Park Kun-Koo;Jin Jung Sun;Park Ki Yong;Lee Yun Hee;Kim Sang Yoon;Noh Young Ju;Ahn Seung Do;Kim Jong Hoon;Choi Eun Kyung;Chang Hyesook
Radiation Oncology Journal
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v.19
no.2
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pp.171-180
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2001
Purpose : Expression of TIMP, intrinsic inhibitor of MMP, is regulated by signal transduction in response to genotoxins and is likely to be an important step in metastasis, angiogenesis and wound healing after ionizing radiation. Therefore, we studied radiation mediated TIMP expression and its mechanism in head and neck cancer cell lines. Materials and Methods : Human head and neck cancer cell lines established at Asan Medical Center were used and radiosensitivity $(D_0)$, radiation cytotoxicity and metastatic potential were measured by clonogenic assay, n assay and invasion assay, respectively. The conditioned medium was prepared at 24 hours and 48 hours after 2 Gy and 10 Gy irradiation and expression of TIMP protein was measured by Elisa assay with specific antibodies against human TIMP. hTIMP1 promoter region was cloned and TIMP1 luciferase reporter vector was constructed. The reporter vector was transfected to AMC-HN-1 and -HN-9 cells with or without expression vector Ras, then the cells were exposed to radiation or PMA, PKC activator. EMSA was peformed with oligonucleotide (-59/-53 element and SP1) of TIMP1 promoter. Results : $D_0$ of HN-1, -2, -3, -5 and -9 cell lines were 1.55 Gy, 1.8 Gy, 1.5 Gt, 1.55 Gy and 2.45 Gy respectively. n assay confirmed cell viability, over $94\%$ at 24hrs, 48hrs after 2 Gy irradiation and over 73% after 10 Gy irradiation. Elisa assay confirmed that cells secreted TIMP1, 2 proteins continuously. After 2 Gy irradiation, TIMP2 secretion was decreased at 24hrs in HN-1 and HN-9 cell lines but after 10 Gy irradiation, it was increased in all cell lines. At 48hrs after irradiation, it was increased in HN-1 but decreased in HN-9 cells. But the change in TIMP secretion by RT was mild. The transcription of TIMP1 gene in HN-1 was induced by PMA but in HN-9 cell lines, it was suppressed. Wild type Ras induced the TIMP-1 transcription by 20 fold and 4 fold in HN-1 and HN-9 respectively. The binding activity to -59/-53, AP1 motif was increased by RT, but not to SP1 motif in both cell lines. Conclusions : We observed the difference of expression and activity of TIMPs between radiosensitive and radioresistant cell line and the different signal transduction pathway between in these cell lines may contribute the different radiosensitivity. Further research to investigate the radiation response and its signal pathway of TIMPs is needed.
Acetylcholine (ACh) activates the inwardly rectifying muscarinic $K^{+}$ channel in rat atrial cells via pertussis toxin (PTX)-sensitive G-protein ($G_k$) coupled with the muscarinic receptor (mAChR). Although this $K^{+}\;(K_{ACh})$ channel function has reported to be modulated by the phosphorylation process, a kinase and phosphatase involved in these processes are still unclear. Since either PKA or PKC was not effective on this ATP-modulation, the present study examined the possible involvement of the protein tyrosine kinase (PTK) and protein tyrosine phosphatase (PTP) in the function of the $K_{ACh}$ Channel. In the inside-out (I/O) patch preparation excised from the adult rat atrial cell, when activated by 10 ${\mu}M$ ACh in the pipette and 100 ${\mu}M$ GTP in the bath, the mean open time (${\tau}_{o}$) and the channel activity ($K_{ACh}$) was 1.13 ms (n=5) and 0.19 (n=6), respectively. Following the application of 1 mM ATP into the bath, ${\tau}_{o}$ increased by 34% (1.54 ms, n=5) and $K_{ACh}$ by 66% (0.28, n=6). Channel function elevated by ATP was lasted after washout of ATP. However, this ATP-induced increase in the $K_{ACh}$ channel function did not occur in pretreated cells with genistein ($50{\sim}100 {\mu}M$), a selective PTK inhibitor, but occurred in pretreated cells with equimolar daidzein, a negative control of the genistein. On the contrary, PTP which acts on tyrosine residue conversely reversed both ATP-induced increased ${\tau}_{o}$ by 32% (1.20 ms, n=3) and $K_{ACh}$ by 41% (0.15, n=3), respectively. Taken together, these results suggest that $K_{ACh}$ channel may, at least partly, be regulated by the tyrosyl phosphorylation, although it is unclear where this process exerts on the muscarinic signal transduction pathway comprising the mAChR-$G_{k}$-the $K_{ACh}$ channel.
Phospholipase C gamma (PLCγ) has critical roles in receptor tyrosine kinase- and non-receptor tyrosine kinase-mediated cellular signaling relating to the hydrolysis of phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate [PI(4,5)P2] to produce inositol 1,4,5 trisphosphate (IP3) and diacylglycerol (DAG), which promote protein kinase C (PKC) and Ca2+ signaling to their downstream cellular targets. PLCγ has two isozymes called PLCγ1 and PLCγ2, which control cell growth and differentiation. In addition to catalytically active X- and Y-domains, both isotypes contain two Src homology 2 (SH2) domains and an SH3 domain for protein-protein interaction when the cells are activated by ligand stimulation. PLCγ also contains two pleckstrin homology (PH) domains for membrane-associated phosphoinositide binding and protein-protein interactions. While PLCγ1 is widely expressed and appears to regulate intracellular signaling in many tissues, PLCγ2 expression is restricted to cells of hematopoietic systems and seems to play a role in the regulation of immune response. A distinct mechanism for PLCγ activation is linked to an increase in phosphorylation of specific tyrosine residue, Y783. Recent studies have demonstrated that PLCγ mutations are closely related to cancer, immune disease, and brain disorders. Our review focused on the physiological roles of PLCγ by means of its structure and enzyme activity and the pathological functions of PLCγ via mutational analysis obtained from various human diseases and PLCγ knockout mice.
Matrix metalloproteinases (MMPs) are zinc-dependent endopeptidases which degrade extracellular matrix (ECM) during embryogenesis, wound healing, and tissue remodeling. Dysregulation of MMP activity is also associated with various pathological inflammatory conditions. In this study, we examined the expression pattern of MMPs during PMA-induced differentiation of THP-1 monocytic cells into macrophages. We found that MMP1, MMP8, MMP3, MMP10, MMP12, MMP19, MMP9, and MMP7 were upregulated during differentiation whereas MMP2 remained unchanged. Expression of MMPs increased in a time-dependent manner; MMP1, MMP8, MMP3, MMP10, and MMP12 increased beginning at 60 hr post PMA treatment whereas MMP19, MMP9, and MMP7 increased beginning at 24 hr post PMA treatment. To identify signal transduction pathways involved in PMA-induced upregulation of MMPs, we treated PMA-differentiated THP-1 cells with specific inhibitors for PKC, MEK1, NF-${\kappa}B$, PI3K, p38 MAPK and PLC. We found that inhibition of the MEK1 pathway blocked PMA-induced upregulation of all MMPs to varying degrees except for MMP-2. In addition, expression of select MMPs was inhibited by PI3K, p38 MAPK and PLC inhibitors. In conclusion, we show that of the MMPs examined, most MMPs were up-regulated during differentiation of monocyte into macrophage via the MEK1 pathway. These results provide basic information for studying MMPs expression during macrophage differentiation.
Park Dong-Wan;Kim Wan-Sik;Bae Cheol-hwan;Jeong Sung-Hyun;Shin Gil-Cho;Lee Won-Chul
The Journal of Korean Medicine
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v.25
no.3
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pp.123-136
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2004
Objectives : The purpose of this investigation is to evaluate the effects of Woohwangcheongsim-won (WC) on the in vitro neuronal development and alteration in gene expression in a hypoxia model using cultured rat cortical cells. Methods : E/sub 18/ rat cortical cells were grown in a neurobasal medium containing B27 supplement and various concentration of WC. Initial development of growth cone was investigated by phase-contrast microscopy, while dendritic spine formation and synaptogenesis were investigated by immunocytochemistry with SynGAPα(a postsynaptic marker) and synaptophysin (presynaptic marker) antibodies. Alteration in gene expression was analyses by microarray using rat 5K-TwinChips. Results : WC suppressed the development of growth cones and WC increased the number of dendritic spines at 20 and 50㎍/mL concentration but there was no statistical significance. Instead, it significantly decreased the number at 100㎍/mL. The expression of anti-apoptosis gene Bcl2-like 1 (Bcl211) increased (Global M=0.46), while Akt1 decreased. Proapoptosis genes Bad and PDCD2 increased. The expression of hemoglobin alpha 1 (probably neuroglobin) increased (Global M=0.93). The expression of antioxidants such as catalase, heme oxygenase (HO), and PRKAG2 gene increased. The expression PKC gene increased. The expression of retinoic acid receptor alpha (RARα) increased significantly (Global M=1.0). Conclusions : These data suggest that WC trends to suppress cellular activity slightly in normoxia and increases the expression of apoptosis-, antioxidation-, oxygen capture-related genes in hypoxia, but increases Bcl111 that anti-apoptosis gene, on the other hand increases Bad, PDCD2 that pro-apoptosis genes, too..
Impaired insulin secretion from pancreatic beta-cells in response to glucose is an important feature in the pathology of non-insulin-dependent diabetes mellitus (NIDDM). In the course of screening for useful insulin secretagogues, we have isolated and identified YHB-2017 (Genistein) as a insulin secretion potentiator from fermentation broths of our in-house microbial library. The insulinotropic activity of YHB-2017 in isolated rat pancreatic islets was exerted only at high concentration of glucose (8.3-16 mM) but not at low concentration of glucose (3.3-5.5 mM). Also, in perifusion study with isolated rat pancreatic islets, YHB-2017 stimulated insulin secretion in a time-dependent manner when YHB-2017 was added to KRB buffer containing 16 mM glucose. In the presence of $200\;{\mu}M$ diazoxide and 35 mM KCI, which stimulates maximum $Ca^{2+}$ influx independently of KATP channel, YHB-2017 enhanced KATP channel-independent insulin secretion at high concentration glucose (16 mM). To elucidate the mechanisms of the glucose-dependent potentiation effect of YHB-2017, pharmacologic inhibitors for protein kinase A, protein kinase C and calcium/calmodulin kinase II were pre-treated and then the potentiation effect of YHB-2017 on insulin secretion was investigated. Pre-treatment of H89 as a PKA inhibitor had a significant inhibitory effect on YHB-2017-induced potentiation effect. Furthermore, western immunoblotting analyses revealed that YHB-2017 increased phosphorylation of PKA substrates and cAMP response element-binding protein (CREB) under high concentration of glucose. These results demonstrated that the insulinotropic effect of YHB-2017 is mediated through PKA signal pathway and activated amplifying $K_{ATP}$ channel-independent insulin secretion pathway.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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