Bacterial outer membrane vesicles (OMVs) typically contain multiple immunogenic molecules that include antigenic proteins, making them good candidates for vaccine development. In animal models, vaccination with OMVs has been shown to confer protective immune responses against many bacterial diseases. It is possible to genetically introduce heterologous protein antigens to the bacterial host that can then be produced and relocated to reside within the OMVs by means of the host secretion mechanisms. Accordingly, in this study we sought to develop a novel platform for recombinant OMV (rOMV) production in the widely used bacterial expression host species, Escherichia coli. Three different lipoprotein signal peptides including their Lol signals and tether sequences-from Neisseria meningitidis fHbp, Leptospira interrogans LipL32, and Campylobactor jejuni JlpA-were combined upstream to the GFPmut2 model protein, resulting in three recombinant plasmids. Pilot expression studies showed that the fusion between fHbp and GFPmut2 was the only promising construct; therefore, we used this construct for large-scale expression. After inducing recombinant protein expression, the nanovesicles were harvested from cell-free culture media by ultrafiltration and ultracentrifugation. Transmission electron microscopy demonstrated that the obtained rOMVs were closed, circular single-membrane particles, 20-200 nm in size. Western blotting confirmed the presence of GFPmut2 in the isolated vesicles. Collectively, although this is a non-optimized, proof-of-concept study, it demonstrates the feasibility of this platform in directing target proteins into the vesicles for OMV-based vaccine development.
Proceedings of the Korea Society of Environmental Toocicology Conference
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2001.05a
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pp.140-140
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2001
Porins are major outer membrane proteins which produce non-specific aqueous channels across the membrane that permit the diffusion into the bacterial cells of hydrophilic compounds including sugars, amino acids, and antibiotics. In some gram-negative organisms, antibiotic resistance can be induced by mutational loss of channel that causes a decrease in outer membrane permeability. (omitted)
The objective of this research was to provide the characterization and method for producing anti-E. coli O157:H7 antibodies in egg-laying hens and to determine if the antibody can restrain the proliferation of E. coli O157:H7 in-vitro. Selected antigenic fractions (whole cell, outer membrane protein and lipopolysaccharide (LPS)) from E. coli O157:H7 were injected to hens in order to produce anti-E. coli O157:H7 antibodies. The immune response and the egg yolk antibodies of laying hens against the whole cell, outer membrane protein and LPS antigens were monitored by ELISA. The level of antibodies against whole cell antigen monitored through ELISA sharply increased after the initial immunization, and it was found to be maximum on day 49 however, the level was maintained up to day 70. Antibodies (5 mg/ml) directed against the whole cell inhibited E. coli proliferation 10-13 times more than outer membrane protein or LPS. The antibody response against the whole cell antigens appeared to have higher activity in restraining the proliferation of E. coli O157:H7 than antibody against outer membrane protein or LPS. Results reflected that increasing the IgY's in the egg yolk could prevent greater economic losses due to human and animal health from pathogenic bacteria i.e. E. coli O157:H7.
The specificity of sandwich enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) to detect Salmonella in milk was determined in this study. The antibodies used in sandwich ELISA were egg yolk immunoglobulin G (IgY) obtained after immunization of hen with outer membrane protein (OMP) fraction from Salmonella typhimurium and rabbit IgG obtained after immunization of rabbit with the purified OMP with the molecular weight of 40,000. The immunoblot assay showed that the IgY reacted strongly with OMP with the molecular weight of 6,000 and the rabbit IgG reacted strongly with OMP with the molecular weights of 40,000, 35,000, and 6,000 from the bacteria including Salmonella which belongs to Enterobacteriaceae. The IgY and rabbit IgG also reacted with other proteins from Salmonella typhimurium in immunoblot assay. Competitive ELISA showed that IgY showed specifity to react with two strains of Salmonella typhimurium and Salmonella cholerasuis but not with Escherichia coli and Yersinia enterocolitica. Two strains of Salmonella typhimurium added to UHT milk showed the highest absorbance of all the bacteria used in the sandwich ELISA. Some strains of Salmonella cholerasuis showed higher absorbances than non-Salmonella bacteria.
A native strain of Pasteurella multocida was isolated from pigs suffering from severe atrophic rhinitis at domestic farms in Gyeonggi Province, Korea, and was identified as capsular serogroup 'D' and somatic serotype '4' by disc diffusion decapsulation and gel diffusion precipitation tests, respectively. The P. multocida (D:4) induced atrophic rhinitis in healthy pigs by the secondary infection. The gene for outer membrane protein H (ompH) of P. multocida (D:4) was cloned in Escherichia coli DH5$\alpha$ by PCR. The open reading frame of the ompH was composed of 1,023 bp, possibly encoding a protein with 341 amino acid residues containing a signal peptide of 20 amino acids at N-terminus, and the gene product with molecular mass of ca. 38 kDa was identified by SDS-PAGE. Hydropathy profiles indicated that there are two variable domains in the OmpH. To express the ompH in E. coli, the gene was manipulated in various ways. Expression of the truncated as well as full-length forms of the recombinant OmpH was fatal to the host E. coli BL21 (DE3). However, the truncated OmpH fused with GST was consecutively expressed in E. coli DH5$\alpha$. A large quantity of the fused polypeptide was purified through GST-affinity chromatography.
Elecrophoreticl analysis of a 36 kDa protein was runned by SDS-PAGE, isoelectric focusing (IEF) and two dimensional electrophoresis pattern. Major 36 kDa and 25, 46, 48, 66 kDa protein were detected by Coomassie blue stain on SDS-PAGE. Major 36kDa protein was eluted for production of antiserum for serological analysis, IEF and two dimensional electrophoresis. Isoelectric point of 36kDa was aout pH 8.5. Two dimensional electrophoresis of eluted 36kDa showed one point on the gel. Anti-36 kDa serum made by newzilland rabbit for serological test. In ELISA, final titer of antibody was 100×{TEX}$2^5}${/TEX} : 1. Neutralize ability of serum was examined by slide agglutination test and colonization test in rat. Anti-36 kDa serum agglutinated whole cell of V. vulnificus were inhibited colonization on intestine in rat. Accordingly In this paper contain some electrophoretical analysis and serological test of a 36 kDa OMP of V. vulnificus.
Fowl typhoid caused by Salmonella gallinarum has increased dramatically since 1992 and has caused a great economic losses in chicken industry by characterizing with high mortality. In these studies, we investigated the immunogenicity and protectivity in chickens which were immunized with outer membrane protein(OMP) extracted from isolates of S gallinarum against challenge with live microorganism. Outer membrane proteins were composed of various sizes of molecular weight including 14K, 22K, 31K, 36K, 40K and 55K and the most of them responded strongly against rabbit antisera in immunoblot analysis. The chickens vaccinated with OMP or vaccinated with whole-cell combined with OMP($200{\mu}g$/chickens) complex showed higher delayed type hypersensitivity(DTH) response than that of whole-cell vaccinated group. The protective rates of OMP or whole-cell combined with OMP complex group against challenge of S gallinarum were higher (above 75%) than those (45~50%) of whole-cell vaccinated group. All vaccines were safe and the body weight-gains of all vaccinated groups were not significantly different (p<0.05) from those of nonvaccinated control group. In vitro tests, OMP stimulated both the proliferation of lymphocytes and T-lymphocytes, and OMP-induced lymphocyte proliferation was higher in the cells of the immunized chickens with OMP than in those from the control chickens.
Khodi, Samaneh;Latifi, Ali Mohammad;Saadati, Mojtaba;Mirzaei, Morteza;Aghamollaei, Hossein
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.22
no.2
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pp.234-238
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2012
Recombinant Escherichia coli displaying organophosphorus hydrolase (OPH) was used to overcome the diffusion barrier limitation of organophosphorus pesticides. A new anchor system derived from the N-terminal domain of ice-nucleation protein from Pseudomonas syringae InaV (InaV-N) was used to display OPH onto the surface. The designed sequence was cloned in the vector pET-28a(+) and then was expressed in E. coli. Tracing of the expression location of the recombinant protein using SDS-PAGE showed the presentation of OPH by InaV-N on the outer membrane, and the ability of recombinant E. coli to utilize diazinon as the sole source of energy, without growth inhibition, indicated its significant activity. The location of OPH was detected by comparing the activity of the outer membrane fraction with the inner membrane and cytoplasm fractions. Studies revealed that recombinant E. coli can degrade 50% of 2 mM chlorpyrifos in 2 min. It can be concluded that InaV-N can be used efficiently to display foreign functional protein, and these results highlight the high potential of an engineered bacterium to be used in bioremediation of pesticide-contaminated sources in the environment.
Helicobacter pylori is a spiral-shaped, microaerophilic human gastric pathogen causing chronic-active gastritis in association with duodenal ulcer and gastric cancer. To investigate the possibility of H. pylori outer membrane proteins (OMPS) as the oral vaccine antigens, sarcosine-insoluble outer membrane fraction has been prepared from H. pylori NCTC 11637. The major OMPs having apparent molecular masses of 62 kDa, 54 kDa and 33 kDa were detected by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), which were identified as urease B subunit (UreB), heat shock protein (Hsp54 kDa) and urease A subunit (UreA), respectively. Minor protein bands of 57 kDa, 52 kDa, 40 kDa, 36 kDa and 31 kDa were also observed. The antigenicity of H. pylori OMPs and antigenic cross-reactivity among the strains were determined by immunoblot analysis using anti-H. pylori OMPs antisera or intestinal lavage solutions. The results showed that UreB, Hsp54 kDa, UreA and 40 kDa proteins vigorously stimulated mucosal immune response rather than systemic immunity. From this results, these proteins seemed to be useful as the antigen candidates for the oral vaccine. The immunoblotting results with surface proteins from eight isolated H. pylori strains were similar to that of H. pylori NCTC 11637. The IgA which had been arised from oral administration of H. pylori OMPs, was able to bind H. pylori whole-cells.
Antigen 43 (Ag43) proteins, found on the outer membrane of Escherichia coli, are β-sheets that fold into a unique cylindrical structure known as a β-barrel. There are several known structural similarities between bacterial Ag43 autotransporters and physical components; however, the factors that stabilize the barrel and the mechanism for Ag43 passenger domain-mediated translocation across the pore of the β-barrel remain unclear. In this study, we analyzed Ag43β-enhanced green fluorescent protein chimeric variants to provide new insights into the autotransporter Ag43β-barrel assembly, focusing on the impact of the α-helical linker domain. Among the chimeric variants, Ag43β700 showed the highest surface display, which was confirmed through extracellular protease digestion, flow cytometry, and an evaluation of outer membrane vesicles (OMVs). The Ag43β700 module offered reliable information on stable barrel folding and chimera expression at the exterior of the OMVs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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