Multidrug resistance is a major obstacle in cancer chemotherapy. Cancer cells efflux chemotherapeutic drug out of cell by means of transporter and reduce the active concentration of it inside cell. Such transporters are member of the ATP binding cassettes (ABC) protein. It includes P-gp, multiple resistant protein (MRP), and breast cancer resistant protein (BCRP). These proteins are widely distributed in the human cells such as kidney, lung, endothelial cells of blood brain barrier etc. However, there are number of drugs developed for it, but most of them are getting transported by it. So, still there is necessity of a good modulator, which could effectively combat the transport of chemotherapeutic agents. Natural products origin modulators were found to be effective against transporter such as flavonoids, which belongs to third generation modulators. They have advantage over synthetic inhibitor in the sense that they have simple structure and abundant in nature. This review focuses on the P-gp structure its architecture, efflux mechanism, herbal inhibitors and their mechanism of action.
Two ${\beta}$-1,4-glucanases (DI and DIII fractions) were purified to homogeneity from the culture filtrate of a cellulolytic bacteria, Cellulomonas sp. CS 1-1, which was classified as a novel species belonging to Cellulomonas uda based on chemotaxanomic and phylogenetic analyses. The molecular mass was estimated as 50,000 Da and 52,000 Da for DI and DIII, respectively. Moreover, DIII was identified as a glycoprotein with a pI of 3.8, and DI was identified as a non-glycoprotein with a pI of 5.3. When comparing the ratio of the CMC-saccharifying activity and CMC-liquefying activity, DI exhibited a steep slope, characteristic of an endoglucanase, whereas DIII exhibited a low slope, characteristic of an exoglucanase. The substrate specificity of the purified enzymes revealed that DI efficiently hydrolyzed CMC as well as xylan, whereas DIII exhibited a high activity on microcrystalline celluloses, such as Sigmacells. A comparison of the hydrolysis patterns for pNP-glucosides (DP 2-5) using an HPLC analysis demonstrated that the halosidic bond 3 from the nonreducing end was the preferential cleavage site for DI, whereas bond 2, from which the cellobiose unit is split off, was the preferential cleavage site for DIII. The partial N-terminal amino acid sequences for the purified enzymes were $^1Ala-Gly-Ser-Thr-Leu-Gln-Ala-Ala-Ala-Ser-Glu-Ser-Gly-Arg-Tyr^{15}$-for DI and $^1Ala-Asp-Ser-Asp-Phe-Asn-Leu-Tyr-Val-Ala-Glu-Asn-Ala-Met-Lys^{15}$-for DIII. The apparent sequences exhibited high sequence similarities with other bacterial ${\beta}$-1,4-glucanases as well as ${\beta}$-1,4-xylanases.
The purpose of this study was to investigate the effect of coadministration and 3 days-pretreatmemt of niledipine (2, 10 mg/kg) on the pharmacokinetic parameters and bioavailability of paclitaxel (50 mg/kg) after oral administration in rats. Coadministration of nifedipine with paclitaxel did alter the $C_{max}$ (115${\pm}$29 ng/ml without nifedipine; 135${\pm}$35 ng/ml with nifedipine (10 mg/kg): p<0.05) and AUC (188${\pm}$459 ng/mlㆍhr with-out nifedipine; 2546${\pm}$642 ng/mlㆍhr with nifedipine; p<0.05). Three days treatment of nifedipine on the prior to paclitaxel administration increased the $t_{1/2}$ 〔9.90${\pm}$2.47 hr without nifedipine; 12.37${\pm}$3.12 hr with nifedipine (2 mg/kg): 12.83${\pm}$3.32 hr with nifedipine (10 mg/ml); p<0.05] and AUC [1833${\pm}$459 ng/mlㆍhr without nifedipine; 2663${\pm}$648 ng/mlㆍhr with nifedipine (2 mg/kg): 3006${\pm}$734 ng/mlㆍhr with nifedipine (10 mg/ml): p <0.05]. Drug interaction between nifedipine and paclitaxel decreased the elimination rate constant and increased the oral bioavailability of paclitaxel. On the basis of the results of this study, it might be considered that nifedip ine may inhibit cytochrome P450, which are engaged in paclitaxel metabolism, result in increased $t_{1/2}$ and AUC of paclitaxel. However, further study should be conducted to clarify the roles of cytochrome P450 and P-glycoprotein on paclitaxel bio-availability wit/or without nifedipine.
The Herpes simplex virus type 1 (HSV-1) strain F glycoprotein H (gH) gene in the pHLB-4 plasmid was recombinated into a baculovirus expression vector (lacZ-HcNPV) to construct a recombinant virus GH-HcNPV expressing gH. The sequences of gH and its expression were analyzed. The gH gene was located in the 6.41 kb BglII fragment. The open reading frame (ORF) of the gH gene was 2,517 bp and codes 838 amino acid residues. Insect cells infected with this recombinant virus synthesized a high level of the matured and gX-gH fusion protein with approximately 112 kDa. The fusion gH protein was localized on the membrane of the insect cells as seen by using immunofluorescence assay and accumulated in the cultured media by the SDS-PAGE and immunoprecipitation assays. The amino acid sequence presents additional characteristics compatible with the structure of a viral glycoprotein: signal peptide, putative glycosylation sites and a long C-terminal transmembrane sequence. Antibodies raised in mice to this recombinant protein recognized viral gH and neutralized the infectivity of HSV-1 in vitro. These results demonstrate that it is possible to produce a mature protein by gene transfer in eukaryotic cells, and indicate the utility of the HcNPV-insect cell system for producing and characterizing eukaryotic proteins. Furthermore, the neutralizing antibodies would appear to protect mice against HSV; accordingly, this particular recombinant protein may be useful in the development of a subunit vaccine.
Betulin is a triterpenoid natural product contained in several medicinal plants including Betulae Cortex. These medicinal plants have been used for controlling diverse inflammatory diseases in folk medicine and betulin showed anti-inflammatory, antioxidative, and anticancer activities. In this study, we tried to examine whether betulin exerts a regulative effect on the gene expression of MUC5AC mucin under the status simulating a pulmonary inflammation, in human airway epithelial cells. Confluent NCI-H292 cells were pretreated with betulin for 30 min and then stimulated with phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) for 24 h or the indicated periods. The MUC5AC mucin mRNA expression and mucin glycoprotein production were measured by reverse transcription - polymerase chain reaction (RT-PCR) and enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), respectively. To elucidate the action mechanism of betulin, effect of betulin on PMA-induced nuclear factor kappa B (NF-kB) signaling pathway was also investigated by western blot analysis. The results were as follows: 1) Betulin significantly suppressed the production of MUC5AC mucin glycoprotein and down-regulated MUC5AC mRNA expression induced by PMA in NCI-H292 cells. 2) Betulin inhibited NF-κB activation stimulated by PMA. Suppression of inhibitory kappa B kinase (IKK) by betulin led to the inhibition of the phosphorylation and degradation of inhibitory kappa B alpha (IκBα), and the nuclear translocation of NF-κB p65. This, in turn, led to the down-regulation of MUC5AC glycoprotein production in NCI-H292 cells. These results suggest betulin inhibits the gene expression of mucin through regulation of NF-kB signaling pathway, in human airway epithelial cells.
Lactoferrin was first identified 60 years ago as a "red protein" in bovine milk. Lactoferrin, one of the transferrin family proteins, is an iron-binding glycoprotein found in milk and various mucosal secretions; it is also released from activated neutrophils. Human lactoferrin has a molecular weight of 82.4 kDa and is composed of 702 or 692 amino acid residues. Bovine lactoferrin has a molecular weight of 83.1 kDa and is composed of 689 amino acid residues. Both lactoferrin and transferrin have the ability to bind two $Fe^{3+}$ ions, together with two ${CO_3}^{2-}$ ions with extremely high affinity; these proteins also have the ability to release this iron at low pH levels. The polypeptide chain in lactoferrin is folded into two globular lobes, representing the N-terminal and C-terminal halves. Both lobes have similar folding and 40% sequence identity. This protein is capable of multiple functions as described in various review papers, including antimicrobial, antiviral, antiinflammatory, anticancer, antioxidant, and cell growth-promoting activities. Lactoferrin also exhibits immunomodulating effects and plays an active role in the regulation of myelopoiesis and the inhibition of bacterial translocation.
에토포시드와 아피제닌의 약동학적 상호작용 연구를 위하여 아피제닌 (0.4, 2.0 또는 8 mg/kg)과 에토포시드의 경구(6 mg/kg) 및 정맥 (2 mg/kg) 투여 하여 본 연구를 실시하였다. 아피제닌이 cytochrome P450 (CYP) 3A4 활성과 P-glycoprotein (P-gp)의 활성에 미치는 영향도 평가하였다. 아피제닌의 CYP3A4의 50% 효소활성억제는 $1.8{\mu}M$ 이었다. 아피제닌은 MCF-7/ADR 세포의 로다마인-123 세포 축적을 증가 시키므로 P-gp를 억제시켰다. 아피제닌은 에토포시드의 혈장곡선하면적과 최고혈장농도 (AUC and $C_{max}$)를 유의성 있게 증가시켰으나, 에토포시드의 최고혈장농도 도달시간 ($T_{max}$)과 생물학적 반감기 ($t_{1/2}$)에는 영향을 미치지 않았다. 따라서, 아피제닌 존재하에 에토포시드의 절대적생체이용률 (AB)은 대조군과 비교하여 유의성있게 증가되었다. 경구투여시와는 대조적으로, 아피제닌은 정맥 내로 투여된 에토포시드에서는 약동학적 파라미터에 어떤 영향도 미치지 않았다. 따라서 아피제닌이 에토포시드의 생체이용률을 증가시킨 것은 아피제닌이 소장과 간장에서 CYP3A4을 억제 및 소장에서 P-gp를 억제 시켰기 때문으로 사료된다.
A minor anionic isoperoxidase named $A_{3n}$, was isolated from Korean radish (Raphanus sativus L.) root. Purification of the enzyme was accomplished by CMcellulose chromatography, DEAE-Sephacel chromatography, and Sephadex G-75 gel filtration. The enzyme was a glycoprotein with molecular weight of approximately 31,000 as determined by SDS-PAGE and 33,000 by Sepadex G-150 gel filtration, which is by far the smallest among the reported isoperoxidases. The pI value was 3.5. The optimum pH of the enzyme was 6.5 for guaiacol and $H_2O_2$, and the $K_m$ values for guaiacol and $H_2O_2$ were 13.3 mM and 1.5 mM, respectively. Kinetic studies with various substrates revealed that only A3n, unlike other isoperoxidases from radish, did not use scopoletin as a substrate and had very low $K_m$ value of 0.25 mM for ferolic acid among naturally occurring phenolic substrates.
A Fructan-degrading enzyme was partially purified from onion (Allium cepa)bulbs by a combination of ammonium sufate precipitation, concanavalin-A-Affinity chromatography, and ion-exchange and gel-filtration chromatography. The enzyme hydrolyzed sucrose more effectively than inulin and was identified as a $\beta$- fructofuranosidase (invertase). The optimum pH and temperature were pH 5.5 and 35$^{\circ}C$, respectively. The enzymehydrolyzed sucrose with a Km of 1.2mM . The soluble $\beta$-fructofuranosidase is likely glycoprotein based on its ability to bind the lectin concanavalin-A. The enzyme was heatlabie, with mose activity being lost at 5$0^{\circ}C$ in 1 hr of incubation. The onion $\beta$-fructofuranosidase was partially inhibited by ZnCl2 HgCl2 and CuSo4.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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