A function of the kidney is elimination of a variety of xenobiotics ingested and wasted endogenous compounds from the body. Organic anion and cation transport systems play important roles to protect the body from harmful substances. The renal proximal tubule is the primary site of carrier-mediated transport from blood into urine. During the last decade, molecular cloning has identified several families of multispecific organic anion and cation transporters, such as organic anion transporter (OAT), organic cation transporter (OCT), and organic anion-transporting polypeptide (oatp). Additional findings also suggested ATP-dependent organic ion transporters such as MDR1/P-glycoprotein and the multidrug resistance-associated protein (MRP) as efflux pump. The substrate specificity of these transporters is multispecific. These transporters also play an important role as drug transporters. Studies on their functional properties and localization provide information in renal handling of drugs. This review summarizes the latest knowledge on molecular properties and pharmacological significance of renal organic ion transporters.
A wide variety of drugs and endogenous bioactive amines are organic cations (OCs). Approximately 40% of all conventional drugs on the market are OCs. Thus, the transport of xenobiotics or endogenous OCs in the body has been a subject of considerable interest, since the discovery and cloning of a family of OC transporters, referred to as organic cation transporter (OCTs), and a new subfamily of OCTs, OCTNs, leading to the functional characterization of these transporters in various systems including oocytes and some cell lines. Organic cation transporters are critical in drug absorption, targeting, and disposition of a drug. In this review, the recent advances in the characterization of organic cation transporters and their distribution in the small intestine are discussed. The results of the in vitro transport studies of various OCs in the small intestine using techniques such as isolated brush-border membrane vesicles, Ussing chamber systems and Caco-2 cells are discussed, and in vivo knock-out animal studies are summarized. Such information is essential for predicting pharmacokinetics and pharmacodynamics and in the design and development of new cationic drugs. An understanding of the mechanisms that control the intestinal transport of OCs will clearly aid achieving desirable clinical outcomes.
Kang Young-Sook;Lee Kyeong-Eun;Lee Na-Young;Terasaki Tetsuya
Archives of Pharmacal Research
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v.28
no.4
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pp.443-450
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2005
In the present study, we have characterized the choline transport system and examined the influence of various amine drugs on the choline transporter using a conditionally immortalized rat brain capillary endothelial cell line (TR-BBB) in vitro. The cell-to-medium (C/M) ratio of $[^3{H}]choline$ in TR-BBB cells increased time-dependently. The initial uptake rate of $[^3{H}]choline$ was concentration-dependent with a Michaelis-Menten value, $K_{m}$, of $26.2\pm2.7{\mu}M$. The $[^3{H}]choline$ uptake into TR-BBB was $Na^{+}-independent$, but was membrane potential-dependent. The $[^3{H}]choline$ uptake was susceptible to inhibition by hemicholinium-3, and tetraethy-lammonium (TEA), which are organic cation transporter substrates. Also, the uptake of $[^3{H}]choline$ was competitively inhibited with $K_{i}$ values of $274 {\mu}M, 251 {\mu}M and 180 {\mu}M$ in the presence of donepezil hydrochloride, tacrine and $\alpha-phenyl-n-tert-butyl nitrone$ (PBN), respectively. These characteristics of choline transport are consistent with those of the organic cation transporter (OCT). OCT2 mRNA was expressed in TR-BBB cells, while the expression of OCT3 or choline transporter (CHT) was not detected. Accordingly, these results suggest that OCT2 is a candidate for choline transport at the BBB and may influence the BBB permeability of amine drugs.
Imperatorin, a major bioactive furanocoumarin with multifunctions, can be used for treating neurodegenerative diseases. In this study, we investigated the characteristics of imperatorin transport in the brain. Experiments of the present study were designed to study imperatorin transport across the blood-brain barrier both in vivo and in vitro. In vivo study was performed in rats using single intravenous injection and in situ carotid artery perfusion technique. Conditionally immortalized rat brain capillary endothelial cells were as an in vitro model of blood-brain barrier to examine the transport mechanism of imperatorin. Brain distribution volume of imperatorin was about 6 fold greater than that of sucrose, suggesting that the transport of imperatorin was through the blood-brain barrier in physiological state. Both in vivo and in vitro imperatorin transport studies demonstrated that imperatorin could be transported in a concentration-dependent manner with high affinity. Imperatorin uptake was dependent on proton gradient in an opposite direction. It was significantly reduced by pretreatment with sodium azide. However, its uptake was not inhibited by replacing extracellular sodium with potassium or N-methylglucamine. The uptake of imperatorin was inhibited by various cationic compounds, but not inhibited by TEA, choline and organic anion substances. Transfection of plasma membrane monoamine transporter, organic cation transporter 2 and organic cation/carnitine transporter 2/1 siRNA failed to alter imperatorin transport in brain capillary endothelial cells. Especially, tramadol, clonidine and pyrilamine inhibited the uptake of [$^3H$]imperatorin competitively. Therefore, imperatorin is actively transported from blood to brain across the blood-brain barrier by passive and carrier-mediated transporter.
The effect of probenecid on the transport of tetraethylammonium (TEA) was studied in renal cortical slices and isolated membrane vesicles to investigate the interaction of organic anion with the organic cation transport system in proximal tubule. Probenecid reversibly inhibited TEA uptake by renal cortical slices in a dose-dependent manner over the concentration range of 1 and 5 mM. The efflux of TEA was not affected by the presence of 3 mM probenecid. Kinetic analysis indicated that probenecid decreased Vmax without significant change in Km. Probenecid inhibited significantly tissue oxygen consumption at concentrations of 3 and 5 mM. However, probenecid did not significantly reduce TEA uptake in brush border and basolateral membrane vesicles prepared from renal cortex even at a concentration as high as 10 mM. These results indicate that probenecid reduces TEA uptake in cortical slices by inhibiting tissue metabolism rather than by an interaction with the organic ration transporter.
Little is known concerning the mechanisms responsible for the transplacental transfer of thiamine. So, the aim of this work was to characterize the placental uptake of thiamine from the maternal circulation, by determining the characteristics of $^3H$-thiamine uptake by a human trophoblast cell line (BeWo). Uptake of $^3H$-thiamine (50-100 nM) by BeWo cells was: 1) temperature-dependent and energy-independent; 2) pH-dependent (uptake increased as the extracellular medium pH decreased); 3) $Na^+$-dependent and $Cl^-$-independent; 4) not inhibited by the thiamine structural analogs amprolium, oxythiamine and thiamine pyrophosphate; 5) inhibited by the unrelated organic cations guanidine, N-methylnicotinamide, tetraethylammonium, clonidine and cimetidine; 6) inhibited by the organic cation serotonin, and by two selective inhibitors of the serotonin plasmalemmal transporter (hSERT), fluoxetine and desipramine. We conclude that $^3H$-thiamine uptake by BeWo cells seems to occur through a process distinct from thiamine transporter-1 (hThTr-1) and thiamine transporter-2 (hThTr-2). Rather, it seems to involve hSERT. Moreover, chronic (48 h) exposure of cells to caffeine ($1\;{\mu}M$) stimulated and chronic exposure to xanthohumol and iso-xanthohumol (1 and $0.1\;{\mu}M$, respectively) inhibited $^3H$-thiamine uptake, these effects being not mediated through modulation of the expression levels of either hThTr-1 or hSERT mRNA.
Paeonol has neuroprotective function, which could be useful for improving central nervous system disorder. The purpose of this study was to characterize the functional mechanism involved in brain transport of paeonol through blood-brain barrier (BBB). Brain transport of paeonol was characterized by internal carotid artery perfusion (ICAP), carotid artery single injection technique (brain uptake index, BUI) and intravenous (IV) injection technique in vivo. The transport mechanism of paeonol was examined using conditionally immortalized rat brain capillary endothelial cell line (TR-BBB) as an in vitro model of BBB. Brain volume of distribution (VD) of [$^3H$]paeonol in rat brain was about 6-fold higher than that of [$^{14}C$]sucrose, the vascular space marker of BBB. The uptake of [$^3H$]paeonol was concentration-dependent. Brain volume of distribution of paeonol and BUI as in vivo and inhibition of analog as in vitro studies presented significant reduction effect in the presence of unlabeled lipophilic compounds such as paeonol, imperatorin, diphenhydramine, pyrilamine, tramadol and ALC during the uptake of [$^3H$]paeonol. In addition, the uptake significantly decreased and increased at the acidic and alkaline pH in both extracellular and intracellular study, respectively. In the presence of metabolic inhibitor, the uptake reduced significantly but not affected by sodium free or membrane potential disruption. Similarly, paeonol uptake was not affected on OCTN2 or rPMAT siRNA transfection BBB cells. Interestingly. Paeonol is actively transported from the blood to brain across the BBB by a carrier mediated transporter system.
In the present study, a human mammary epithelial cell (HMEC) culture model was developed to evaluate the potential involvement of carrier-mediated transport systems in drug transfer into milk. Trypsin-resistant HMECs were seeded on $Matrigel^{circledR}-coated$ filters to develop monolayers of functionally differentiated HMEC. Expression of the specific function of HMEC monolayers was dependent of the number of trypsin treatments. Among the monolayers with different numbers of treatment (treated 1 to 3 times), the monolayer treated 3 times (3-t-HMEC monolayer) showed the highest maximal transepithelial resistance and expression of $\beta-casein$ mRNA as an index of differentiation. Transport of tetraethylammonium (TEA) across the 3-t-HMEC monolayer in the basolateral-to-apical direction was significantly higher than that in the apical-to-basolateral direction (p<0.05), whereas such directionality was not observed for p-aminohippurate, suggesting the existence of organic cation transporters, but not organic anion transporters. In fact, expression of mRNAs of human organic cation transporter (OCT) 1 and 3 were detected in the 3-t-HMEC monolayer. These results indicate that the 3-t-HMEC monolayer is potentially useful for the evaluation of carrier-mediated secretion of drugs including organic cations into human milk.
We have investigated the transport characteristics of synthetic antioxidant and free radical scavenger, $\alpha$-phenyl-n-tert-butyl nitrone (PBN) at the blood-brain barrier (BBB) by in vitro uptake study in conditionally immortalized rat brain capillary endothelial cell line (TR-BBB). Also, the efflux of PBN from brain to blood is estimated using the brain efflux index (BEI) method. Choline is a charged organic cation, including nitrogen-methyl group and shows the carrier-mediated distribution to the brain. [$^3$H]Choline uptake by TR-BBB cells was significantly inhibited by PBN with $IC_{50}$/ of 1.2 mM, which appears to be due to similar structures between choline and PBN. And, PBN was microinjected into Par2 of the rat brain by BEI method, and was eliminated from the brain with an apparent elimination half-life of about 2 min. Also, [$^3$H]choline efflux was significantly inhibited by PBN using BEI method. In conclusion, the efflux transport of PBN takes place across the BBB and PBN may be transported into the brain and eliminated from the brain by BBB choline transporter.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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