망막 쌍극세포는 광자극에 대하여 완만한 전위응답을 하며, 막전위에 의존하여 전달물질(glutamine 산)을 방출한다. 본 논문에서는 ON형 쌍극세포의 시냅스 앞단에서 전달물질 방출 기구에 관한 여러 가지의 생리학적 정보를 수식적 모델로 통합하였다. 전달물질 방출의 빠른 성분과 느린 성분의 공급원을 병렬로 배치한 본 모델은 전달물질 방출의 막전위 및 세포 내 $Ca^{2+}$ 농도 의존성을 충실하게 재현할 수가 있었다. 또한 전달물질의 빠른 방출 성분은 사다리꼴 모양의 막전위 의존성을 나타내는 데에 반하여, 느린 방출 성분은 종모양의 막전위 의존성을 나타내기 때문에 세포 내의 $Ca^{2+}$ 농도 상승을 $Ca^{2+}$ 완충제로 억제하여 느린 방출 성분이 감소되고, 전달 물질 방출의 막전위 의존성이 사다리꼴 모양의 특성이 되는 것을 확인하였다. 그리고 ON 형 쌍극세포의 광응답에서 일시적 성분과 지속적 성분에 의하여 발생하는 전달물질 방출을 시뮬레이션한 결과 광응답의 시작은 전달물질을 빠르게 방출하게 하였으며, 광응답의 일시적 성분과 초기의 지속적 성분은 전달물질을 느리게 방출하도록 하였다. 또한 광응답의 후기 지속적 성분은 저장 pool로부터 보충된 시냅스 소포에 의하여 지속적인 방출이 발생하기 때문이라는 것을 확인하였다.
There is evidence that cholesterol in the brain plays an important role in the neurotransmitter release. A decrease of the cholesterol level severely hampers the activity of the membrane fusion machinery, thereby inhibiting the release. Meanwhile, the results from several clinical studies suggest that a low cholesterol level is linked to the dysfunction of some brain activities. Because the neurotransmitter release underlies the basic brain function, the combined results lead to a testable hypothesis that the cholesterol-lowering drugs may inhibit the neurotransmitter release at the synapse. Such inhibition of the release could result in impaired brain function for a limited group of people. A molecular basis for the hypothesis is discussed.
Translationally controlled tumor protein (TCTP) activates basophils to release histamine and causes chronic inflammation. It was also reported that TCTP significantly reduced in brain of Alzheimer's Disease and Down Syndrome as compared to normal person, suggesting that TCTP might be involved in cognitive function. We wondered whether TCTP could act as a general inducer in neurotransmitters release in brain. We, therefore, investigated the role of TCTP in PC12 cell line which expressed neuronal properties. We found that TCTP could activate JNK, and the activity was inhibited by pretreatment of dicoumarol, a JNK inhibitor. However, TCTP could not activate ERK that has known to be involved in neurotransmitter release. These suggest TCTP did not participate in neurotransmitter release from PC12 cells, and TCTP might not be a general inducer in neurotransmitter release.
We established an in vitro experimental system using the following procedure. We first introduced tritium-labelled norepinephrine ([3H]-NE)into PC12 cells. The [3H]-NE incorporated into PC12 cells were then stimulated by a high concentration (60 mM) of $K^+$ during 12 minutes. Then, we counted the amount of [3H]-NE release from PC12 cells with the scintillation counter. After screening fungal, Streptomyces or bacterial product using this experimental system, we obtained S9940 from Streptomyces spp. which inhibited [3H]-NE release from PC12 cells. S9940 also inhibits the release of ATP as a neurotransmitter of PC12 cells and rat cortical neurons. The inhibitory effect was seen even when the PC12 cells were treated with low $K^+$ buffer containing ionomycin $(1\muM)$ as an ionopore. This result suggests that the inhibitory action of S9940 on neurotransmitter release appeared after the influx of $Ca^{2+}$.
We established an in vitro experimental system using the following procedure. We first introduced tritium-labeled norepinephrine ([$^3$H]-NE) into PC12 cells, The [$^3$H]-NE incorporated into PC12 cells were then stimulated by a high concentration (60 mM) of $K^+$ buffer during 12 minutes. Then, we collected $100{\mu}l$ supernatant and counted the amount of [$^3$H]-NE release from PC12 cells with a scintillation counter. After screening fungal, Streptomyces spp. or bacterial product using this experimental sytem, we obtained FS11052 from Streptomyces spp. which inhibited [$^3$H]-NE release from PC12 cells. FS11052 also inhibits the release of ATP as a neurotransmitter of PC12 cells and rat cortical neurons, The inhibitory effect was seen even when the PC12 cells were treated with low $K^-$ buffer containing ionomycin ($1{\mu}M$) as an ionopore. This result suggests that the inhibitory action of FS11052 on neurotransmitter release appeared after the influx of $Ca^{2+}$.
Conventional views of synaptic transmission generally overlook the possibility of 'postfusional-control' the regulation of the speed or completeness of transmitter release upon vesicular fusion. However, such regulation often occurs in non-neuronal cells where the dynamics of fusion-pore opening is critical for the speed of transmitter release. In case of synapses, the slower the transmitter release, the smaller the size and rate-of-rise of postsynaptic responses would be expected if postsynaptic neurotransmitter receptors were not saturated. This prediction was tested at hippocampal synapses where postsynaptic AMPA-type glutamate receptors (AMPAR) were not generally saturated. Here, we found that the small miniature excitatory postsynaptic currents (mEPSCs) showed significantly slower rise times than the large mEPSCs when the sucrose-induced mEPSCs recorded in cyclothiazide (CTZ), a blocker for AMPAR desensitization, were sorted by size. The slow rise time of the small mEPSCs might result from slow release through a non-expanding fusion pore, consistent with postfusional control of neurotransmitter release at central synapses.
We identified S9940, a novel microbial metabolite from Streptomyces spp., to inhibit the release of neurotransmitter from PC12 cells. S9940 is an inhibitor of trifiated norepinephrine ([$^{3}H$]-NE) release in high $K^+$ buffer solution containing ionomycin, indicating that S9940 inhibits neurotransmitter release after the influx of $Ca^{2+}$ ions. We also examined the effect of S9940 on $\beta-glucuronidase$ release from guinea pig neurophils and the effect on the neurite extension of PC12 cells and rat hippocampal neurons. As a result, S9940 inhibited $\beta-glucuronidase$ release: when treated with $5{\mu}g/ml$ of S9940, which prevented [$^{3}H$]-NE release, the inhibition of neurite extension for both PC12 cells and rat hippocampal neurons was observed.
신경전달물질의 분비는 시냅스전 신경말단의 active zone에 있는 다양한 단백질들에 의해 조절된다. 도파민은 정신분열병, 약물중독과 같은 여러 가지 행동, 정신질환의 병태생리와 연관된 필수적인 신경전달물질이다. 저자들은 본 연구에서 신경 전달물질 분비와 관련된 주요 유전자가 결여 된 knockout (KO) 생쥐의 시냅토좀(synaptosome) 도파민 분비를 측정하였다. 시냅토좀 도파민 흡수와 분비는 [$^3H$]-도파민과 관류실험을 이용하여 시행, 측정하였다. 17 KO 생쥐 가운데 3 종류의 생쥐에서 그들의 littermate 대조군과 비교하였을 때 변화된 도파민 분비를 보였다. $Rim1{\alpha}$ KO에서 세포막 탈분극에 의한 [$^3H$]-도파민은 유의하게 감소되었으며, 또한 $Rim1{\alpha}$의 도파민 신경에서의 조건 KO에서는 생리적 완충용액에 의한 기본적인 도파민 분비 및 세포막 탈분극에 의한 도파민 분비 모두가 유의하게 감소되어 있었다. neurexin3의 도파민 신경에서의 조건 KO에서는 세포막 탈분극에 의한 도파민 분비의 증가를 보였다. 이 데이터들은 도파민 분비와 글루타메이트, GABA와 같은 전통적 신경전달물질 분비의 유사성과 차별성을 설명한다. 결론적으로, $Rim1{\alpha}$와 neurexin3는 시냅스전 도파민 분비의 중요한 조절자이며 신경계 질환과 연관될 가능성이 있다.
The involvement of the cyclic AMP (cAMP) effector system in the release of endogenous dopamine and acetylcholine from the rat neostriatum was assessed. Forskolin, an activator of adenylate cyclase, was used to enhance cAMP production, and the consequence of this enhancement on the spontaneous and potassium stimulated release of dopamine and acetylcholine was evaluated. Neostriatal slices were prepared from Fischer 344 rats and after a preincubation period the release of each endogenous neurotransmitter was measured from the same slice preparation. To measure acetylcholine release the slice acetylcholinesterase (AChE) activity was inhibited with physostigmine, but the release from slices with intact AChE activity was also determined (choline, instead of acetylcholine was detected in the medium). Under both conditions forskolin induced a significant dose-dependent increase in the potassium-evoked release of dopamine. In the same tissue preparations the release of neither acetylcholine (AChE inhibited) nor choline (AChE intact) was affected by forskolin. The results indicate that the CAMP second messenger system might be involved in neuronal mechanisms that enhance neostriatal dopamine release, but stimulation of this second messenger by forskolin does not further enhance neostriatal acetylcholine release.
The mechanisms controlling the intensity and duration of synaptic transmission are numerous. Once an action potential reaches a nerve terminal, the stored neurotransmitters are released in a quantum fashion into the synaptic cleft. At that point neurotransmitters can act on post-synaptic receptors to elicit an action on the post-synaptic cell or net at so-called auto-receptors that are located on the presynaptic side and which often regulate the further release of the neutotransmitter. Whereas the action of the neurotransmitter receptors is regulated by desensitization phenomenon, the major mechanism by which the intensity and duration of neurotransmitter action is presumably regulated by either its degradation or its removal from the synaptic cleft. In the central nervous system, specialized proteins located in fe plasma membrane of presynaptic terminals function to rapidly remove neurotransmitters from the synaptic cleft in a sodium chloride-dependent fashion. These proteins have been referred to as uptake sites or neurotransmitter transporters. Once taken up by the plasma membrane transporters, neurotransmitters are repackaged into secretory vesicles by distinct transporters which depend on a proton gradient.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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