Modulatory effect of cAMP-PKA system on inhibitory- and excitatory herbs-induced ion currents were investigated by nystatin-perforated patch clamp method under voltage-clamp condition. Ion currents induced by Bupleuri radix and Coptidis rhizoma were not affected by cAMP-PKA system. Ion current induced by Ecliptae herba was partially inhibited by cAMP-PKA system. Ion currents induced by Aconiti tuber and Boshniakiae herba were inhibitory modulated and ion current induced by Zingiberis rhizoma was excitatory modulated by cAMP-PKA system. Modulation of cAMP-PKA system on ion currents induced by Ginseng radix was fluctuated. In this results, it can be seen generally that excitatory herbs-induced ion currents were modulated by cAMP-PKA system while cAMP-PKA system did not affect inhibitory herbs-induced ion currents.
Kim, Kyu-Sung;Cho, Byung-Han;Choi, Ho-Seok;Park, Chang-Shin;Jung, Yoon-Gun;Kim, Young-Mo;Jang, Tae-Young
Molecular & Cellular Toxicology
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제4권3호
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pp.177-182
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2008
Caveolin proteins are mediators of cell death or the survival of injured cells, and they are inhibitors of various signaling pathways. The expression of caveolin-, which is involved in the protein kinase A (PKA) signaling pathway, was examined in the differentiated mouse vestibular cell line UB/UE-1 after gentamicin ototoxicity. Caveolae in the vestibular hair cell of healthy guinea pigs were observed through an electron microscope. UB/UE-1 cells were cultured at 95% $CO_2$ with 5% $O_2$ at $33^{\circ}C$ for 48 hours and at 95% $CO_2$ with 5% $O_2$ at $39^{\circ}C$ for 24 hours for differentiation. Cells were treated with 1 mM gentamicin, 0.02 mM H89 (PKA inhibitor), and then incubated for 24 hours. Caveolin-1 expression was examined by western blotting and PKA activity by a $PepTag^{(R)}$ assay. Caveolae were observed in the vestibular hair cells of healthy guinea pigs by electron microscopy. Caveolin-1 was expressed spontaneously in differentiated UB/UE-1 cells and increased after gentamicin treatment. PKA was also over-activated by gentamicin treatment. Both gentamicin-induced caveolin-1 expression and PKA over-activation were inhibited by H89. These results indicate that gentamicin-induced caveolin-1 expression is mediated by the PKA signaling pathway. We conclude that caveolae/ caveolin activity, induced via a PKA signaling pathway, may be one of the mechanisms of gentamicin-induced ototoxicity.
Yum, Jinah;Jeong, Hyung Min;Kim, Seulki;Seo, Jin Won;Han, Younho;Lee, Kwang-Youl;Yeo, Chang-Yeol
Molecules and Cells
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제28권1호
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pp.67-71
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2009
Estrogen receptor ${\alpha}$ ($ER{\alpha}$) mediates the mitogenic effects of estrogen. $ER{\alpha}$ signaling regulates the normal growth and differentiation of mammary tissue, but uncontrolled $ER{\alpha}$ activation increases the risk to breast cancer. Estrogen binding induces ligand-dependent $ER{\alpha}$ activation, thereby facilitating $ER{\alpha}$ dimerization, promoter binding and coactivator recruitment. $ER{\alpha}$ can also be activated in a ligand-independent manner by many signaling pathways, including protein kinase A (PKA) signaling. However, in several $ER{\alpha}$-positive breast cancer cells, PKA inhibits estrogen-dependent cell growth. FoxH1 represses the transcriptional activities of estrogen receptors and androgen receptors (AR). Interestingly, FoxH1 has been found to inhibit the PKA-induced and ligand-induced activation of AR. In the present study, we examined the effects of PKA activation on the ability of FoxH1 to represses $ER{\alpha}$ transcriptional activity. We found that PKA increases the protein stability of FoxH1, and that FoxH1 inhibits PKA-induced and estradiol-induced activation of an estrogen response element (ERE). Furthermore, in MCF7 cells, FoxH1 knockdown increased the PKA-induced and estradiol-induced activation of the ERE. These results suggest that PKA can negatively regulate $ER{\alpha}$, at least in part, through FoxH1.
Cyclic AMP-mediated signaling pathways regulate a number of cellular functions. In this study, we examined the regulatory role of cAMP signaling pathways in chondrogenesis of chick limb bud mesenchymal cells in vitro. Forskolin, which increases cellular cAMP levels by the activation of adenylate cyclase, enhanced chondrogenic differentiation. Inhibition of PKA with specific inhibitors (H89 or KT5720) blocked pre-cartilage condensation stage, indicating that chondrogenesis is regulated by the increase in cellular cAMP level and subsequent activation of PKA. Downstream signaling pathway of PKA leading to gene expression was investigated by examination of several nuclear transcription factors. Forskolin treatment increased transcription level for a cartilage-specific marker gene Sox9. However, inhibition of PKA with H89 led to restore expression of Sox9, indicating PKA activity was required to regulate the expression of Sox9 in chondrogenesis. In addition, CREB was highly phosphorylated at early stage of mesenchyme culture, and followed by progressive dephosphorylation. CBP and ATF, another CRE related proteins were transiently expressed at the early stage of chondrogenesis with a pattern similar to CREB phosphorylation. Electrophoretic mobility shift assays confirmed that the binding activity of CREB to the CRE is closely correlated to the phosphorylation pattern of CREB. Therefore, cAMP-mediated signal transduction to nuclear events for the induction of genes appeared to be required at the early stage of chick limb bud chondrogenesis.
Lipid accumulation in white adipose tissue is the key contributor to the obesity and orchestrates numerous metabolic health problems such as type 2 diabetes, hypertension, atherosclerosis, and cancer. Nonetheless, the prevention and treatment of obesity are still inadequate. Recently, scientists found that brown adipose tissue (BAT) in adult humans has functions that are diametrically opposite to those of white adipose tissue and that BAT holds promise for a new strategy to counteract obesity. In this study, we evaluated the potential of sinapic acid (SA) to promote the thermogenic program and lipolysis in BAT. SA treatment of brown adipocytes induced the expression of brown-adipocyte activation-related genes such as Ucp1, Pgc-1α, and Prdm16. Furthermore, structural analysis and western blot revealed that SA upregulates protein kinase A (PKA) phosphorylation with competitive inhibition by a pan-PKA inhibitor, H89. SA binds to the adenosine triphosphate (ATP) site on the PKA catalytic subunit where H89 binds specifically. PKA-cat-α1 gene-silencing experiments confirmed that SA activates the thermogenic program via a mechanism involving PKA and cyclic AMP response element-binding protein (CREB) signaling. Moreover, SA treatment promoted lipolysis via a PKA/p38-mediated pathway. Our findings may allow us to open a new avenue of strategies against obesity and need further investigation.
We examined the effect of modulation of PKA isozymes on the growth of human ovarian cancer cells. Three ovarian cancer cell lines, 2774, SK-OV-3, and OVCAR-3, were examined in this study. The treatment of 5 uM 8-CI-cAMP, which has been known to down-regulate RI (or type 1 PKA) and up-regulate RII (or type II PKA), markedly inhibited the growth of all cell lines (50-80% at day 6). To test whether alteration in PKA regulatory subunits level can change the growth characteristics of ovarian cancer cells, we introduced RIIB- expression construct and Rla antisense-expression construct into 2774 cells. The overexpression of RIIB down-regulated Rla protein, and the antisense-expression of Rla up-regulated RIIB protein, showing that the intracellular levels of RI and RII are reciprocally regulated. In both cases, cell growth was reduced by 30% at day 2. These results indicate that the growth of ovarian cancer cells is controlled by the signals from PKA isozymes, and the modulation of PKA isozymes can be employed for the human ovarian cancer therapy.
A kinetic assay was carried out in order to compare the ability of detection for prekallikrein activator(PKA) in plasma-derived products with that of an endpoint assay and a commercial method. Using these methods, 9 human albumin preparations were assayed and compared to each other. The coefficient of variation between the Kinetic assay and the end point assay was found within 6.6% and this result showed that two methods were highly correlative and the end point assay could act as a replacement of the kinetic assay. Another important goal of this study was to investigate the reproducibility among laboratories on the kinetic assay. A collaborative study was performed to validate the kinetic method with intra and inter assays. The coefficient of variation for the intra assay of each laboratory was less than 4% and that for between individuals in the inter assay was 4.1%. These results revealed that the kinetic assay showed good reproducibility. The contents of PKA in plasma-derived products were also determined by the kinetic assay. As a result, it was found that trace amounts of PKA were present in 32 human immunoglobulin preparations, however the average concentration of PKA in 171 albumin preparations was 5.8 IU/mL.
Park, Ae Ran;Fu, Minmin;Shin, Ji Young;Son, Hokyoung;Lee, Yin-Won
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제26권5호
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pp.967-974
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2016
Zearalenone (ZEA) is an estrogenic mycotoxin that is produced by several Fusarium species, including Fusarium graminearum. One of the ZEA biosynthetic genes, ZEB2, encodes two isoforms of Zeb2 by alternative transcription, forming an activator (Zeb2L-Zeb2L homooligomer) and an inhibitor (Zeb2L-Zeb2S heterodimer) that directly regulate the ZEA biosynthetic genes in F. graminearum. Cyclic AMP-dependent protein kinase A (PKA) signaling regulates secondary metabolic processes in several filamentous fungi. In this study, we investigated the effects of the PKA signaling pathway on ZEA biosynthesis. Through functional analyses of PKA catalytic and regulatory subunits (CPKs and PKR), we found that the PKA pathway negatively regulates ZEA production. Genetic and biochemical evidence further demonstrated that the PKA pathway specifically represses ZEB2L transcription and also takes part in posttranscriptional regulation of ZEB2L during ZEA production. Our findings reveal the intriguing mechanism that the PKA pathway regulates secondary metabolite production by reprograming alternative transcription.
Compartmentation of intracellular signaling pathways serves as an important mechanism conferring the specificity of G protein-coupled receptor (GPCR) signaling. In the heart, stimulation of $\beta$$_2$-adrenoceptor ($\beta$$_2$-AR), a prototypical GPCR, activates a tightly localized protein kinase A (PKA) signaling, which regulates substrates at cell surface membranes, bypassing cytosolic target proteins (eg, phospholamban). Although a concurrent activation of $\beta$$_2$-AR-coupled $G_{i}$ proteins has been implicated in the functional compartmentation of PKA signaling, the exact mechanism underlying the restriction of the $\beta$$_2$-AR-PKA pathway remains unclear. In the present study, we demonstrate that phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K) plays an essential role in confining the $\beta$$_2$-AR-PKA signaling. Inhibition of PI3K with LY294002 or wortmannin enables $\beta$$_2$-AR-PKA signaling to reach intracellular substrates, as manifested by a robust increase in phosphorylation of phospholamban, and markedly enhances the receptor-mediated positive contractile and relaxant responses in cardiac myocytes. These potentiating effects of PI3K inhibitors are not accompanied by an increase in $\beta$$_2$-AR-induced cAMP formation. Blocking $G_{i}$ or $G_{$\square$$\square$}$ signaling with pertussis toxin or $\beta$ARK-ct, a peptide inhibitor of $G_{$\square$$\square$}$, completely prevents the potentiating effects induced by PI3K inhibition, indicating that the pathway responsible for the functional compartmentation of $\beta$$_2$-AR-PKA siglaling sequentially involves $G_{i}$, $G_{$\square$$\square$}$, and PI3K. Thus, PI3K constitutes a key downstream event of $\beta$$_2$-AR- $G_{i}$ signaling, which confines and negates the concurrent $\beta$$_2$-AR/Gs-mediated PKA signaling.gnaling.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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