Kim, Dae-Hwan;Park, Sang-Kyu;Kim, Se-Woong;Jung, Yeon-Gil;Roh, Sang-Ho
Journal of Embryo Transfer
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v.26
no.2
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pp.111-115
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2011
In general, zona pellucida (ZP) of the blastocyst has to be removed first, then either isolated the inner cell mass (ICM) or ZP-removed whole blastocyst, which is then cultured on the feeder layer to induce ICM outgrowth for the generation of embryonic stem cells (ESC). However, it is unclear whether ICM isolation before seeding on feeder layer is beneficial or not because the interaction between ICM and trophoblasts may affect cellular growth and/or pluripotency during the culture on the feeder. In the present study, two ZP removal methods (mechanically by splitting with a 28-gauge needle versus chemically by the treatment of acid-Tyrode's solution) and two ICM isolation methods (ZP-free whole blastocyst seeding versus mechanical isolation of ICM) were evaluated for the efficient isolation and culture of putative parthenogenetic bovine ESC. The number of maintained outgrown colonies was counted in each experimental group. As the result, mechanical removal of ZP with a needle and followed by whole ZP-free blastocyst seeding on feeder cells tended to attach more on the feeder layer and resulted in more outgrown colonies with its simple and less time-costing benefits. Currently we are generating ESC lines in HanWoo cattle by using this method for initial outgrowth of the parthenogenetic bovine blastocysts.
This study was conducted to establish the optimal temperature condition before oocyte activation in B6m F1 mouse. In experiment 1, two embryo culture media (CZB vs KSOM) were evaluated for the development of activated mouse oocytes. Parthenogenetic embryos cultured in KSOM showed better blastocyst development than ones cultured in CZB $(56.2\%\;vs\;81.0\%\;p<0.01)$. Two-hour of pre-incubation before activation significantly reduced the number of hatched blastocysts in KSOM $(22.0\%\;versus\;8.8\%\;p<0.05)$. In experiment 2, recovered oocytes were pre-incubated at different temperature conditions before activation. The experimental groups were divided by 5 as follows. Group A: pre-incubation for 120 min at $37^{\circ}C$, Group B: pre-incubation at $37^{\circ}C$ for 90 min then at $25^{\circ}C$ for 30 min, Group C: pre-incubation at $37^{\circ}C$ for 60 min then at $25^{\circ}C$for 60 min, Group D: pre-incubation at $37^{\circ}C$ for 30 min then at $25^{\circ}C$ for 90 min, and Group E: pre-incubation at $25^{\circ}C$ for 120 min before activation. Group A $(67.6\%)$ and B $(66.7\%)$ showed better development to the blastocyst stage than other groups $(Group\;C:\;50.0\%\;Group \;D:\;49.2\%\;Group\;E:\;33.3\%,\;p<0.05)$. The present study indicates that the temperature before activation affects the development of B6D2 F1 mouse parthenogenetic oocytes and exposure to room temperature should be limited to 30-min when the oocytes are left in HEPES-buffered medium for micromanipulation.
Park, Joo-Hee;Kim, Ho-Jeong;Lee, Beom-Ki;Kwon, Dae-Jin;Hwang, In-Sun;Park, Choon-Keun;Yang, Boo-Keun;Cheong, Hee-Tae
Reproductive and Developmental Biology
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v.33
no.1
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pp.7-11
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2009
This study was performed to confirm the microtubule assemblies and methylation patterns of porcine IVF and parthenogenetic embryos. Cumulus-oocyte complexes were collected and matured in vitro for 42 hr. Oocytes were fertilized by prepared fresh sperm or activated parthenogenetically by exposure to electric stimulation and 6-dimethylaminopurine. Porcine IVF and parthenogenetic embryos were cultured in vitro for 6 days. Embryos were stained by immunofluorescence staining method to observe the dynamic of nucleus and microtubules in the first mitotic phase and the methylation patterns in different developmental stages. After then, samples were confirmed and analyzed through a laser-scanning confocal microscope. IVF embryos had a centrosome originated from sperms, which was shown a $\gamma$-tubulin spot. However, $\gamma$-tubulin spot was not observed in parthenogenetic embryos. A lower methylation level was observed in IVF embryos compared to parthenogenetic ones at the morula and blastocyst stages. In conclusion, it is considered that microtubule assemblies and genetic regulation mechanism differ between parthenogenetic and IVF embryos.
Lee, Jin Gu;Kim, Hee Dong;Kang, Chang Sung;Seo, Ae Gyeong;Lee, Sang Hyun;Park, Young Kyu;Lee, Young Bo
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.26
no.1
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pp.61-66
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2013
Baculum elongatum has several peculiarities such as parthenogenesis, unique external features, changing body color, and dropping oviposition, which makes it a potential economically useful insect. Oviposition was performed by females without fertilization by the sperm of males. The oviposition period was $42.2{\pm}22.7$ days and the number of eggs per female was $109.5{\pm}70.5$ eggs. The hatch rate was 73.3% at $25^{\circ}C$ and 66.7% after low temperature treatment ($8^{\circ}C$ for 60 days). In nature, B. elongatum overwinters as an egg, but it can be assumed from the results that cold temperatures were not required for hatching. The hatch rate was 98.2% in the treatment using floral foam, fermented sawdust, and leaves. The developmental period was $100.9{\pm}4.2$ days for eggs, $55.3{\pm}4.6$ days for nymphs, and $49.7{\pm}16.0$ days for adults. The length of the eggs was $0.33{\pm}0.0$ cm and the lengths of the nymphs were clearly distinguishable according to the instar stage. Clover(Trifolium repens) was an excellent diet as it was similar to the host plant and could be used as an alternative diet. The rate of reaching adulthood for the insects was 66.7% on an artificial diet containing 25% acacia leaves. For sustainable mass rearing of nymphs or adults of B. elongatum, a natural diet could be used such as acacia (Robinia pseudoacacia), white oak (Quercus aliena), chestnut (Castanea crenata var. dulcis), and bush clover (Lespedeza bicolor), or an alternative diet such as clover or artificial diet.
Objective: In muscle and neuronal cells, calcium channels have been classified by electrophysiological and pharmacological properties into (1) voltage-dependent $Ca^{2+}$-channel (1) P/Q-type $Ca^{2+}$-channel (2) N-type $Ca^{2+}$-channel (3) L-type $Ca^{2+}$-channel (4) T-type $Ca^{2+}$-channel (5) R-type $Ca^{2+}$-channel. The present study was done in order to investigate whether there is any difference in $Ca^{2+}$-channel distribution between activated and normally fertilized embryos. Methods: The immunocytochemical method was used to identify the existence of voltage-dependent $Ca^{2+}$-channels in parthenogenetically activated 2-cell embryos by ethanol and $SrCl_2$ treatment. These 2-cell embryos were obtained by exposure to 6% ethanol for 6 min and to 10 mM $SrCl_2$ for 2h. Results: P/Q-type $Ca^{2+}$-channels and L-type $Ca^{2+}$-channels have been identified. Whereas, three type of $Ca^{2+}$-channel P/Q-type, N-type, L-type have been identified in 2-cell embryos fertilized in vivo. Conclusion: Activation by ethanol was faster than those by $SrCl_2$. However, there was difference in DAB staining of the embryos between ethanol and $SrCl_2$ treatment (87.7% and 54.1 %). Intensity of staining was also different between ethanol- and $SrCl_2$-treated group. However, it has not been known why there was some difference in DAB staining and staining intensity in the present study.
The present study was conducted to examine the reactive oxygen species (ROS) generation levels in porcine parthenogenetic embryos. Porcine in vitro matured oocytes were activated by the combination of electric stimulus and 6-DMAP before in vitro culture. Porcine oocytes and parthenogenetic embryos were stained in 10 ${\mu}M$ dichlorohydrofluorescein diacetate (DCF) or 10 ${\mu}M$ hydroxyphenyl fluorescein (HPF) dye each for 30 min at $39^{\circ}C$. The fluorescent emissions from the samples were recoded as JPEG file and the intensity of fluorescence in oocytes and embryos were analyzed. $H_2O_2$ and $^{\cdot}OH$ radical levels of porcine oocytes were reduced immediately after electric stimulation. However, $H_2O_2$ and $^{\cdot}OH$ radical levels of parthenogenetic embryos were increased with time elapsed after electric stimulation from 0 h to 3 h and after DMAP culture. During in vitro culture, $H_2O_2$ and $^{\cdot}OH$ radical levels were gradually increased from the one-cell stage to the two- and four-cell stages. The result of the present study suggests that the ROS was not increased by electric pulse in porcine embryos. Rather than it seems to be associated with the stage of development and the culture condition.
This experiment was carried out to find out the best condition for the parthenogenetic activation of mouse eggs by treating ethanol and hyaluronidase. For the parthenogenetic activation of eggs with ethanol, cumulus cell enclosed or denuded eggs were treated with 7% ethanol in D-PBS for 5, 7 or 9 minutes. For the activation of eggs with hyaluronidase, the eggs with cumulus masses were released into D-PBS with 100 unit hyaluronidase and treated for 10, 12 or 13 minutes. All of the treated eggs were incubated in BMOC-3 solution for 5 hours at $37^{\circ}C$ at an atmosphere of 5% $CO_2$ in air. The types of parthenogenetic eggs were morphologically classified into haploid, diploid, immediate cleavage eggs under an inverted microscope. The results obtained in this experiment were summarized as follows ; 1. High activation rate(99%) had been achieved by treating the eggs with 7% ethanol for 7 minutes. 2. With 100 IU hyaluronidase, high activation rate (94%) had been achieved by treating for 12 minutes. 3. The most frequent type of parthenogenetic eggs activated with ethanol or hyaluronidase was haploid (p<0.05). 4. The eggs collected from 18 to 22 hours post HCG injection showed higher activation rate than the eggs collected at 16 hours post HCG injection. 5. No significant difference (p>0.05) in activation rate was shown in strain of mouse and in presence of cumulus cells.
This study was conducted to investigate nuclear remodeling and developmental rate following nuclear transfer of fetal fibroblast cells, ear skin cells and oviduct epithelial cells into porcine recipient oocytes. To test par-thenogenetic activation, oocytes were treated with a 6-dimethylaminopurine (6-DMAP), a single DC-pulse (DC), calcium ionomycin (ionomycin), DC+6-DMAP and ionomycin + 6-DMAP after in vitro maturation. For nuclear transfer, in vitro matured oocytes were enucleated, and donor cells were transferred into oocytes. Cloned embryos were fused and stimulated with 6-DMAP for 4 h and cultured in vitro for 6 days. Among treatments for parthenogenesis, the activation rate of DC +6-DMAP treatment was significantly higher than that of single treatment roups (p<0.01), except for DC treatment group. However, the difference was not significant in activation rate compared to other complex treatment groups. Nuclear swelling of the cloned embryos was initiated at 60 min after stimulation and increased afterwards. Fusion rates were not different among different donor cells. Cleavage rates of DC treatment groups were significantly higher than those of DC+6-DMAP treatment groups (p<0.05) in case that fetal fibroblast and ear cells were used for nuclear donor. The cloned embryos from developed to blastocysts in oviduct epithelial cell nuclear transfer with DC+6-DMAP treatment was significantly higher compared to those with DC only treatment (p<0.05). However, no blastocyst was developed from nuclear transfer of fetal fibroblast and ear cells regardless of activation treatments. Based on these results, a proper activation stimulation may be necessary to increase the activation rate and the development to blastocyst in cloned porcine embryos.
Optimization of the preimplantation mammalian embryo culture condition was widely focused on refining medium composition under the name of chemically defined media. However, recent research revealed that the alteration of physical environment can be a crucial factor to a successful embryo development. In this study, under the same embryo density, a novel culture device named oil-free micro tube culture (MTC) system was evaluated using porcine parthenogenetic embryos. The activated oocytes were placed into the 0.2 ml thin-wall flat cap PCR tube and cultured to the blastocyst stage. As a preliminary step, embryo density and culture medium volume were optimized under a standard drop culture system. The optimal embryo density range for in vitro culture was 0.5 embryos per ${\mu}l$ in $20\;{\mu}l$ drop (20.5%) and 1.0 embryos per ${\mu}l$ in $10\;{\mu}l$ drop (20.6%). Based on these results, we compared drop culture system and 'MTC' system in terms of the developmental rate to the blastocyst stage. In $20\;{\mu}l$ medium volume, the 'MTC' system showed similar blastocyst formation rate when compared with drop culture system (20.2% versus 20.5%, respectively) while the 'MTC' system showed lower blastocyst formation rate than drop culture system in $10\;{\mu}l$ one (12.7% versus 20.0%, respectively). Therefore the $20\;{\mu}l$ MTC system may be an alternative incubation system for short-distance embryo transport without carrying the $CO_2$ incubator and this provides novel embryo culture device to clinical veterinary embryologists.
This study was designed to investigate the effect of kinetin on in vitro development of parthenogenetic porcine oocytes exposed to demecolcine prior to activation. In vitro matured metaphase II stage oocytes were incubated in 0 or 2 ${\mu}$g/ml demecolcine supplemented defined culture medium for 3 h and the oocytes were activated electrically. The parthenogenetic porcine embryos were then cultured in 0 or 200 ${\mu}$M kinetin supplemented defined culture medium for 7 days. Regardless of demecolcine treatment, kinetin supplementation increased blastocyst rates significantly (7.0% versus 12.1% and 4.9% versus 8.5%; Control versus Kinetin and Demecolcine versus Kinetin + Demecolcine, respectively, p<0.05). Demecolcine treatment before activation tended to decrease blastocyst rates regardless of kinetin supplementation although it is not statistically significant. Total cell numbers in the blastocysts also tended to be elevated in embryos when supplemented with kinetin, however only the result between Kinetin and Demecolcine groups is statistically significant (37.6 ${\times}$ 7.2 versus 28.1 ${\times}$ 9.5, respectively, p<0.05). In conclusion, the present report shows that kinetin enhances developmental competence of parthenogenetic porcine embryo regardless of demecolcine pre-treatment before parthenogenetic activation when they were developed in defined culture condition.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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