The aim of this study was to isolate and identify men fungus which produces conjugated linoleic acid. IS-13 fungus hydrogenated conjugated linoleic acid and trans-11 vaccenic acid within 12 hr after addition of linoleic acid. The homology of IS-13 rumen fungus was compared with internal transcribed spacer 1 region (ITS1)sequences of twenty three men fungi. The length of ITS1 region of IS-13 isolate was 218 bp. IS-13 isolate has the most similar sequence (98% matched) with Orpinomyces species according to maximum-likehood and distance matrix results. The result supported that IS-13 isolate belonged to Orpinomyces genus.
The objective of this study was to identify biohydrogenation pathways for linoleic, linolenic, oleic and stearic acids by Orpinomyces species of rumen fungus during in vitro culture. Biohydrogenation of linoleic acid produced conjugated linoleic acid (cis-9, trans-11 C18:2), which was then converted to vaccenic acid (trans-11 C18:1) as the end product of biohydrogenation. Biohydrogenation of linolenic acid produced cis-9, trans-11, cis-15 C18:3 and trans-11, cis-15 C18:2 as intermediates and vaccenic acid as the end product of biohydrogenation. Oleic acid and stearic acid were not converted to any other fatty acid. It is concluded that pathways for biohydrogenation of linoleic and linolenic acids by Orpinomyces are the same as those for group A rumen bacteria.
The effects of grass lipids and long chain fatty acids (LCFA; palmitic, stearic and oleic acids), at low concentrations (0.001~0.02%), on the growth and enzyme activity of two strains of anaerobic fungi, monocentric strain Piromyces rhizinflata B157 and polycentric strain Orpinomyces joyonii SG4, were investigated. The addition of grass lipids to the medium significantly (p<0.05) decreased filter paper (FP) cellulose digestion, cellulase activity and fungal growth compared to control treatment. However, LCFA did not have any significant inhibitory effects on fungal growth and enzyme activity, which, however, were significantly (p<0.05) stimulated by the addition of oleic acid as have been observed in rumen bacteria and protozoa. This is the first report to our knowledge on the effects of LCFA on the rumen anaerobic fungi. Continued work is needed to identify the mode of action of LCFA in different fungal strains and to verify whether these microorganisms have ability to hydrogenate unsaturated fatty acids to saturated fatty acids.
The study was to see the effect of administration of ruminal fungi on feed intake, growth rate, rumen fermentation and nutrient digestion of calves (Tharparkar$\times$Holstein-Friesian, average age: 10 months, average body weight: 130 kg). The 6 calves in first group were fed a mixture consisted of 50% wheat straw and 50% concentrate (Maize 62%, Groundnut cake 35%, Mineral mix. 2% and Common salt 1%) along with 1 kg green oats $animal^{-1}$$day^{-1}$ while second group calves were fed the above-mentioned diet in addition to a dose of 160 ml ($10^{6}$ CFU/ml) fungal culture $calf^{-1}$$week^{-1}$. The average dry matter intake per day was slightly lowered in fungal fed calves yet feed conversion ratio was higher. The average daily weight gain was significantly higher (15.37%) in fungal administered group as compared to control. The nutrient digestibility was increased for crude fibre, NDF and ADF with fungal administration. Digestible energy value of straw-based diet in terms of percent TDN also increased. The pH and $NH_{3}$-N were lower whereas TVFA, total-N, TCA-N and number of zoospores were higher in rumen liquor in fungal administered group.
Ha, J.K.;Lee, S.S.;Kim, S.W.;Han, In K.;Ushida, K.;Cheng, K.J.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.14
no.6
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pp.797-802
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2001
Two strains of rumen fungi (Piromyces rhizinflata B157, Orpinomyces joyonii SG4) and three strains of rumen cellulolytic bacteria (Ruminococcus albus B199, Ruminococcus flavefaciens FD1 and Fibrobacter succinogenes S85) were used as mono-cultures or combinationally arranged as co- and sequential-cultures to assess the relative contributions and interactions between rumen fungi and cellulolytic bacteria on rice straw degradation. The rates of dry matter degradation of co-cultures were similar to those of corresponding bacterial mono-cultures. Compared to corresponding sequential-cultures, the degradation of rice straw was reduced in all co-cultures (P<0.01). Regardless of the microbial species, the cellulolytic bacteria seemed to inhibit the degradation of rice straw by rumen fungi. The high efficiency of fungal cellulolysis seems to affect bacterial degradation rates.
The study was conducted to isolate and identify highly fibrolytic anaerobic fungi from the guts of a Hanwoo steer and a Korean native goat, and then investigate the characterization of cellulolytic activity of an anaerobic fungus. Twenty-one anaerobic fungal colonies were isolated in the study, in which 16 colonies were isolated from the rumen contents of the Hanwoo steer and 5 colonies from the duodenal fluids of the Korean native goat. Four anaerobic fungi were selected based on higher cellulolytic enzyme activities to identify under a optical microscope. NLRI-M003 and -T004 belong to Neocallimastix genus and NLRI-M014 belongs to Piromyces genus based on the morphology of their thallus, sporangia, rhizoid and the number of flagella. NLRI-M001 appeared to be an unknown strain of anaerobic fungi due to its different morphology from existing types of anaerobic fungi, though the morpholgoy is similar to Orpinomyces sp. Supplementation of 2% anaerobic fungal culture(NLRI-M003) in rumen-mixed microorganisms increased in vitro DM degradability of rice straw and filter paper up to 4 and 11%, respectively, compared with non-supplementation(control). CMCase and xylanase activities in in vitro culture were also higher in 2% fungal supplementation than controls in both rice straw and filter paper substrates.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.18
no.12
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pp.466-472
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2017
This study was designed to examine the diversity census of fungi in rumen microbiome via meta-analysis of fungal 28S rDNA sequences. Both terms, "rumen" and "ruminal," were searched to retrieve the sequences of rumen fungi. As of September 2016, these sequences (n=165) of ruminal origin were retrieved from the Ribosomal Database Project (RDP; http://rdp.cme.msu.edu), an archive of all 28S rDNA sequences and were assigned to the phyla Ascomycota, Neocallimastigomycota, and Basidiomycota, which accounted for 109, 48, and 8 of the 165 sequences, respectively. Ascomycota sequences were assigned to the genera Pseudonectria, Magnaporthe, Alternaria, Cochliobolus, Cladosporium, and Davidiella, including fungal plant pathogens or mycotoxigenic species. Moreover, Basidiomycota sequences were assigned to the genera Thanatephorus and Cryptococcus, including fungal plant pathogens. Furthermore, Neocallimastigomycota sequences were assigned to the genera Cyllamyces, Neocallimastix, Anaeromyces, Caecomyces, Orpinomyces, and Piromyces, which may degrade the major structural carbohydrates of the ingested plant material. This study provided a collective view of the rumen fungal diversity using a meta-analysis of 28S rDNA sequences. The present results will provide a direction for further studies on ruminal fungi and be applicable to the development of new analytic tools.
Anaerobic fungi habitat in the gastrointestinal tract of foregut fermenters or hindgut fermenters and degrade fibrous plant biomass through the hydrolysis reactions with a wide variety of cellulolytic enzymes and physical penetration through fiber matrix with their rhizoids. To date, seventeen genera have been described in family Neocallimasticaceae, class Neocallimastigomycetes, phylum Neocallimastigomycota and one genus has been described in phylum Neocallimastigomycota. In National Center for Biotechnology Information (NCBI) database (DB), 23,830 nucleotide sequences and 59,512 protein sequences have been deposited and most of them were originated from Piromyces, Neocallimastix and Anaeromyces. Most of protein sequences (44,025) were acquired with PacBio next generation sequencing system. The whole genome sequences of Anaeromyces robustus, Neocallimastix californiae, Pecoramyces ruminantium, Piromyces finnis and Piromyces sp. E2 are available in Joint Genome Institute (JGI) database. According to the results of protein prediction, average Isoelectric points (pIs) were ranged from 5.88 (Anaeromyces) to 6.57 (Piromyces) and average molecular weights were ranged from 38.7 kDa (Orpinomyces) to 56.6 kDa (Piromyces). In Carbohydrate-Active enZYmes (CAZY) database, glycoside hydrolases (36), carbohydrate binding module (11), carbohydrate esterases (8), glycosyltransferase (5) and polysaccharide lyases (3) from anaerobic fungi were registered. During four decades, 1,031 research articles about anaerobic fungi were published and 444 and 719 articles were available in PubMed (PM) and PubMed Central (PMC) DB.
A series of experiments was carried out to determine the possibility for the non-ionic surfactant (NIS) as a feed additive for ruminant animals. The effect of the NIS on (1) the enzyme distribution in the rumen fluids of Hereford bulls, (2) the growth of pure culture of rumen bacteria and (3) rumen anaerobic fungi, (4) the ruminal fermentation characteristics of Korean native cattle (Hanwoo), and (5) the performances of Holstein dairy cows were investigated. When NIS was added to rumen fluid at the level of 0.05 and 0.1% (v/v), the total and specific activities of cell-free enzymes were significantly (p<0.01) increased, but those of cell-bound enzymes were slightly decreased, but not statistically significant. The growth rates of ruminal noncellulolytic species (Ruminobacter amylophilus, Megasphaera elsdenii, Prevotella ruminicola and Selenomonas ruminantium) were significantly (p<0.01) increased by the addition of NIS at both concentrations tested. However, the growth rate of ruminal cellulolytic bacteria (Fibrobacter succinogenes, Ruminococcus albus, Ruminococcus flavefaciens and Butyrivibrio fibrisolvens) were slightly increased or not affected by the NIS. In general, NIS appears to effect Gram-negative bacteria more than Gram-positive bacteria; and non-cellulolytic bacteria more than cellulolytic bacteria. The growth rates of ruminal monocentric fungi (Neocallimastix patriciarum and Piromyces communis) and polycentric fungi (Orpinomyces joyonii and Anaeromyces mucronatus) were also significantly (p<0.01) increased by the addition of NIS at all concentrations tested. When NIS was administrated to the rumen of Hanwoo, Total VFA and ammonia-N concentrations, the microbial cell growth rate, CMCase and xylanase activities in the rumen increased with statistical difference (p<0.01), but NIS administration did not affect at the time of 0 and 9 h post-feeding. Addition of NIS to TMR resulted in increased TMR intake and increased milk production by Holstein cows and decreased body condition scores. The NEFA and corticoid concentrations in the blood were lowered by the addition of NIS. These results indicated that the addition of NIS may greatly stimulate the release of some kinds of enzymes from microbial cells, and stimulate the growth rates of a range of anaerobic ruminal microorganisms, and also stimulate the rumen fermentation characteristics and animal performances. Our data indicates potential uses of the NIS as a feed additive for ruminant animals.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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