The aim of this study was to assess the usefulness of PCR for diagnosis of Trichomonas vaginalis infection among male patients with chronic recurrent prostatitis and urethritis. Between June 2001 and December 2003, a total of 33 patients visited the Department of Urology, Hanyang University Guri Hospital and were examined for T. vaginalis infection by PCR and culture in TYM medium. For the PCR, we used primers based on a repetitive sequence cloned from T. vaginalis (TV-E650). Voided bladder urine (VB1 and VB3) was sampled from 33 men with symptoms of lower urinary tract infection (urethral charge, residual urine sensation, and frequency). Culture failed to detect any T. vaginalis infection whereas PCR identified 7 cases of trichomoniasis (21.2%). Five of the 7 cases had been diagnosed with prostatitis and 2 with urethritis. PCR for the 5 prostatitis cases yielded a positive 330 bp band from bothVB1 and VB3, whereas positive results were only obtained from VB1 for the 2 urethritis patients. We showed that the PCR method could detect T. vaginalis when there was only 1 T. vaginalis cell per PCR mixture. Our results strongly support the usefulness of PCR on urine samples for detecting T. vaginalis in chronic prostatitis and urethritis patients.
Fifty nine strains of Agrobacterium vitis, the causal agent of crown-gall disease on grapevine, originating from different geographical regions and 16 grapevine cultivars including 35 Kyoho cultivar of Korea, were characterized by PCR polymorphic analysis using Universal Rice Primer(URP). Of 12 URP primers, primers URP1F, URP2R, URP2F, and URP4R, URP17R were available for detecting PCR polymorphic bands among the A. vitis strains. PCR polymorphic bands produced by primers URP2F and URP17R were profiled to 12 strain types. A. vitis strains originated from Kyoho cultivar of grapevine showed relatively simple genetic diversify of the four PCR types, while the A. vitis strains originated from other grapevine cultivars and type culture strains showed various genetic diversity with 8 types. Unweighted Pair-Group Method with Arithmetic mean(UPGMA) cluster analysis using the URP-PCR polymorphic bands showed 59.4. vitis strains are genetically clustered into large seven groups.
We report that mycoplasma organisms from lung tissues of slaughter pigs were identified to genes fragments with references use of nested-PCR technique(nPCR). Seven strains of mycoplasma species were isolated from 70 lung tissues. The organisms were detected by in vitro amplification of 16S rRNA and 23S rRNA genes. Nucleotide sequences of the spacer between 16S and 23S in the ribosomal RNA operons of mycoplasma were identified by the analysis of products from the nested PCR. Four common PCR primers, MhF1, MhF2 MhR1 and MhR2, were designed by analysis between these sequences by first amplified with F1, R1 and second with F2, R2, respectively. Specific amplification of the spacer region for reference strains of M. hyopneumoniae, M. hyorhinis, M. flocculare were confirmed by first round of PCR in which the traduced fragments of 690bp, 460bp, 630bp. But amplications of second round was changed to 240bp, 210bp, 230bp, respectively. Three different strains (M. hyopneumoniae:4, M. hyorhinis:2, M. flocculare:1) were detected by the nested-PCR technique. The results suggest that the detection of swine mycoplasma by n-PCR can be analyzed the nucleotide sequences between rRNA operons and homology study.
Purpose: The purpose of this study was to evaluate the clinical efficacy of reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) in detecting rotaviral gastroenteritis in children comparing with that of commercial immunoassays. Methods: Stools from 79 children admitted Korea University Hospital due to diarrhea were collected from December 1999 to February 2000. Immunoassays were done using commercial rotavirus Latex kit and Rotatec (ELISA) kit. RT-PCR was performed to amplify group A rotavirus, most commonly pathogenic to human, using VP4- and VP7-specific primers. The detection rates of immunoassays and RT-PCR were compared. Results: ELISA assay was superior to LA assay and moderately concordant with RT-PCR in detecting rotaviral gastroenteritis. Conclusion: Although RT-PCR is known very sensitive, it does not have significant advantage over immunoassay in detecting rotaviral gastroenteritis.
Proceedings of the Microbiological Society of Korea Conference
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2008.05a
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pp.171-171
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2008
We monitored the occurrence of human enteric viruses in urban rivers by cell culture-PCR and RT-nested PCR. Water samples were collected monthly or semimonthly between May 2002 and March 2003 in four urban tributaries. Enteric viruses were detected by RT-nested PCR and cell culture-PCR based on a combination of Buffalo Green monkey kidney (BGMK) and A549 cell lines, followed by phylogenetic analysis of amplicons. By RT-nested PCR analysis, 45 (77.6%), 32 (55.2%), 32 (55.2%), 26 (44.8%), 12 (20.7%), 2 (3.4%), 4 (6.9%), and 4 (6.9%) of 58 samples showed positive results with adenoviruses, enteroviruses, noroviruses (NV) genogroup I (GI) and II (GII), reoviruses, hepatitis A viruses, rotaviruses and sapoviruses, respectively. Adenoviruses were most often detected and only eight (13.8%) samples were negative for adenoviruses and positive for other enteric viruses in the studied sites. Thirty-one (77.5%) of the 40 samples were positive for infectious adenoviruses and/or enteroviruses based on cell culture-PCR, and the frequency of positive samples grown on A549 and BGMK (65.0%) was higher than that grown on BGMK alone (47.5%). The occurrence of each enteric virus, except reoviruses and hepatitis A viruses was not statistically correlated with the water temperature and levels of fecal coliforms according to Binary logistic regression model. By sequence analysis, most strains of adenoviruses and enteroviruses detected in this study are similar to the causative agent of viral diseases in Korea and most NV GI- and GII-grouped strains were closely related to the reference strains from China and Japan, and GII/4-related strains had similar sequences to strains recognized as a worldwide epidemic outbreak. Our results suggested that monitoring human enteric viruses is necessary to improve microbial quality and cell culture-PCR using the combination of A549 and BGMK cells and the adenovirus detection by PCR could be useful for monitoring viral contamination in the aquatic environment.
The effects of several parameters on PCR amplification in using RAPD were studied. The results of this study suggest that approximately 15 ng of genomic DNA in $20\;{\mu}l$ of reaction mixture results in discrete and reproducible PCR products. In addition, the results indicate that concentration or amounts of reaction components studied are highly inter-dependent in their effects, and RNA can interfere severely with PCR amplification. Suitable concentrations or amounts of reaction components were found to be 30 ng of 10-mer primer, $200\;{\mu}M$ of dNTP, 0.001% gelatin 1.5 mM $MgCl_2$, 10 mM Tris-Cl (pH 8.8), 50 mM KCl, 0.1% Triton X-100, 2 units of Taq DNA polymerase, and 15 ng of RNase-treated genomic DNA in $25\;{\mu}l$ of reaction mixture.
Esherichia coli O157 : H7의 slt I, slt II, uid A 및 eaeA 4종 유전자를 동시에 검출하기 위한 multiplex PCR 기법을 확립하고 쇠고기중 직접 E coli O157 : H7 검출시험을 실시하였다. 4 set의 primers를 이용한 multiplex PCR 기법으로 31종의 장내세균에 대한 특이성을 조사한 결과 E coli O157 : H7 에서 1,087bp (eae A), 584bp (slt II), 348bp (slt I) 또는 252bp (uid A)크기의 DNA를 동시에 특이적으로 검출할 수 있었다. E coli O157 : H7 15주는 모두 uid A 및 eae A 유전자가 동시에 검출되었고, 다른 장내세균에서는 검출되지 않았다. slt I 또는 slt II 유전자를 가지고 있는 E coli 표준균주 24종을 이용하여 multiplex PCR 기법과 Vero cell cytotoxicity assay을 비교검사한 결과 베로톡신 산생능과 PCR법의 결과는 일치하였다. mutiplex PCR 기법의 쇠고기중 검출한계는 modified EC(mEC)에서 증균없이는 E coli O157 : H7균 $10^4cells/g$ 이상에서 검출이 가능하였으나 mEC에 1차 증균후 modified TSB 증균하였을 경우에는 10cells/g이하까지도 검출이 가능하였다. 개발된 multiplex PCR 기법을 쇠고기 40종에 직접 적용한 결과 E coli O157 : H7은 검출되지 않았으나 slt I 및 slt II유전자를 가지고 있는 E coli 4종이 검출되었으며, 이들의 혈청형은 O6, O112, O115 및 O139 였다. 이 연구에서 개발된 multiplex PCR은 쇠고기중 E coli O157 : H7을 신속하고 특이적으로 검출하는데 사용할 수 있을 것으로 사료된다.
Qualitative and quantitative PCR methods were performed to examine detection and quantitation of epsps inserted into genetically modified soybean (GMS) in processed foods, soy milk, tofu, and biji (soybean curd residue). Using PCR amplification to produce two (121 and 330 bp) epsps in GMS, detection limits of GMS in soy milk, tofu, and biji containing 0.01% GMS were measured. For quantitative detection, test samples containing 1, 3, and 5% GMS were measured by real-time PCR method. Results show real-time PCR method is applicable to detect GMS quantitatively in processed foods.
Single-strand conformation polymorphism (SSCP) analysis of MD and JWB phytopalsma isolates which amplified PCR products using the R16F2n/R2 phytoplamsa universal primer pair were compared for variations of their nucleotide sequence. The MD and JWB phytoplasmas were clearly distinct each of the band patterns from about 1.2 kb PCR products. To clearly distinct of close SSCP band patterns, the MD and JWB phytoplasma PCR products were mixed and performed to detect their polymorphism. The SSCP band patterns show all of bands of MD and JWB on single lane and easily distinct their each band patterns. The PCR-SSCP analysis was possible to detect of 1.2 kb nucleotide sequence and near close band patterns were easily distinct by mixing two samples.
A reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) protocol was developed using two specific 22-mer primers located in coat protein gene of SPFMV. A 411 bp PCR-product was detected in virus infected plants as well as tissue culture raised sweet potato but not in healthy plants. For optimization of RT-PCR protocol, the optimum crude nucleic acid concentration, annealing temperature, primer concentration and numbers of PCR-cycle for maximum sensitivity and specificity were determined. The optimum condition for RT-PCR was as follows: RT-PCR reaction mixture was one-step mixture, containing 50 pmol of primer, 30 units of reverse transcriptase, 5 units of RNasin, and the crude nucleic acid extracts (200 ng). In RT-PCR, cDNA was synthesized at $42^{\circ}C$ for 45 min before a quick incubation on ice after pre-denaturation at $95^{\circ}C$ for 5 min. The PCR reaction was carried out for 40 cycles at $96^{\circ}C$ for 30 see, $63^{\circ}C$ for 30 sec, $72^{\circ}C$ for 1 min, and finally at $72^{\circ}C$ for 10 min. The viral origin of the amplified product was confirmed by sequencing, with the sequence obtained having $95-98\%$ homology with published sequence data for SPFMV. The benefits of this RT-PCR based detection of SPFMV would be simple, rapid and specific.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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