Hypocotyl explants of flowering cabbage were precultured on MS medium without kanamycin and then cocultured with Agrobacterium tumefaciens LBA4404;;pGA875 harboring insect resistantce proteinase inhibitor II(PI-II) gene in MS liquid medium adjusted pH 5.5 for 72hr. These explants were transferred to MS medium containing 20 mg/L kanamycin, 500 mg/L carbenicillin, and 1 mg/L BA. The explants were subsequently subcultured every 2 weeks. After 4 weeks of subculture, kanamycin-resistant shoots were obtained from selection medium. Leaves of putative transformants survived on MS selection medium containing 30 mg/L kanamycin. Incoporation of the PI-II gene into flowering cabbage was confirmed by PCR analysis of genomic DNA. Southern blot analysis showed that ECL-labeled probe for PI-II gene was hybridized to the expected amplified genomic DNA fragment of about 500 by from transgenic flowering cabbage.
Soluble latex protein fraction excreted from Euporbia lathyris laticifer was resolved by 10% SDS-polyacrylamide gel electrophoresis to identify distinctively displayed latex major protein bands including ELp65, ELp55, ELp43, ELp32 and ELp23. Among them, ELp65 was purified by ammonium sulfate precipitation, gel permeation chromatography and ion exchange chromatography. Its N-terminal amino acid sequencing revealed its homology to the leading region of mature peptide of tomato p69a subtilisin-like protease, suggesting a certain role involved in plant defense system. In the analysis of Southern blot hybridization using PCR-amplified tomato p69a probe DNA, E. lathyris genome was suggested to have a gene family consisting of 3-5 gene members putatively encoding subtilisin-like proteases.
The cytosolic glutathione reductase (GR) gene of Brassica campestris L. was introduced into several Japonica cultivars of rice by Agrobacterium tumefaciens and a large number of transgenic plants were produced. Three-week old calli were co-cultivated with A. tumefaciens strain EHA101 carrying the plasmid pIGR1. The efficiency of transformation was differed from rice cultivars. A Japonica cultivar, 'Daeribbyeo' appeared the highest efficiency (42.5%) of transformation among the four cultivars tested. The addition of acetosyringone (50 $\mu$M) during co-cultivation was a key to successful transformation. Transgene fragments were identified by PCR amplification and further confirmed by Southern blot analysis. Mendelian inheritance of the transgenes was confirmed in T$_1$ progeny.
construct containing reporter gene(pFV4CAT) regulated by carp $\beta$-actin promoter was microinjected into the one-cell stage egg of mud loach (Misgurnus mizolepis), and was successfully expressed, possibly by the integration into the genome. Both mean hatching success and early survival of the microinjected groups were not significantly different with those of control groups (P>0.05). The incidence of transgene was ranged from 7 to 48% based on the PCR and/or Southern blot analyses with the DNA prepared from fin or blood tissue. The spatial and temporal patterns of expression of the pFV4CAT gene, measured by in situ immunohistochemical analysis peroxidase-conjugated anti-CAT antibody, were variable among the experimental individuals. These results suggest that carp $\beta$-actin promoter is effective to express other transgene in mud loach, such that this promoter can be useful in the generation of valuable transgenic mud loach.
To investigate the function of chloroplast-localized small HSP in rice, the cDNA, Oshsp21, was introduced into rice plants via Agrobacterium-mediated gene transfer system. Calli induced from rice immature embryos were co-cultivated with a A. tumafaciens EHA101 that contained a plasmid, pIHSP21. The efficiency of plant regeneration from the calli co-cultivated with the Agrobacterium was about 30%. PCR and Southern blot analyses using genomic DNA revealed that gene for the chloroplast small HSP was introduced into the genome of rice. Expression of transgene was investigated by northern blot analysis. Results indicate that the transgene, Oshsp21, was constitutively expressed at normal growth temperature.
Kim, Young-Sook;Kim, Mi-Young;Kwon, Tae-Ho;Yang, Moon-Sik
Journal of Plant Biotechnology
/
v.30
no.1
/
pp.97-102
/
2003
Lettuce (Lactuca sativa) was transformed with Agrobacterium tumefacience LBA4404 containing human granulocyte macrophage colony stimulating factor (hGM-CSF) gene to produce in cell suspension cultures. Cell suspension culture was established using callus from transgenic lettuce plant. Integration of hGM-CSF gene into plant chromosome was confirmed through genomic PCR and Southern blot analysis. In addition, Northern blot analysis indicated the expression of the introduced hGM-CSF gene in transformed lettuce. The recombinant hGM-CSF was expressed in transgenic cell cultures derived from transgenic plants as a yield of about 149.0 $\mu\textrm{g}$/L in culture filtrate, which was determined by ELISA. These results demonstrated that transformed lettuce cell suspension cultures could be used as a production system of therapeutic proteins such as hGM-CSF.
An experiment was carried out to introduce OsHSP17.9, a low molecular HSP gene isolated from rice plant to orchardgrass (Dactylis glomerata L.) using Agrobacterium. Mature seed-derived calli of orchardgrass were co-cultured with Agrobacterium tumefaciens EHA101 harboring the plasmid pIG-HSP17.9 for transformation. Calli selected by hygromycin were transferred to N$_{6}$ medium containing 1 mg/L NAA, 5 mg/L kinetin, 250 mg/L cefotaxime and 50 mg/L hygromycin and several hygromycin resistant plants were obtained. Stable incorporation of the introduced OsHSP17.9 to the genome of the hygromycin resistant plants was confirmed by PCR and Southern blot analysis. Transformation efficiency was variable between cultivars in which it was 16.5% in Potomac and 8.0% in Frontier. Constitutive expression of the transgene in the transformed orchardgrass tissues was identified by Northern blot analysis but transcript levels were different among individual plants.s.
본 실험은 spermatogonia 단계에 발현하는 유전자를 찾기 위하여 suppression subtractive hybridization를 수행하였다. 기존에 mouse에서는 spermatogonia 특이적인 유전자들이 밝혀져 있기 때문에 pig에 특이적인 유전자를 찾기 위하여 pig 250days testis와 pig 60days testis를 재료로 하여 실험하였다. SSH를 통하여 254days testis에 특이적으로 발현되는 후보유전자를 7개 찾았고 25days testis와 60days testis 의 Northern blot을 통하여 25days에 과발현하고 60days에 발현의 양이 대폭 줄어드는 spermatogonia 유전자로 생각되는 후보유전자 2개를 선택하여 pig tissue northern blot, genomic DNA southern blot, RT-PCR 그리고 In-situ hybridization을 수행하였다. Tissue northern blot과 RT-PCR을 통하여 후보자 1번은 간과 폐, 난소, 정소에서 발현하고, 후보유전자 15번은 난소와 정소에서만 특이적으로 발현함을 알았다. DNA sequence analysis와 NCBI Blast search를 통하여 후보자 1번은 다른 종에서 밝혀진 유전자였고 후보유전자 15번은 어느 종에서도 밝혀지지 않은 새로운 유전자였다. Degenerated primer를 통하여 후보자 1번의 pig full sequence를 밝히고 NCBI에 등록하였다. 그리고 In-situ hybridization을 통하여 후보유전자득이 20일째 testis의 Leydic cell에서 많이 발현되고 adult testis에서는 발현이 감소하는 결과를 얻었다. 이것으로 보아 위의 두 후보유전자는 spermatogonia에 직접 관련된 유전자이기 보다는 spermatogonia의 발달에 영향을 주는 leydic cell 특이발현을 가진 유전자로 사료되어진다.
Rumex acetosa L. is a dioecious flowering plant with well developed sex chromosome system: 2n = 12 + XX in the female plants and 2n = 12 + XY1Y2 in the male plants. To isolate sex-linked DNA, we carried out chromosome micromanipulation, followed by DOP-PCR, AFLP of the PCR products, reverse Southern hybridization and sequence analysis. From 500 AFLP specific clones, 13 X-chromosome and 5 Y-chromosome specific clones were obtained. Except one clone RADAX-239 ($\underline{R}umex\;\underline{a}-\underline{D}OP-PCR-\underline{A}FLP-\underline{Y}-chromosome\;specific$), all clones appear to be R. acetosa plant-specific sequences and non-coding sequences. Southern blot analysis using these clones could not discriminate genomic DNAs either from male or female plants. Results of this study imply that both autosome-origin and degeneration of sex chromosomes are prevalent in plant systems.
Cotyledon explants of lettuce were cocultured with Agrobacterium tumefaciens LBA4404::pBKS-GR1 harboring glutathione reductase(GR) gene in MS medium supplemented with 0.1 mg/L NAA and 1.0 mg/L 2ip for 48 hr. These explants were transferred to MS medium supplemented with 0.1 mg/L NAA and 1.0 mg/L 2ip, 50 mg/L kanamycin, and 500 mg/L carbenicillin. After 4 weeks of subculture, kanamycin-resistant shoots were obtained on selection medium. Leaves of putative transformants survived on selection medium containing 100 mg/L kanamycin. Incoporation of the GR gene into lettuce was confirmed by PCR analysis of genomic DNA. Southern blot analysis showed that ECL-labeled GR gene was hybridized to the expected amplified genomic DNA fragment of about 1.8 kb from transgenic lettuce. The presence of mRNA in transgenic lettuce was confirmed by RT-PCR with total RNA of transgenic lettuce. In progeny test of transformants, R$_1$ seeds were resistant to kanamycin (200mg/L) on MS medium.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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