocked by ODQ $(1\;{\mu}M),$ a soluble guanylyl cyclase (sGC) inhibitor. CO inhibited the 40 mM KCl-induced contraction without changing $[Ca^{2+}]_i.$ Cumulative addition of KCl induced a graded increase in $[Ca^{2+}]_i$ and muscle tension. In the presence of CO, cumulative addition of KCl induced smaller contraction than in the absence of CO. On the other hand, the increase in $[Ca^{2+}]_i$ induced by cumulative addition of KCl was only slightly decreased in the presence of CO, and the $[Ca^{2+}]_i-tension$ relationship shifted downwards. Using the patch clamp technique with a holding potential of -60 mV, we found that CO had little effect on the peak Ba currents $(I_{Ba})$ when voltage was stepped from -60 mV to 0 mV. In addition, CO showed no effect on the depolarization-activated outward $K^+$ currents in the all potential ranges. We conclude that CO inhibits smooth muscle contraction mainly by decreasing the $Ca^{2+}$ sensitivity of contractile elements via a cGMP-dependent pathway, not by involving L-type $Ca^{2+}$ and outward-potassium currents in guinea-pig ileum.
Paroxetine, a selective serotonin reuptake inhibitor (SSRI), has been reported to have an effect on several ion channels including human ether-a-go-go-related gene in a SSRI-independent manner. These results suggest that paroxetine may cause side effects on cardiac system. In this study, we investigated the effect of paroxetine on Kv1.5, which is one of cardiac ion channels. The action of paroxetine on the cloned neuronal rat Kv1.5 channels stably expressed in Chinese hamster ovary cells was investigated using the whole-cell patch-clamp technique. Paroxetine reduced Kv1.5 whole-cell currents in a reversible concentration-dependent manner, with an $IC_{50}$ value and a Hill coefficient of $4.11{\mu}M$ and 0.98, respectively. Paroxetine accelerated the decay rate of inactivation of Kv1.5 currents without modifying the kinetics of current activation. The inhibition increased steeply between -30 and 0 mV, which corresponded with the voltage range for channel opening. In the voltage range positive to 0 mV, inhibition displayed a weak voltage dependence, consistent with an electrical distance ${\delta}$ of 0.32. The binding ($k_{+1}$) and unbinding ($k_{-1}$) rate constants for paroxetine-induced block of Kv1.5 were $4.9{\mu}M^{-1}s^{-1}$ and $16.1s^{-1}$, respectively. The theoretical $K_D$ value derived by $k_{-1}/k_{+1}$ yielded $3.3{\mu}M$. Paroxetine slowed the deactivation time course, resulting in a tail crossover phenomenon when the tail currents, recorded in the presence and absence of paroxetine, were superimposed. Inhibition of Kv1.5 by paroxetine was use-dependent. The present results suggest that paroxetine acts on Kv1.5 currents as an open-channel blocker.
The effect of forskolin on corticostriatal synaptic transmission was examined by recording excitatory postsynaptic currents (EPSCs) in rat brain slices using the whole-cell voltage-clamp technique. Forskolin produced a dose-dependent increase of corticostriatal EPSCs (1, 3, 10, and $30{\mu}M$) immediately after its treatment, and the increase at 10 and $30{\mu}M$ was maintained even after its washout. When the brain slices were pre-treated with (DL)-2-amino-phosphonovaleric acid (AP-V, $100{\mu}M$), an NMDA receptor antagonist, the acute effect of forskolin ($10{\mu}M$) was blocked. However, after washout of forskolin, an increase of corticostriatal EPSCs was still observed even in the presence of AP-V. When KT 5720 ($5{\mu}M$), a protein kinase A (PKA) inhibitor, was applied through the patch pipette, forskolin ($10{\mu}M$) increased corticostriatal EPSCs, but this increase was not maintained. When forskolin was applied together with AP-V and KT 5720, both the increase and maintenance of the corticostriatal EPSCs were blocked. These results suggest that forskolin activates both NMDA receptors and PKA, however, in a different manner.
The effects of (-)-epigallocatechin gallate (EGCG) on pacemaker activities of cultured interstitial cells of Cajal (ICC) from murine small intestine were investigated using whole-cell patch-clamp technique at $30^{\circ}C$ and $Ca^{2+}$ image analysis. ICC generated spontaneous pacemaker currents at a holding potential of -70 mV. The treatment of ICC with EGCG resulted in a dose-dependent decrease in the frequency and amplitude of pacemaker currents. SQ-22536, an adenylate cyclase inhibitor, and ODQ, a guanylate cyclase inhibitor, did not inhibit the effects of EGCG. EGCG-induced effects on pacemaker currents were not inhibited by glibenclamide, an ATP-sensitive $K^+$ channel blocker and TEA, a $Ca^{2+}$-activated $K^+$ channel blocker. Also, we found that EGCG inhibited the spontaneous $[Ca^{2+}]_i$ oscillations in cultured ICC. In conclusion, EGCG inhibited the pacemaker activity of ICC and reduced $[Ca^{2+}]_i$ oscillations by cAMP-, cGMP-, ATP-sensitive $K^+$ channel-independent manner.
The spinal dorsal horn is the area where primary afferent fibers terminate and cutaneous sensory information is processed. A number of putative neurotransmitter substances, including excitatory and inhibitory amino acids and peptides, are present in this region. In this study, single neurons of the spinal dorsal horn were acutely isolated and the properties of whole cell current and responses to excitatory and inhibitory neurotransmitters were studied by patch clamp technique. Transverse slice ($(300{\mu}m$) of lumbar spinal cords from young rats$(7{\sim}14\;days)$ were sequentially treated with two pretenses(pronase 0.75 mg/ml and thermolysin 0.75 mg/ml), then single neurons were mechanically dissociated. These neurons showed near-intact morphology such as multipolar, ellipsoidal and bipolar, and pyramidal cells and we recorded the typical whole cell currents of $K^+$, $Ca^{2+}$ and ligand-operated channels from these neurons. Glutamate $(30{\mu}M)$ and N-methyl-D-aspartate(NMDA, $30{\mu}M)$ induced inward currents of $117{\pm}12.4$ pA(n=5) and $49{\pm}6.9$ pA(n=3), respectively. Glycine $(1{\mu}M)$ potentiated glutamate-induced currents $4{\sim}5$ times and NMDA-induced currents $8{\sim}10$ times. In addition, glycine $(30{\mu}M)$ induced Inward current ($31{\pm}6.1$ nA, n=2), which was rapidly desensitized after the peak to a new steady-state level. However, the inward currents induced by ${\gamma}-amino$ butyric acid(GABA, $1{\mu}M$) decreased continuously after the peak($226{\pm}41.6$ pA, n=3) under the similar experimental condition. The ionic currents and pharmacological responses of isolated neurons in this work were similar to those observed in vivo or in vitro spinal cord slice, indicating that acutely isolated neurons could be effectively used for further pharmacological studies.
The present study was aimed at investigating whether the calcium current in the vascular smooth muscle (VSM) cells is altered in renal hypertension. Two-kidney, one clip (2K1C) and deoxycorticosterone acetate (DOCA)-salt hypertension were made in Sprague-Dawley rats. Rats without clipping the renal artery or implanting DOCA were used as control for 2K1C and DOCA-salt hypertension, respectively. Four weeks after clipping, systolic blood pressure was significantly higher in 2K1C rats than in control $(192{\pm}24\;and\;119{\pm}4$ mmHg, respectively, n=16 each). DOCA-salt rats also showed a higher blood pressure $(180{\pm}15$ mmHg, n=18) compared with control $(121{\pm}6$ mmHg, n=14). VSM cells were enzymatically and mechanically isolated from basilar arteries. Single relaxed VSM cells measured $5{\sim}10\;{\mu}m$ in width and $70{\sim}150\;{\mu}m$ in length were obtained. VSM cells could not be differentiated in size and shape between hypertensive and normotensive rats under light microscopy. High-threshold (L-type) calcium currents were recorded using whole-cell patch clamp technique. The amplitude of the current recorded from VSM cells was larger in 2K1C hypertension than in control. Neither the voltage-dependence of the calcium current nor the cell capacitance was significantly affected by 2K1C hypertension. By contrast, the amplitude of the calcium current was not altered in DOCA-salt hypertension. These results suggest that high-threshold calcium current of the VSM cells is altered in 2K1C hypertension, and that calcium channel may not be involved in calcium recruitment of VSM in DOCA-salt hypertension.
The influences of specific protein phosphatase and protein kinase inhibitors on the ATP-sensitive $K^+\;(K_{ATP})$ channel-opening effect of pinacidil were investigated in single rat ventricular myocytes using patch clamp technique. In cell-attached patches, pinacidil $(100\;{\mu}M)$ induced the opening of the $K_{ATP}$ channel, which was blocked by the pretreatment with H-7 $(100\;{\mu}M)$ whereas enhanced by the pretreatment with genistein $(30\;{\mu}M)$ or tyrphostin A23 $(10\;{\mu}M)$. In inside-out patches, pinacidil $(10\;{\mu}M)$ activated the $K_{ATP}$ channels in the presence of ATP (0.3 mM) or AMP-PNP (0.3 mM) and in a partial rundown state. The effect of pinacidil $(10\;{\mu}M)$ was not affected by the pretreatment with protein tyrosine phosphatase 1B $(PTP1B,\;10\;{\mu}g\;ml^{-1}),$ but blocked by the pretreatment of protein phosphatase 2A $(PP2A,\;1\;U\;ml^{-1})$. In addition, pinacidil $(10\;{\mu}M)$ could not induce the opening of the reactivated $K_{ATP}$ channels in the presence of H-7 $(100\;{\mu}M)$ but enhanced it in the presence of ATP (1 mM) and genistein $(30\;{\mu}M).$ These results indicate that the $K_{ATP}$ channel-opening effect of pinacidil is not mediated via phosphorylation of $K_{ATP}$ channel protein or associated protein, although it still requires the phosphorylation of serine/threonine residues as a prerequisite condition.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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