Ju, Min-Yeong;Baek, Seung-Hun;Kim, Eun-Ju;Nguyen, Nguyen Le Thao;Park, Chan-Yeong;Park, Tae-Jeong
Proceedings of the Korean Vacuum Society Conference
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2016.02a
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pp.375.1-375.1
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2016
Polymerase chain reaction (PCR) has revolutionized genetics and become one of the most popular techniques in modern biological and medical sciences. It can be used not only as an in vitro DNA amplification method but also used in many bioassay applications. The PCR can be used to exponentially produce a large number of DNA copies from a small quantity of DNA molecules in a few hours. However, as unwanted DNA fragments are also often manufactured, the amplification efficiency of PCR is decreased. To overcome this limitation, several nanomaterials have been employed to increase the specificity of the PCR reaction. Recently, graphene has attracted a great interest for its excellent electron transfer, thermal and biocompatibility. Especially, gold nanoparticle-coated graphene oxide (GO/AuNPs) led to enhance electron and thermal transfer rate and low-charge transfer resistance. Therefore, we report the development of a demonstration for the PCR efficiency using a large-scale production of the GO and combination of gold nanoparticles. Because a thermal conductivity is an important factor for improving the PCR efficiency in different DNA polymerases and different size samples. When PCR use GO/AuNPs, the result of transmission electron microscopy and real-time quantitative PCR (qPCR) showed an enhanced PCR efficiency. We have demonstrated that GO/AuNPs would be simply outperformed for enhancing the specificity and efficiency of DNA amplification procedure.
Emulsion polymerase chain reaction (PCR) is performed on compartmentalized DNA, allowing a large number of PCR reactions to be carried out in parallel. Emulsion PCR has unique advantages in DNA amplification. It can be applied in many molecular biological assays, especially those requiring highly sensitive and specific DNA amplification. This review discusses the principle of emulsion PCR and its applications in biotechnology. Related technologies are also discussed.
PCR amplification with universal primer is a useful tool for speciation of symbionts in marine eukaryote coupled with robust separation method such as denaturing high performance chromatography (DHPLC). To overcome the biased amplification, clamping PCR is recommended to suppress the amplification of host gene. In this study, we evaluated the efficiency of rare gene detection for two kinds of clamping probes which were successfully utilized for eukaryotic symbiont analysis: C3 linked nucleotide (C3) and peptide nucleic acid (PNA). PNA was 3-4 orders of magnitude higher than that of C3 tested in clamping efficiency and rare gene detection. This represented that PNA could be a more competent clamping probe for the enhancement of PCR amplification for rare symbiont genes.
Eucalyptus dieback disease, caused by Cylindrocladium scoparium, has occurred in last few years in large Eucalyptus planting areas in China and other countries. Rapid, simple, and reliable diagnostic techniques are desired for the early detection of Eucalyptus dieback of C. scoparium prior to formulation of efficient control plan. For this purpose, three PCR-based methods of nested PCR, multiplex PCR, loop-mediated isothermal amplification (LAMP) were developed for detection of C. scoparium based on factor 1-alpha (tef1) and beta-tubulin gene in this study. All of the three methods showed highly specific to C. scoparium. The sensitivities of the nested PCR and LAMP were much higher than the multiplex PCR. The sensitivity of multiplex PCR was also higher than regular PCR. C. scoparium could be detected within 60 min from infected Eucalyptus plants by LAMP, while at least 2 h was needed by the rest two methods. Using different Eucalyptus tissues as samples for C. scoparium detection, all of the three PCR-based methods showed much better detection results than regular PCR. Base on the results from this study, we concluded that any of the three PCR-based methods could be used as diagnostic technology for the development of efficient strategies of Eucalyptus dieback disease control. Particularly, LAMP was the most practical method in field application because of its one-step and rapid reaction, simple operation, single-tube utilization, and simple visualization of amplification products.
The highly polymorphic variable number of tandem repeat (VNTR) loci in the human genome are informative markers for the genetic characterization of individuals in the paternity test and forensic science as well as for the study of human disease. In this study, VNTR loci D1S80 and D2S123 have been amplified by PCR and the amplified length polymorphic alleles were detected with a discontinuous vertical PAGE system and silver staining. For explicit DNA typing, PCR optimization, in which amplification efficiencies are similar over a wide range of allele sizes, non-specific amplifications are minimal, and new longer alleles have high amplification efficiency, has been performed by changing the PCR reaction buffer composition and thermal cycling conditions. It turned out that adding an appropriate amount of Tween 20 and NP40 to the PCR reaction buffer and raising the annealing temperature to $68^{\circ}C$ in thermal cycling made it possible for optimal VNTR loci amplification. A modified PAGE system for VNTR separation was established. Under these conditions, new longer alleles in the 01580 locus were discovered and 025123 pattern changes in colorectal tumors were observed. These technical tips are valuable for detecting various amplified fragment length polymorphisms.
Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) technique relies on autocycling strand displacement DNA sysnthesis without template denaturation steps under isothermal conditions. LAMP has more advantages than modern PCR, as it requires only basic laboratory equipment like an isothermal water bath, oven, and heating cabinet. Hence, in this study, five random primers were designed with Streptococcus parauberis, shikimate kinase Arok gene sequences (Genbank accession number: CP0024711). Two primers were selected based on the ladder pattern. Other optimum reaction conditions like temperature, time, and sensitivity were established and confirmed with conventional SYBR-green PCR. Results confirmed that the designed random primers were species specific, without any non-target DNA amplification under isothermal conditions. Hence, this study suggests that LAMP techniques could be used in the diagnosis of fish pathogen, specifically S. parauberis.
To develop a biomarker for the monitoring of the contamination of estrogenic endocrine disrupters in the aquatic environment, reverse transcription -polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis of vitellogenin (Vg) mRNA expression was optimized in Bombina orientalis, a Korean red bellied toad species. Based on partial cDNA sequences of both Vg and beta actin genes of B. orientalis, specific primers for RT-PCR of Vg and beta actin mRNAs were developed. Semiquantitative RT-PCR of the Vg mRNA in liver was optimized using a beta actin mRNA as an internal control in both sexes. In female RT-PCR using $1\;\mu{g}$ of the liver cDNA resulted in a linear increment in the PCR product of Vg from 18 to 34 cycles of amplification. In male, on the contrary, the RT- PCR product was first detected at 30 cycles of amplification and a linear increment was observed from 30 to 40 cycles of amplification, suggesting that male B. orientalis expresses minute amount of Vg mRNA which is a $2^{-12}$ equivalent of female. In conclusion, the optimized protocol for semiquantitative RT-PCR analysis of Vg mRNA level in B. orientalis male liver will be useful for the environmental monitoring the xenoestrogen contamination in the freshwater environment in Korea.
Jung, Ju Yeon;Kim, Kyoung Sook;Park, Sun Wha;Lim, Si Keun;Lee, Dong Sub;Lee, Yang Han
Analytical Science and Technology
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v.29
no.1
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pp.43-48
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2016
A variety of Y-STR analysis kits have been developed and used in the forensic field. Prior to the forensic application of a new kit, laboratory validation and sensitivity tests are essential processes in selecting suitable alternatives and for assuring that standard operating procedures are followed. In this paper, we have performed a sensitivity study of a new commercial kit, the Yfiler® PLUS PCR Amplification Kit (Yfiler plus kit, released in 2014) by comparing it with the AmpF/STR® YfilerTM PCR Amplification Kit (Yfiler kit, released in 2004). The Yfiler plus kit includes the 17 Y-STR loci of the Yfiler kit and has been supplemented with 10 new Y-STR loci. First, we analyzed the sensitivity difference between the two kits using commercial control DNA 2800M and 007. In addition, we compared the detection rate between the two kits from the 16 selected forensic casework samples of less than 0.5 ng concentrations. The results show that the sensitivity and detection rate of the Yfiler plus kit are higher than the corresponding rates of the Yfiler kit. In addition, we were able to obtain more Y-STR profiles with the use of the new kit. Thus, we suggest that Yfiler plus kit is a more effective forensic tool to detect Y-STR profiles from forensic casework samples of low concentrations.
Salmonella typhi is frequent causes of foodborne illness and its detection is important for monitoring disease progression. In this study, by using general PCR and novel LAMP (Loop Mediated Isothermal Amplification) assay, we evaluated the usefulness of LAMP assay for detection of Salmonella typhi. In this LAMP assay, forward inner primer (FIP) and back inner primer (BIP) was specially designed for recognizing target invA gene. Target DNA was amplified and visualized as ladder-like pattern of bands on agarose gel within 60 min under isothermal conditions at $65^{\circ}C$. When the sensitivity and reproducibility of LAMP were compared to general PCR, there was no difference of reproducibility but sensitivity of LAMP assay was more efficient than PCR (the detection limit of LAMP assay was 30 fg, while the PCR assay was 3 pg). These results indicate that the LAMP assay is a potential and valuable means for detection of Salmonella typhi, especially for its rapidity, simplicity and low cost.
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