Serotonin (5-hydroxytryptamine (5-HT))는 신경계의 세포-세포 간의 신호전달의 주요한 신경전달물질이다. 세포막에 존재하는 serotonin transporter (SERT)는 연접간격에 존재하는 5-HT를 세포 내로 재흡수 하여 세포외부의 5-HT 농도를 조절하지만 그 기전은 아직 밝혀지지 않았다. 본 연구에서는 yeast two-hybrid system을 사용하여 SERT의 C-말단이 protein kinase C-$\varepsilon$ (PKC-$\varepsilon$)과 특이적으로 결합함을 알았다. PKC-$\varepsilon$는 PKC의 isotype으로 calcium 비의존적이며 phorbol ester/diacylglycerol 민감성 serine/threonine kinase이다. $Na^+/Cl^-$ 의존성 SLC6 gene family의 다른 수송체는 PKC-$\varepsilon$과 결합하지 않았다. Deletion mutant들을 사용하여 SERT는 PKC-$\varepsilon$의 C-말단부위와 결합함을 알았으며, 또한 이 단백질간의 결합을 GST pull-down assay로 확인하였다. PKC-$\varepsilon$는 in vitro에서 SERT의 N-말단의 펩티드를 인산화시켰다. 이러한 결과들은 PKC-$\varepsilon$에 의한 SERT의 인산화가 세포막에 존재하는 SERT의 활성을 조절하는 역할을 할 가능성을 시사한다.
Neuronal cell toxicity induced by decreased nitric oxide (NO) production may be caused by modulation of constitutive neuronal NO synthase (nNOS). We used lead acetate ($Pb^{2+}$) to modulate physiological NO release and the related pathways of protein kinases like PKC, CaM-KII, and PKA in CATH.a cells, a dopaminergic cell line that has constitutive nNOS activity. In the cells treated with $Pb^{2+}$, cell viability and modulation (phosphorylation) levels of nNOS were determined by MTT assay and Western blot analysis, respectively. nNOS reductase activity (cytochrome c) was also assessed to compare the phosphorylation site-specific nNOS activity. nNOS activity was also determined by NADPH consumption rates. $Pb^{2+}$ treatment alone increased the phosphorylation of nNOS with decreased reductase activity. The phosphorylation levels increased markedly with decreased nNOS reductase activity, when $Pb^{2+}$ was combined with inhibitors for two (PKC and CaM-KII) or three (PKA, PKC and CaM-KII) protein kinases. Interestingly, when the cells were exposed to $Pb^{2+}$ plus PKC or CaM-KII inhibitor, the nNOS was phosphorylated strongly with the lowest activity. However, the levels of phosphorylated nNOS following $Pb^{2+}$ treatment decreased significantly after combined treatment with the PKA inhibitor, and $Pb^{2+}$-induced suppression of reductase activity did not occur. These results demonstrate that physiological NO release in the neuronal cells exposed to $Pb^{2+}$ can be decreased by PKA-mediated nNOS phosphorylation that may be caused by interactions with PKC and/or CaM-KII.
Previously we showed that the human GM3 synthase gene was expressed during the induction of megakaryocytic differentiation in human leukemia K562 cells by phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA). In this study we found that treatment of PMA-induced K562 cells with $G{\ddot{o}}6976$, a specific inhibitor of PKC, and U0126, an inhibitor of the extracellular signal-regulated kinase (ERK) reduced expression of GM3 synthase, whereas wortmannin, an inhibitor of phosphoinositide 3-kinase (PI3K) did not. Moreover, activation of ERK and cAMP response element binding protein (CREB) was prevented by pretreatment with $G{\ddot{o}}6976$ and U0126. PMA stimulated the promoter activity of the 5'-flanking region from -177 to -83 region of the GM3 synthase gene, and mutation or deletion of a CREB site located around -143 of the promoter reduced PMA-stimulated promoter activity, as did the inhibitors $G{\ddot{o}}6976$ and U0126. Our results demonstrate that induction of GM3 synthase during megakaryocytic differentiation in PMA-stimulated human leukemia K562 cells depends upon the PKC/ERK/CREB pathway.
In this work, GLUTs phosphorylations by a downstream effector of PI3-kinase, $PKC-{\zeta},$ were studied, and GLUT4 phosphorylation was compared with GLUT2 phosphorylation in relation to the translocation mechanism. Prior to phosphorylation experiment, $PKC-{\zeta}$ kinase activity was determined as $20.76{\pm}4.09$ pmoles Pi/min/25 ng enzymes. GLUT4 was phosphorylated by $PKC-{\zeta}$ and the phosphorylation was increased on the vesicles immunoadsorpted from LDM and on GLUT4 immunoprecipitated from GLUT4- contianing vesicles of adipocytes treated with insulin. However, GLUT2 in hepatocytes was neither phosphorylated by $PKC-{\zeta}$ nor changed in response to insulin treatment. It was confirmed by measuring the subcellular distribution of GLUT2 based on GLUT2 immunoblot density among the four membrane fractions before and after insulin treatment. Total GLUT2 distributions at PM, LYSO, HDM and LDM were $37.7{\pm}12.0%,\;42.4{\pm}12.1%,\;19.2{\pm}5.0%\;and\;0.7{\pm}1.2%$ in the absence of insulin. Total GLUT2 distribution in the presence of insulin was almost same as that in the absence of insulin. Present data with previous findings suggest that GLUT4 translocation may be attributed to GLUT4 phosphorylation by $PKC-{\zeta}$ but GLUT2 does not translocate because GLUT2 is not phosphorylated by the kinase. Therefore, GLUT phosphorylation may be required in GLUT translocation mechanism.
Kim, Eung Chang;Lee, Myeong Jong;Shin, Sang Yep;Seol, Geun Hee;Han, Seung Ho;Yee, Jaeyong;Kim, Chan;Min, Sun Seek
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제17권1호
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pp.51-56
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2013
Many intracellular proteins and signaling cascades contribute to the sensitivity of N-methyl-D-aspartate receptors (NMDARs). One such putative contributor is the serine/threonine kinase, protein kinase C (PKC). Activation of PKC by phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) causes activation of extracellular signal-regulated kinase (ERK) and promotes the formation of new spines in cultured hippocampal neurons. The purpose of this study was to examine which PKC isoforms are responsible for the PMA-induced augmentation of long-term potentiation (LTP) in the CA1 stratum radiatum of the hippocampus in vitro and verify that this facilitation requires NMDAR activation. We found that PMA enhanced the induction of LTP by a single episode of theta-burst stimulation in a concentration-dependent manner without affecting to magnitude of baseline field excitatory postsynaptic potentials. Facilitation of LTP by PMA (200 nM) was blocked by the nonspecific PKC inhibitor, Ro 31-8220 ($10{\mu}M$); the selective $PKC{\delta}$ inhibitor, rottlerin ($1{\mu}M$); and the $PKC{\varepsilon}$ inhibitor, TAT-${\varepsilon}V1$-2 peptide (500 nM). Moreover, the NMDAR blocker DL-APV ($50{\mu}M$) prevented enhancement of LTP by PMA. Our results suggest that PMA contributes to synaptic plasticity in the nervous system via activation of $PKC{\delta}$ and/or $PKC{\varepsilon}$, and confirm that NMDAR activity is required for this effect.
DEAE-52 cellulose column을 이용하여 부분적으로 분리한 PKC를 이용하여 대두 유 식물 하배축 정단부와 뿌리에서 각각 분리한 세포질 단백질과 막 단백질의 인산화 실험을 통해 PKC의 기질이 되는 단백질을 조사하여 보았다. PKC의 기질은 세포질 단백질의 경우 100, 63 그리고 41 Kd 단백질들이며, 막 단백질 중 하배축 정단부의 경우는 140, 110, 66, 47 그리고 32 Kd 단백질들이며, 뿌리의 경우는 140, 110, 66, 47, 33, 31, 16 Kd 단백질들이라고 생각된다.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제33권5호
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pp.445-454
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2007
Background: Phosphatidic acid(PA), an important second messenger, is involved in inflammation. Notably, cell-cell interactions via adhesion molecules playa central role in inflammation. This thesis show that PA induces expression of intercellular adhesion molecule-1(ICAM-1) on macrophages and describe the signaling pathways. Materials and methods: Macrophages were cultured in the presence of 10% FBS and assayed cell to cell adhesion using HUVEC. For the gene and protein analysis, RT-PCR, Western blot and flow cytometry were performed. In addition, overexpressed cell lines for dominant negative PKC-${\delta}$ mutant established and tested their effect on the promoter activity and expression of ICAM-1 protein by PA. Results: PA-activated macrophages significantly increased adhering to human umbilical vein endothelial cell and this adhesion was mediated by ICAM-1. Pretreatment with rottlerin(PKC-${\delta}$ inhibitor) or expression of a dominant negative PKC-${\delta}$ mutant, but not Go6976(classical PKC-${\alpha}$ inhibitor) and myristoylated PKC-${\xi}$ inhibitor, attenuated PA-induced ICAM-1 expression. The p38 mitogen-activated protein kinase(MAPK) inhibitor blocked PA-induced ICAM-1 expression in contrast, ERK upstream inhibitor didn't block ICAM-1. Conclusion: These data suggest that PA-induced ICAM-1 expression and cell-cell adhesion in macrophages requires PKC-${\delta}$ activation and that PKC-${\delta}$ activation is triggers to sequential activation of p38 MAPK.
Kang, Jung-Ah;Choi, Hyunwoo;Yang, Taewoo;Cho, Steve K.;Park, Zee-Yong;Park, Sung-Gyoo
Molecules and Cells
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제40권1호
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pp.37-44
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2017
PDK1 is essential for T cell receptor (TCR)-mediated activation of $NF-{\kappa}B$, and PDK1-induced phosphorylation of $PKC{\theta}$ is important for TCR-induced $NF-{\kappa}B$ activation. However, inverse regulation of PDK1 by $PKC{\theta}$ during T cell activation has not been investigated. In this study, we found that $PKC{\theta}$ is involved in human PDK1 phosphorylation and that its kinase activity is crucial for human PDK1 phosphorylation. Mass spectrometry analysis of wild-type $PKC{\theta}$ or of kinase-inactive form of $PKC{\theta}$ revealed that $PKC{\theta}$ induced phosphorylation of human PDK1 at Ser-64. This $PKC{\theta}$-induced PDK1 phosphorylation positively regulated T cell activation and TCR-induced $NF-{\kappa}B$ activation. Moreover, phosphorylation of human PDK1 at Ser-64 increased the stability of human PDK1 protein. These results suggest that Ser-64 is an important phosphorylation site that is part of a positive feedback loop for human PDK1-$PKC{\theta}$-mediated T cell activation.
To evaluate the mechanism of oxidative damage by Xanthine oxidase(XO) and hypoxanthine(HX)-induced oxygen radicals, XTT assay was carried out. Neurofilament EIA and PKC activity were measured to evaluate the protective effect of Jingansikpung-tang(JST) and Gamijingansikpung-tang(GJST) water extract on cultured spinal sensory neurons damaged by XO/HX, after the cultured mouse spinal sensory neurons were preincubated with various concentrations of JST and GJST water extract for 3 hours prior to exposure of XO/HX. The results were XO/HX decreased significantly, in proportion to concentration and exposed time, the survival rate of the cultured mouse sensory neurons on XTT assay. And in proportion to concentration and exposed time on cultured spinal sensory neurons, XO/HX showed the quantitative decrease of neurofilament by EIA, increase of PKC activity, but JST and GJST showed the neuroprotective effects against decrease of neurofilament and increase of PKC activity by XO/HX. From the above results, it is concluded that XO/HX have a neurotoxic effect on cultured spinal sensory neurons and the herbs water extract, such as JST and GJST prevent the toxicity of XO/HX effectively.
본 실험에서는 MRF가 다량 존재하는 RBL-2H3 세포주에 다양한 PKC isotype별 억제제를 처리하여 in vitro상에서 Na, K-ATPase $\alpha$1L3를 이용한 pull-down assay와 RBL-2H3 세포를 이용한 membrane fractionation을 실시하였다. 그 결과 HRF는 in vitro에서 $\alpha$1L3와 결합한다는 사실을 재확인 할 수 있었고 실제 세포주 내에서 Na,K-ATPase와 결합한다는 것을 알 수 있었다. 사용한 약물로부터 PKC $\alpha,\;\beta,\;\delta$뿐 아니라 protein phosphatase 2B(PP2B)도 HRF와 $\alpha$1L3의 결합에 관여한다는 사실을 알 수 있었다. 또한 이들 PKC, PP2B에 의해 인산화된 HRF 분자는 cytosolic fraction으로 이행할 수 있으며 이러한 결과는 탈인산화된 HRF가 Na,K-ATPase와 결합하여 Na, K-ATPase의 기능을 조절한다고 추정할 수 있다. 그러나 약물자체가 histamine 분비에 영향을 미칠 수 있으며 cytosolic HRF보다 exocytosis된 HRF가 histamine를 더 분비하도록 할 수 있으므로, 약물을 전처리한 세포에 외부에서 HRF를 첨가하여 histamine이 유리되는 정도가 어떻게 변화하는지를 HRF를 가하지 않은 결과와 비교해야 할 것이다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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