This study aimed to develop Lautropia mirabilis-specific quantitative real-time polymerase chain reaction (qPCR) primers based on the sequence of DNA-directed RNA polymerase subunit beta gene. The PrimerSelect program was used in designing of the qPCR primers, RTLam-F4 and RTLam-R3. The specificity of the qPCR primers were performed by conventional PCR with 37 strains of 37 oral bacterial species, including L. mirabilis. The sensitivity of the primers was determined by qPCR with the serial dilution of purified genomic DNA of L. mirabilis KCOM 3484, ranged from 4 ng to 4 fg. The data showed that the qPCR primers could detect only L. mirabilis strains and as little as 40 fg of genome DNA of L. mirabilis KCOM 3484. These results indicate that this qPCR primer pair (RTLam-F4/RTLam-R3) may be useful for species-specific detection of L. mirabilis in epidemiological studies of oral bacterial infectious diseases such as periodontal disease.
Jo, Beom-Ho;Lee, Jung Ro;Choi, Wonkyun;Moon, Jeong Chan;Shin, Su Young;Eum, Soon-Jae;Seol, Min-A;Kim, Il Ryong;Song, Hae-Ryong
Journal of Plant Biotechnology
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v.42
no.2
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pp.117-122
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2015
Canola is a crop globally used for production of oil and biofuel. Cultivation area and import volume of living modified (LM) canola have been increasing every year. As canola import dependence has reached 100% in Korea, efforts have been made for safety management of LM canola and ecological risk assessment. We developed a set of multiplex PCR method for simultaneous detection of 5 LM canola events (Topas 19/2, Rf3, Ms8, RT73 and T45) approved in Korea. The multiplex PCR assay developed allows amplification of estimated products of 5 LM canolas from event specific primer sets. Primer extension time was skipped for a time-consuming process and two annealing steps (20 cycles at $55^{\circ}C$ and 20 cycles at $60^{\circ}C$) were performed for yielding the best result which was sufficient to distinguish five LM canolas. Our results suggest that multiplex PCR method provides a cost and time-effective approach for LM canola detection.
Kim, Jae-Hwan;Song, Hee-Sung;Jee, Sang-Mi;Ryu, Tae-Hun;Kim, Dong-Hern;Kim, Hae-Yeong
Applied Biological Chemistry
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v.48
no.4
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pp.335-338
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2005
For the development of qualitative PCR detection method of genetically modified rice (Oryza sativa L.), rice species specific gene, SAMDC1 (S-adenosylmethionine decarboxylase), was selected and validated as suitable for use as an endogenous reference gene in rice. The primer pair OsSAMDC1-5'/3' with 110 bp amplicon was used for amplification of the rice endogenous gene, SAMDC1 and no amplified product was observed from 19 different plants as templates. Qualitative PCR method was assayed with 2 different GM rices (Milyang 204 and Iksan 483) developed in Korea. For the qualitative PCRs, the construct-specific detection primer pairs were constructed. Os204-5'/OsNOS-3' amplifying the junction region of GUS gene and NOS terminator introduced in Milyang 204 gave rise to an amplicon 172 bp; also, Os483-5'/OsNOS-3' amplifying the junction region of Bar gene and NOS terminator introduced in Iksan 483 gave rise to an amplicon 161 bp.
A PCR method that combines biological and enzymatic amplification of PCR targets was developed for the detection of Pseudomonas syringae pv. actinidiae on kiwifruit leaves. A nested PCR was performed with primers designes from the coding sequence of the cfl gene, which is involved in production of the phytotoxin coronatine. The first and second primer sets efficiently amplified expected 665 and 310-bp fragments, respectively. With two successive amplifications, as few as 20 CFU/ml of P. syringae pv. actinidiae could be detected on ethidium bromide-stained agarose gel. Leaf samples were collected from 4 kiwifruit trees showing yellow halo spots on leaves and incubated in pepton-sucrose broth for 12 h at $16^{\circ}$C before PCR amplification. Positive detection was obtained with one sample, which was proved as a diseased plant in the next spring.
Kim, Jun Young;Woon, Jang Si;Kim, Hyun Ju;Kim, Seong Hwan
The Korean Journal of Mycology
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v.46
no.2
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pp.186-192
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2018
Rapid and accurate detection methods for Colletotrichum coccodes, an anthracnose pathogen of pepper and tomato, were developed using PCR. A specific primer set, coccoTef-F/coccoTef-R, which was constructed by analyzing tef-$1{\alpha}$ genes from 13 species and 22 strains of Colletotrichum, could specifically detect C. coccodes at a level of 10 ng by conventional PCR method and at 10 pg by real-time PCR. The PCR-based methods were also capable of detecting C. coccodes in pepper and tomato seeds artificially infected with the pathogen. The developed PCR methods can be applied for rapid and accurate inspection of C. coccodes in the seeds intended for export or import.
Fusarium verticillioides (teleomorph: Gibberella moniliformis), a member of the Gibberellea fujikuroi species complex, causes rots of corn stalks and ears, and produces a group of mycotoxins known as fumonisins that are harmful to animals and humans. Here, we focus on the development of a species-specific PCR primer set for differentiating F. verticillioides from other fumonisin-producing Fusarium species belonging to the species complex, such as F. proliferatum, F. fujikuroi, and F. subglutinans that are frequently associated with corn. The specific primers (RVERT1 and RVERT2) derived from the nucleotide sequences of RNA polymerase II beta subunit (RPB2) gene amplified a 208 bp-DNA fragment from only F. verticillioides isolates among the potential fumonisin-producing species examined; all of these isolates were shown to carry FUM1 required for fumonisin biosynthesis. The PCR detection limit using this specific primer set was approximately 0.125 pg/${\mu}l$ genomic DNA of F. verticillioides. In addition, the F. verticillioides-specfic fragment was successfully amplified from genomic DNAs of corn samples contaminated with Fusarium spp. This primer set would provide a useful tool for the detection and differentiation of potential fumonisin-producing F. verticillioides strains in cereal samples.
C. sinensis total RMh was containing large amount of 185 rRNA but little 285 rRNA. The size of the double-stranded cDNA synthesized from poly $(A)^{+}$ mRNA was 0.4-4.2 kb long with tapering unto 9.5 kb. Degenerated oligonucleotides (as 2 sense and 3 antisense Primers) were designed on the conserved regions of the known tropomyosin amino acid sequences. From one out of the PCR amplifications using total CDNA and matrix of primers, a specific gene product, 580 bp in size, was produced. Upon Southern hybridization of the PCR products with Schistosomn mnnsoni tropomyosin (SMTM) CDNA, only one signal appeared at the band of 580 bp product. This 580 bp product was considered to encode C. sinensis tropomyosin (CSTM) and cloned in pGEM-3Zf(-) for DNA sequencing. CSTM cDNA was 575 bp containing one open reading frame of 191 predicted amino acids, which revealed 86.3% homology with SMTM and 51.1% with rrichostronsylur coeubnlormis tropomyosin. CSTM cDNA obtained will serve as a probe in the studies of molecular cloning of CSTM.
The soybean cyst nematode, Heterodera glycines, is a major plant-parasitic nematode that has caused important economic losses to Korea's soybean production. Four species of cyst nematodes, H. schachtii, H. glycines, H. trifolii, and H. sojae, all belong to schachtii group are coexist in field soil in Korea. The rapid identification of the nematode is crucial for preventing crop damage and in decision making for controlling this nematode. This study aimed to develop a species-specific primer set for quantitative PCR (qPCR) assay of H. glycines. The specific primer set (HGF1 and HGR1) for H. glycines was designed based on the cytochrome c oxidase subunit I (COI) sequence of mitochondrial DNA. After optimization, it is possible to identify the H. glycines using a qPCR assay with DNA extracted from a single cyst and single second-stage juvenile (J2). The specificity was confirmed by the absence of SYBR fluorescent signals of three other Heterodera species. A serial dilution of DNA extracted from a single cyst was obtained for the sensitivity test. The result showed that the standard curve of the test had a highly significant linearity between DNA concentration and Ct value (R2 = 0.996, slope = -3.49) and that the detection limit concentration of DNA of the primer set was 10 pg of DNA per reaction. Our findings suggested that H. glycines could be distinguished from H. sojae and other Heterodera species when a qPCR assay is used with a specific primer set.
The difrrrenlial display reverse transcription polymerase chain reaction (DDRT-PCR) aniilysis roils performed to identify the pathogellir strain specific amplicons. mRNAs were purified from the trophozoites of the pathogenif strain YS-27 and the non-pathogenic strain S 16. respectively. Three kinds of rirsl stranded rDNAs were reverse transcribed from the mRNAs by one base anchored oligo-dT 11M (M: A. C, or G) primers. Each cDNA lemplatr was used for DDRT-PCK analysis. A total of 144 pathogenic strain specific amplicons was observed in DDRT-PCR analysis using primer combinations of the 11 arbitrary primers and the 3 one base anchored oli해-dT11M primers. Of these 31 amplit'tons were verified as the amplirons amplified only from the mRNAs of the pathogenic strain by DNA slots biol llybridizatioil. Furthel cklaracleization of the 31 pathogenic strain sprcifil amplicons by DNA slot blot hybridlnation analysis using biotin labeled Probes or the PCR amplified DNA of rysteine proteinase genes revealed that 21 of them were amplliried from the maNAs of the cysteine proteinase genes. Four randomly selected amplirons out of the rest 10 amplirons were used fur screening of cDNA library followed by immunoscreening and all of them were turned outs to be amplified from the mRNA.
Kim, Jae-Hwan;Kim, Tae-Woon;Lee, Woo-Young;Park, Sun-Hee;Kim, Hae-Yeong
Food Science and Biotechnology
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v.16
no.1
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pp.104-109
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2007
A multiplex polymerase chain reaction (PCR) method was developed to simultaneously detect three varieties of genetically modified (GM) canola. The construct-specific primers were used to distinguish the following three varieties of GM canola; GT73, MS8xRF3, and T45, using multiplex PCR. The FatA (fatty acyl-ACP thioesterase) gene was used as an endogenous canola reference gene in the PCR detection. The primer pair Canendo-FIR containing a 105 bp amplicon was used to amplify the FatA gene and no amplified product was observed in any of the 15 different plants used as templates. The GT73-KHUF1/R1 primer recognized the 3'-flanking region of GT73, resulting in an amplicon of 125 bp. The Barstar-F1/MS8xRF3-R primer recognized the junction region of bars tar and the NOS terminator introduced into MS8xRF3, resulting in a 162 bp amplicon, and the T45-F2/R2 primer recognized the junction region of PAT and the 35S terminator introduced into T45, resulting in an amplicon of 186 bp. This multiplex PCR allowed for the detection of construct-specific targets in a genomic DNA mixture of up to 1% GM canola containing GT73, MS8xRF3, and T45.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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