Accurate and rapid diagnosis of dermatophytosis, a disease whose prevalence has been steadily increased, is important for successful treatment. Current laboratory methods for diagnosing dermatophytosis rely on KOH mount and fungal culture method. However, these methods have low sensitivity and are time-consuming (2~4 weeks to diagnosis). In our previous study, a rapid molecular diagnostic assay (PCR-reverse blot hybridization assay, REBA) was developed to identify the following 6 main species of dermatophytes: Trichophyton rubrum, T. mentagrophytes, T. tonsurans, Microsporum canis, M. gypseum, and Epidermophyton floccosum. However, the REBA required more evaluation to validate its use in clinical examinations. The aim of the present study was to evaluate and validate the ability of the PCR-REBA to successfully identify dermatophytes in clinical isolates from dermatophytosis patients. Both conventional identification methods and the PCR-REBA were used to assess the presence of species of dermatophytes in 148 clinical isolates. The results of the two approaches were compared, and discrepancies between the two approaches were resolved by fungal ITS1 sequence analysis. T. rubrum was the most prevalent dermatophyte identified by conventional identification methods (118/148, 79.7%) and the PCR-REBA (131/148, 88.4%). The overall rate of consistency between conventional identification methods and the PCR-REBA was 79.0% (117/148 samples). Fungal ITS1 sequence analysis showed that PCR-REBA results were correct for 93.5% (29/31) of the discrepant samples. The PCR-REBA is rapid, sensitive, and highly specific compared with conventional identification methods. Thus, the PCR-REBA is a potentially useful tool for identifying dermatophytes in clinical settings.
수인성 병원성 미생물에 의한 공중목욕탕의 오염은 질병발생의 원인이 된다. 본 연구에서는 공중목욕탕내에 존재하는 수인성 병원성미생물들을 확인하고자 하였다. 서울지역내의 30 곳 공중목욕탕에서 욕조수 시료를 채수하여 진행하였다. 수인성 병원성미생물의 검출은 0.45 ${\mu}m$의 여과막을 이용하여 전통적인 배양방법으로 분리 및 동정하였다. 분자생물학적 기법을 사용하기 위해 미생물학적인 배양을 하지 않고 핵산을 추출하여 16S rRNA유전자를 표적으로 polymerase chain reaction-reverse blot hybridization (PCR-REBA)을 실시하였다. 미생물학적 배양방법에서는 지표세균인 Escherichia coli와 Shigella spp.가 검출되었으며, 분자생물학적 기법인 PCR-REBA을 수행한 결과 E. coli, Shigella spp., Salmonella spp., Pseudomonas spp., Mycobacterium spp. 등의 수인성 병원성미생물이 7곳에서 검출되었다. 본 연구결과를 토대로 공중목욕탕의 욕조수내에 수인성병원성미생물에 의한 감염을 줄이기 위해 적절한 위생관리과 E. coli를 포함한 유해미생물을 선정하여 지속적인 모니터링이 필요할 것으로 사료된다.
Park, Sung-Bae;Park, Heechul;Bae, Jinyoung;Lee, Jiyoung;Kim, Ji-Hoi;Kang, Mi Ran;Lee, Dongsup;Park, Ji Young;Chang, Hee-Kyung;Kim, Sunghyun
대한의생명과학회지
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제25권4호
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pp.426-430
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2019
Currently, molecular diagnostic assays based on nucleic acid amplification tests have been shown to effectively detect mycobacterial infections in various types of specimen, however, variable sensitivity was shown in FFPE samples according to the kind of commercial kit used. The present study therefore used automated PCR-reverse blot hybridization assay (REBA) system, REBA Myco-ID HybREAD 480®, for the rapid identification of Mycobacterium species in various types of human tissue and compared the conventional one-tube nested-PCR assay for detecting Mycobacterium tuberculosis (MTB). In conventional nested-PCR tests, 25 samples (48%) were MTB positive and 27 samples (52%) were negative. In contrast, when conducted PCR-REBA assay, 11 samples (21%) were MTB positive, 20 samples (39%) were NTM positive, 8 samples (15%) were MTB-NTM double positive, and 13 samples (25%) were negative. To determine the accuracy and reliability of the two molecular diagnostic tests, the one-tube nested-PCR and PCR-REBA assays, were compared with histopathological diagnosis in discordant samples. When conducted nested-PCR assay, 10 samples (59%) were MTB positive and seven samples (41%) were negative. In contrast, when conducted PCR-REBA test, three samples (17%) were MTB positive, 10 samples (59%) were NTM positive and four samples (24%) were negative. In conclusion, the automated PCR-REBA system proved useful to identify Mycobacterium species more rapidly and with higher sensitivity and specificity than the conventional molecular assay, one-tube nested-PCR; it might therefore be the most suitable tool for identifying Mycobacterium species in various types of human tissue for precise and accurate diagnosis of mycobacterial infection.
A total of 30 water samples were collected from 30 different public baths in Seoul, Korea. Contamination of public bath water by waterborne pathogens can cause disease outbreaks and contribute to increase background rates of disease. Pathogens in water was filtered by nitrocellulose membrane with $0.45{\mu}m$ pore size. The membrane filters were analyzed by both cultivation and polymerase chain reaction (PCR) amplification of partial 16S rRNA gene. Various microorganisms including 4 Escherichia coli/Shigella spp. 1 Salmonella spp. 3 Pseudomonas aeruginosa and 2 Mycobacterium spp. were identified by reverse blot hybridization assay (REBA). PCR-REBA was able to identify many bacterial genera in one assay. Our results suggest that appropriate hygiene practice and continuous monitoring is needed for reducing health risk associated with public bath houses.
The present study was set to develop comprehensive system for assessing the safety of drinking water using PCR-reverse blot hybridization assay (REBA). The REBA developed in this study can detect waterborne pathogens such as Shigella spp., Salmonella spp., Citrobacter spp., Enterobacter spp., Klebsiella spp., Yersinia spp., Mycobacterium spp., Listeria spp. at the genus level, and Escherichia coli, Citrobacter freundii, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Yersinia enterocolitica, Y. pseudotuberculosis, Mycobacterium avium complex, M. marinum, Enterococcus faecalis, and Staphylococcus aureus at the species level, and E. coli O157:H7 at the strain level.
Tuberculosis (TB) remains an unsolved community health problem since identification of its causing microorganism called Mycobacterium tuberculosis (MTB) by Robert Koch in 1882. Annually, eight million TB cases are newly reported and 2~3 million patients die from TB. Pulmonary TB is highly infectious and untreated pulmonary TB patients are believed to infect >10 people in a year. The conventional methods for diagnosis of TB are chest X-ray and isolation of the causing microorganisms from patient specimens. Screening of TB is conducted with smeared sputum in slides, and TB is confirmed by identification of MTB in cultured specimens. One of the fatal pitfalls of screening detection for smeared sputum is that it is impossible to distinguish MTB and other acid-fast bacilli (AFB) because they are stained equally with Ziehl-Neelsen (ZN) stain. Culture of MTB is the most reliable method for diagnosis of TB but it takes 4~8 weeks. In this report, we suggest a fast and highly-reliable MTB detection method that distinguishes AFB in sputum samples. Purified DNA from the AFB stained slide samples offered by The Korean Institute of Tuberculosis were used to detect infected MTB in patients. PCR, real-time PCR and reverse blot hybridization assay (REBA) methods were applied to purified DNA. Conclusively, the real-time PCR method was confirmed to produce high sensitivity and we were able to further detect drug-resistant MTB with REBA.
Bae, Jinyoung;Park, Sung-Bae;Kim, Ji-Hoi;Kang, Mi Ran;Lee, Kyung Eun;Kim, Sunghyun;Jin, Hyunwoo
대한의생명과학회지
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제26권3호
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pp.170-178
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2020
Mycobacterium tuberculosis (MTB) continues to be one of the main causative agents of tuberculosis (TB); moreover, the incidence of nontuberculous mycobacteria (NTM) infections has been rising gradually in both immunocompromised and immunocompetent patients. Precise and rapid detection and identification of MTB and NTM in respiratory specimens are thus important for MTB infection control. Molecular diagnostic methods based on the nucleic acid amplification test (NAAT) are known to be rapid, sensitive, and specific compared to the conventional acid-fast bacilli (AFB) smear and mycobacterial culture methods. In the present study, the clinical performances of three commercial molecular diagnostic assays, namely TB/NTM PCR (Biocore), MolecuTech Real MTB-ID® (YD Diagnostics), and REBA Myco-ID® (YD Diagnostics), were evaluated with a total of 92 respiratory specimens (22 AFB smear positives and 67 AFB smear negatives). The sensitivity and specificity of TB/NTM PCR were 100% and 75.81%, respectively. The corresponding values of MolecuTech Real MTB-ID® and REBA Myco-ID® were 56.52% and 90.32%, and 56.52% and 82.26%, respectively. TB/NTM PCR showed the highest sensitivity; however, the concordant rate was 10% compared with sequence analysis. Although MolecuTech Real MTB-ID® showed lower sensitivity, its specificity was the highest among the three methods. REBA Myco-ID® allowed accurate classification of NTM species; therefore, it was the most specific diagnostic method. Of the three PCR-based methods, MolecuTech Real MTB-ID® showed the best performance. This method is expected to enable rapid and accurate identification of MTB and NTM.
Kim, Sung-Hyun;Lee, Dong-Sup;Kim, Yeun;Kim, Gee-Hyuk;Park, Sang-Jung;Choi, Yeon-Im;Kim, Tae-Ue;Park, Kwang-Hwa;Lee, Hye-Young
대한의생명과학회지
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제18권2호
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pp.123-130
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2012
In this study, we evaluated the human papillomavirus (HPV) genotyping test called MolecuTech REBA HPV-$ID^{(R)}$ (YD Diagnostics, Seoul, Korea) for 704 women who also had cervical cytological evaluations by Thin Prep. The infection rate of high-risk HPV genotypes was 56.6% in patients with normal cytology, 59.8% in those with benign, low-grade squamous intraepithelial lesions, 51.4% in those with atypical squamous cells of uncertain significance, 92.3% in those with high-grade squamous intraepithelial lesions, and 94.1% in those with squamous cell carcinoma or adenocarcinoma. HPV 16 was the most common genotype detected in any lesion, followed by HPV 53, 58, 33, 52, 45, 31, and 35, in order. The HPV DNA test with PCR-REBA is a very highly sensitive, but less specific, method. The infection rates and HPV genotype distribution of non-Korean people versus people from South Korea showed regional differences.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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