본 연구에서는 식물에 존재하는 신규 기능성 소재 개발의 일환으로 Decaisnea insignis 에탄올 추출물(DIEE)의 항산화 및 항염증 생리활성을 분석하였다. 먼저 DIEE의 항산화능을 DPPH 라디칼 소거능을 통해 분석한 결과 양성 대조군으로 사용한 아스코르빈산과 유사한 정도의 높은 소거활성을 보여 DIEE가 매우 강한 항산화능을 보유함을 확인하였다. 또한 RAW 264.7 세포주에서 $H_2O_2$ 및 LPS에 의해 유도된 ROS에 대한 DIEE의 소거능을 분석한 결과, 농도의존적인 강한 ROS 소거능을 보였다. 뿐만 아니라 대표적인 항산화효소 중 하나로 항산화능 보유 천연물에 의해 발현이 유도되는 hemeoxygenase 1 (HO-1) 및 그 전사 인자인 nuclear factor-E2-related factor 2(Nrf2)의 단백질 발현이 DIEE의 처리에 의해 유의적으로 증가됨을 보였으며 이러한 HO-1 및 Nrf2의 발현 유도는 상위신호전달계인 MAPKs에 의해 조절될 가능성을 보였다. 한편 DIEE가 LPS에 의해 유도된 NO 생성에 미치는 영향을 분석한 결과 농도의존적인 NO 생성 저해능을 보였으며 이는 NO 생성 단백질인 iNOS의 발현 저해에서 기인함을 확인하였다. 이와 같은 DIEE의 NO 생성 억제 효과는 염증 상위신호전달계인 $NF-{\kappa}B$ 및 AP-1의 조절을 통해 일어날 가능성을 보였다. 이러한 결과를 통해 DIEE의 높은 항산화능과 항염증 활성을 처음으로 확인하였으며 향후 기능성 소재로서 유용하게 활용될 수 있을 것으로 판단된다.
본 연구에서는 Ardisia arborescens 에탄올 추출물(AAEE)의 항산화능과 항염증 생리활성을 in vitro assay system 및 cell culture model system을 이용하여 분석하였다. 먼저 AAEE의 항산화능을 DPPH radical 소거능으로 분석한 결과 양성 대조군으로 사용한 ascorbic acid와 유사한 정도의 높은 활성을 보여 매우 강한 항산화능을 보유함을 확인하였다. 또한 RAW 264.7 세포주를 이용한 $H_2O_2$ 및 LPS의 유도에 의해 생성된 ROS에 대한 소거능을 분석한 결과에서도 농도의존적인 강한 소거능을 보였다. 뿐만 아니라 대표적인 항산화효소로 천연물에 의한 항산화능 활성에 의해 발현이 유도되는 HO-1, TrxR1 및 그 전사 인자인 Nrf2의 단백질 발현이 AAEE의 처리에 의해 농도의존적으로 증가됨을 보였으며 이러한 HO-1, TrxR1 및 Nrf2의 발현 변화는 상위신호전달계인 MAPKs에 의해 조절될 가능성을 보였다. 한편 AAEE가 LPS에 의해 유도된 NO 생성에 미치는 영향을 분석한 결과 세포독성 없이 농도의존적인 NO 생성 저해능을 보였으며 이는 NO 생성 단백질인 iNOS의 발현 저해에서 기인함을 확인하였다. 이와 같은 AAEE의 NO 생성 억제 효과는 염증 상위신호전달계인 NF-${\kappa}B$ 및 AP-1의 조절을 통해 일어날 가능성을 보였다. 이러한 결과를 통해 AAEE의 높은 항산화능과 항염증 활성을 처음으로 확인하였으며 향후 기능성 소재로서 유용하게 활용될 수 있을 것으로 판단된다.
Purpose : Skin is the primary barrier to protect the body from various exogenous factors. Among them, UVB exposure can cause the induction of not only excessive inflammatory responses but also the degradation of extracellular matrix (ECM), including collagen and elastin. This study tried to investigate the ameliorative effect of Persicaria perfoliata ethanol extract (PPEE) on UVB-irradiated photodamage through the regulation of activator protein (AP)-1, phosphoinositide 3-kinase (PI3K)/Akt, and mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling molecules in HaCaT cells. Methods : The cytotoxicity of PPEE on HaCaT cells was evaluated by the WST-1 assay. The 80 mJ/cm2 of UVB (312 nm) was irradiated on HaCaT cells to induce the photodamage. Western blot analysis was conducted to investigate the protein expression levels of cyclooxygenase (COX)-2, matrix metalloproteinase (MMP)-9, and heme oxygenase (HO)-1 for ameliorative status by PPEE treatment in UVB-exposed HaCaT cells. In addition, the activated status of the inflammatory transcription factor, AP-1, as well as upstream signaling molecules, PI3K/Akt, and MAPK, were also evaluated by Western blot analysis. Results : Any cytotoxic effect was not induced at the concentration up to 200 ㎍/ml by PPEE treatment. Protein expression levels of COX-2 and MMP-9 were significantly down- and up-regulated by PPEE treatment. The inflammatory transcription factor AP-1, stimulated by UVB irradiation, was also significantly attenuated by PPEE treatment. The phosphorylated status of PI3K/Akt and MAPK were mitigated by PPEE treatment in UVB-exposed HaCaT cells. Moreover, PPEE treatment potently accelerated the expression of HO-1 and its transcription factor, nuclear factor-erythroid 2-related factor (Nrf)2, which is known for its anti-inflammatory activity. Conclusion : Consequently, PPEE treatment significantly regulated COX-2 and MMP-9 expressions in UVB-irradiated HaCaT cells. The inflammatory transcription factor AP-1, along with upstream signaling molecules PI3K/Akt and MAPKs, were also attenuated by PPEE treatment in UVB-exposed HaCaT cells. Additionally, PPEE treatment exaggerated HO-1 expression and Nrf2 activation, which might have contributed to the anti-inflammatory activity of PPEE. These results indicate that PPEE could be a candidate for attenuating UVB-induced photodamage in human skin.
In this study, we investigated the potential protective effects of (+)-afzelechin (AZC), a natural compound that is derived from Bergenia ligulata, on lipopolysaccharide (LPS)-induced inflammatory responses. AZC is known to have antioxidant, anticancer, antimicrobial, and cardiovascular protective properties. However, knowledge regarding the therapeutic potential of AZC against LPS-induced inflammatory responses is limited. Thus, we investigated the protective attributes of AZC against inflammatory damage caused by LPS exposure. We examined the effects of AZC on heme oxygenase (HO)-1, cyclooxygenase (COX)-2, and inducible nitric oxide synthase (iNOS) in LPS-activated human umbilical vein endothelial cells (HUVECs). In addition, the effects of AZC on the expression of iNOS, tumor necrosis factor (TNF)-α, and interleukin (IL)-1β were analyzed in the lung tissues of LPS-injected mice. Data revealed that AZC promoted the production of HO-1, inhibited the interaction between luciferase and nuclear factor (NF)-κB, and reduced the levels of COX-2/PGE2 and iNOS/NO, thereby leading to a decrease in the signal transducer and activator of transcription (STAT)-1 phosphorylation. Moreover, AZC facilitated the nuclear translocation of Nrf2, increased the binding activity between Nrf2 and the antioxidant response elements (AREs), and lowered the expression of IL-1β in the LPS-treated HUVECs. In the animal model, AZC significantly reduced the expression of iNOS in the lung tissue structure and the TNF-α level in the bronchoalveolar lavage fluid. These findings demonstrate that AZC possesses anti-inflammatory properties that regulate iNOS through the inhibition of both NF-κB expression and p-STAT-1. Consequently, AZC has potential as a future candidate for the development of new clinical substances for the treatment of pathological inflammation.
Mitochondrial biogenesis is a complex process requiring coordinated expression of nuclear and mitochondrial genomes. The peroxisome proliferator-activated receptor gamma co-activator 1-alpha (PGC-$1{\alpha}$) is a key regulator of mitochondrial biogenesis, and it controls mitochondrial DNA (mtDNA) replication within diverse tissues, including muscle tissue. The aim of this study was to investigate the effects of eicosapentaenoic acid (EPA) and docosahexaenoic acid (DHA) on mtDNA copy number and PGC-$1{\alpha}$ promoter activity in $C_2C_{12}$ muscle cells. mtDNA copy number and mRNA levels of genes related to mitochondrial biogenesis such as PGC-$1{\alpha}$, nuclear respiratory factor 1 (NRF1) and mitochondrial transcription factor A (Tfam) were assayed by quantitative real-time PCR. The PGC-$1{\alpha}$ promoter from -970 to +412 bp was subcloned into the pGL3-basic vector, which includes a luciferase reporter gene. Both EPA and DHA significantly increased mtDNA copy number, dose and time dependently, and up-regulated mRNA levels of PGC-$1{\alpha}$, NRF1, and Tfam. Furthermore, EPA and DHA stimulated PGC-$1{\alpha}$ promoter activity in a dose-dependent manner. These results suggest that EPA and DHA may modulate mitochondrial biogenesis, which was partially associated with increased mtDNA replication and PGC-$1{\alpha}$ gene expression in $C_2C_{12}$ muscle cells.
Elkady, Ayman I;Hussein, Rania A;El-Assouli, Sufian M
Asian Pacific Journal of Cancer Prevention
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제17권4호
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pp.1947-1959
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2016
Background: Colorectal cancer (CRC) is a major cause of morbidity and mortality, being the second most common type of cancer worldwide in both men and women. It accounts yearly for approximately 9% of all new cases of cancers. Furthermore, the current chemotherapeutic regimens seem unsatisfactory, so that exploration of novel therapeutic modalities is needed. The present study was undertaken to investigate the inhibitory effects of a crude alkaloid extract (CAERS) of a medicinal herb, Rhazya stricta, on proliferation of CRC HCT116 cells and to elucidate mechanisms of action. To achieve these aims, we utilized MTT, comet, DNA laddering and gene reporter assays, along with Western blot and RT-PCR analyses. Results: We found that CAERS inhibited cell proliferation and induced apoptotic cell death in HCT116 cells. Hallmarks of morphological and biochemical signs of apoptosis were clearly evident. CAERS down-regulated DNA-binding and transcriptional activities of NF-${\kappa}B$ and AP-1 proteins, while up-regulating expression of the Nrf-2 protein. It also down-regulated expression levels of the ERK MAPK, Bcl-2, cyclin D1, CDK-4, survivin and VEGF and up-regulated levels of Bax, caspase-3/7 and -9, p53, p21, Nrf-2. Markedly, it promoted mRNA expression levels of cytoprotective genes including the hemeoxygenase-1, NAD(P)H quinine oxidoreductase 1 and UDP-glucuronyltransferase. Conclusions: These findings indicate that CAERS exerts antiproliferative action on CRC cells through induction of apoptotic mechanisms, and suggest CAERS could be a promising agent for studying and developing novel chemotherapeutic agents aimed at novel molecular targets for the treatment of CRC.
Fisetin is a bioactive flavonol molecule and has been shown to have antioxidant potential, but its efficacy has not been fully validated. The aim of the present study was to investigate the protective efficacy of fisetin on C2C12 murine myoblastjdusts under hydrogen peroxide (H2O2)-induced oxidative damage. The results revealed that fisetin significantly weakened H2O2-induced cell viability inhibition and DNA damage while blocking reactive oxygen species (ROS) generation. Fisetin also significantly alleviated cell cycle arrest by H2O2 treatment through by reversing the upregulation of p21WAF1/CIP1 expression and the downregulation of cyclin A and B levels. In addition, fisetin significantly blocked apoptosis induced by H2O2 through increasing the Bcl-2/Bax ratio and attenuating mitochondrial damage, which was accompanied by inactivation of caspase-3 and suppression of poly(ADP-ribose) polymerase cleavage. Furthermore, fisetin-induced nuclear translocation and phosphorylation of Nrf2 were related to the increased expression and activation of heme oxygenase-1 (HO-1) in H2O2-stimulated C2C12 myoblasts. However, the protective efficacy of fisetin on H2O2-mediated cytotoxicity, including cell cycle arrest, apoptosis and mitochondrial dysfunction, were greatly offset when HO-1 activity was artificially inhibited. Therefore, our results indicate that fisetin as an Nrf2 activator effectively abrogated oxidative stress-mediated damage in C2C12 myoblasts.
Heme oxygenase (HO), the rate limiting enzyme in the breakdown of heme into carbon monoxide (CO), iron and bilirubin, has recently received overwhelming research attention. To date three mammalian HO isozymes have been identified, and the only inducible form is HO-1 while HO-2 and HO-3 are constitutively expressed. Advances in unveiling signal transduction network indicate that a battery of redox-sensitive transcription factors, such as activator protein-1 (AP-1), nuclear factor-kappa B (NF-${\kappa}B$) and nuclear factor E2-related factor-2 (Nrf2), and their upstream kinases including mitogen-activated protein kinases play an important regulatory role in HO-1 gene induction. The products of the HO-catalyzed reaction, particularly CO and biliverdin/bilirubin have been shown to exert protective effects in several organs against oxidative and other noxious stimuli. In this context, it is interesting to note that induction of HO-1 expression contributes to protection against liver damage induced by several chemical compounds such as acetaminophen, carbon tetrachloride and heavy metals, suggesting HO-1 induction as an important cellular endeavor for hepatoprotection. The focus of this review is on the significance of targeted induction of HO-1 as a potential therapeutic strategy to protect against chemically-induced liver injury as well as hepatocarcinogenesis.
Heme oxygenase(HO)-1 is an important antioxidant enzyme that plays a pivotal role in cellular adaptation and protection in response to a wide array of noxious stimuli. Thus, HO-1 induction has been associated with prevention or mitigation of pathogenesis of various diseases, including acute inflammation, atherosclerosis, degenerative diseases, and carcinogenesis. Recent progress in our understanding of the function of molecules in the cellular signaling network as key modulators of gene transcription sheds light on the molecular mechanisms underlyuing HO-1 gene expression. A panel of redox-sensitive transcription factors such as activator protein-1, nuclear factor-kB, and nuclear factor E2-related factor-2, and some of the upstream kinases have been identified as prime regulators of HO-1 gene induction. This review summarizes molecular mechanisms underlying HO-1 expression and the significance of targeted induction of HO-1 as a potential chemopreventive or chemoprotective strategy.
BACKGROUND/OBJECTIVES: Anti-inflammatory and antioxidative activities of luteolin and luteolin-7-O-glucoside were compared in galactosamine (GalN)/lipopolysaccharide (LPS)-induced hepatitic ICR mice. MATERIALS/METHODS: Male ICR mice (6 weeks old) were divided into 4 groups: normal control, GalN/LPS, luteolin, and luteolin-7-O-glucoside groups. The latter two groups were administered luteolin or luteolin-7-O-glucoside (50 mg/kg BW) daily by gavage for 3 weeks after which hepatitis was induced by intraperitoneal injection of GalN and LPS (1 g/kg BW and $10{\mu}g/kg\;BW$, respectively). RESULTS: GalN/LPS produced acute hepatic injury by a sharp increase in serum AST, ALT, and $TNF-{\alpha}$ levels, increases that were ameliorated in the experimental groups. In addition, markedly increased expressions of cyclooxygenase (COX)-2 and its transcription factors, nuclear factor $(NF)-{\kappa}B$ and activator protein (AP)-1, were also significantly attenuated in the experimental groups. Compared to luteolin-7-O-glucoside, luteolin more potently ameliorated the levels of inflammatory mediators. Phase II enzymes levels and NF-E2 p45-related factor (Nrf)-2 activation that were decreased by GalN/LPS were increased by luteolin and luteolin-7-O-glucoside administration. In addition, compared to luteolin, luteolin-7-O-glucoside acted as a more potent inducer of changes in phase II enzymes. Liver histopathology results were consistent with the mediator and enzyme results. CONCLUSION: Luteolin and luteolin-7-O-glucoside protect against GalN/LPS-induced hepatotoxicity through the regulation of inflammatory mediators and phase II enzymes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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