The aim of this work was to investigate the characterization and sequence of catechol 2,3-dioxygenase isolated from Delfia sp. JK-2, which could utilize aniline as sole carbon, nitrogen and energy source. In initial experiments, several characteristics of C2,3O separated with ammonium sulfate precipitation, DEAE-sepharose were investigated. Specific activity of C2,3O was approximately 4.72 unit/mg. C2,3O demonstrated its enzyme activity to other substrates, catechol and 4-methylcatechol. The optimum temperature of C2,3O was $$Cu^{2+}$^{\circ}C$, and the optimal pH was approximately 8. Metal ions such as $Ag^{+}$, $Hg^{+}$, and $Cu^{2+}$ showed inhibitory effect on the activity of C2,3O. Molecular weight of the enzyme was determined to approximately 35 kDa by SDS-PAGE. N-terminal amino acid sequence of C2,3O was analyzed as $^{1}MGVMRIG-HASLKVMDMDA- AVRHYENV^{26}$, and exhibited high sequence homology with that of C2,30 from Pseudomonas sp. AW-2, Comamonas sp. JS765, Comamonas testosteroni and Burkholderia sp. RPO07. PCR product was amplified with the primers derived from N-terminal amino acid sequence. In this work, we found that the amino acid sequence of Delftia sp. JK-2 showed high sequence homology of C2,3O from Pseudomonas sp. AW-2 (100%) and Comamonas sp. JS765 (97%).
Pichia pastoris is one of the most widely used expression systems for the secretory expression of recombinant proteins. The secretory expression in P. pastoris usually makes use of the prepro $MAT{\alpha}$ sequence from Saccharomyces cerevisiae, which has a dibasic amino acid cleavage site at the end of the signal sequence. This is efficiently processed by Kex2 protease, resulting in the secretion of high levels of proteins to the medium. However, the proteins that are having the internal accessible dibasic amino acids such as KR and RR in the coding region cannot be expressed using this signal sequence, as the protein will be fragmented. We have identified a new signal sequence of 18 amino acids from a P. pastoris protein that can secrete proteins to the medium efficiently. The PMT1-gene-inactivated P. pastoris strain secretes a ~30 kDa protein into the extracellular medium. We have identified this protein by determining its N-terminal amino acid sequence. The protein secreted has four DDDK concatameric internal repeats. This protein was not secreted in the wild-type P. pastoris under normal culture conditions. We show that the 18-amino-acid signal peptide at the N-terminal of this protein is useful for secretion of heterologous proteins in Pichia.
The gene encoding alginate lyase was isolated from a library constructed with the vector, pUC19, and expressed in Escherichia coli. The nucleotide sequence of the cloned alginate lyase gene (ALY) from Pseudomonas sp. W7 was determined. The nucleotide sequence revealed a 1,035 bp open reading frame (ORF), encoding 345 amino acid residues with a calculated molecular mass of 37,478 Da. The N-terminal amino acid sequences (15 residues) of purified alginate lyase corresponded to that of the deduced amino acid sequence.
Two chitosanases produced by Aspergillus fumigatus KB-1 were purified by ion exchange and size exclusion chromatographies. Molecular weights of chitosanases were 111.23 kDa (chitosanase I) and 23.38 kDa (chitosanase II). The N-terminal amino acid sequence of chitosanase II was determined as follows: YNLPNNLKQIYDKHKGKXSXVLAKGFTN. The optimum pH of the chitosanase I and II was 6.5 and 5.5, respectively. The optimum temperatures were $60^{\circ}C$ for chitosanase land $70^{\circ}C$ for chitosanase II. Hydrolysis products of two chitosanases were analyzed by HPLC and GPC. Chitosanase I hydrolyzed substrate to glucosamine. Chitosanase II produced chitooligosaccharides.
Bovine PAS-4 is an integral membrane glycoprotein expressed in mammary epithelial cells. Complementary DNA (cDNA) cloning of PAS-4 was performed by reverse-transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR) with oligonucleotide probes based on it's amino terminal and internal tryptic-peptides. The cloned PAS-4 cDNA was 1,852 nucleotides (nt) long and its open reading frame (ORF) was encoded 1,413 base long. The deduced amino acid sequence indicated that PAS-4 consisted of 471 amino acid residues with molecular weight of 52,796, bearing 8 potential N-glycosylation sites and 9 cysteine residues. Partial bovine CD36 cDNA from liver also was sequenced and the homology of both nucleotide sequence was 94%. Most of the identical amino acid residues were in the luminal/extracellular domains. Contrary to PAS-4, bovine liver CD36 displays 6 potential N-glycosylation sites, which were located, except for those at positions 101 and 171, at same positions as PAS-4 cDNA. Cysteine residues of PAS-4 and CD36 were same at position and in numbers. Northern blot analysis showed that PAS-4 was widely expressed, although its mRNA steady-state levels vary considerably among the analyzed cell types. PAS-4 possessed hydrophobic amino acid segments near the amino- and carboxyl-termini. Two short cytoplasmic tails of the amino- and carboxyl-terminal ends constituted of a 5-7 and 8-11 amino acid residues, respectively.
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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2003.06a
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pp.53-53
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2003
Calumenin was previously identified as a high affinity Ca$\^$2+/ binding protein in mouse cardiac sarcoplasmic reticulum (SR). For the present study, a 48 kDa skeletal homologue of calumenin was identified by sucrose-density gradient of rabbit skeletal SR membranes, concanavalin A treatment, 2D-gel electrophoresis, $\^$45/Ca$\^$2+/ overlay, Stains-all staining, and MALDI-TOF analysis. We attempted to clone the skeletal calumenin by RT-PCR based on mouse cardiac and human calumenin sequences. The deduced amino acid sequence (315 residues) of the skeletal calumenin showed high identity to mouse cardiac calumenin (90%). As seen in the cardiac calumenin, the deduced sequence contains a 19 amino acid N-terminal signal sequence and a HDEF C-terminal sequence, a putative retrieval signal to ER. Also, the skeletal calumenin contains one N-glycosylation site, three PKC phosphorylation sites, eight casein kinase 2 phosphorylation sites, and 6 EF-hand domains. GST-calumenin showed a conformational change and increased mobility in the presence of Ca$\^$2+/ in SDS-PAGE. Three calumenin interacting proteins (ryanodine receptor 1, glycogen phosphorylase, and phosphofructo kinase) were identified by pull-down assay with GST-calumenin and solubilized SR. All the interactions were Ca$\^$2+/dependent. The present results suggest that calumenin plays an important role in Ca$\^$2+/ homeostasis of muscle cells.
Heat shock proteins serve as chaperone by preventing the aggregation of denatured proteins and promote survival of pathogens in harsh environments. In this study, heat shock gene encoding a 84-kDa (p84) protein, which is one of the three major heat shock proteins in S. pneumoniae, was cloned and characterized. PCR with a forward primer derived from N-terminal amino acid sequence of the p84 and a reverse primer derived from the conserved second ATP-binding region of Clp family was used for amplification of the gene encoding the p84 and subsequently the PCR product was used for sequence determination. Sequence analysis of the p84 gene demonstrated that it is a member of ClpL. The deduced amino acid sequence of pneumococcal ClpL shows homology with other members of the Clp family, and particularly, even in variable leader region, with bovine Clp-like protein and L. lactis ClpL. S. pneumoniae clpL is the smallest clop member (701 amono acids) containing the two conserved ATP-binding regions, and hydrophilic N-terminal variable region of pneu-mococcal Clp ATPase is much shorter than any known Clp ATPases. Histidine tagged ClpL was overexpressed and purified from E. coli. Immunoblot analysis employing antisera raised against pneumococcus p84 demonstrated no cross-reactivity with Clp analog in Eschericha coli, Staphylococcus aureus and human HeLa cells. Preimmunization of mice with ClpL extended mice life partially but did not protect them from death.
Insects use chitinolytic enzyme to digest chitin in the exoskelton during the molting process. We have isolated and sequenced a chitinase-encoding cDNA from the silkworm, Bombyx mandarina, compared its sequenced with genes encoding chitinolytic enzymes from other sources. The insert DNA in the clone is 2,675 nucleotides long with an open reading frame of 1,695 uncletides that encodes a protein of 565 amino acids with a molecuar weight of 63.4 kDa. The 3' -untranslated region of 889 nucleotides is AT-rich and contains two putative polyadenylation signals. The N-terminal sequence of the encoded protein contains numerous hydrophobic residues characteristic of a leader peptide. The amino acid alignment revealed that the endo-$\beta$-N-acetylglucosaminidase had 83% and 97% homology with M. sexta and B. mori, respectively. The deduced amino acid had two highly conserved region at the amino acid residues 97-111 and 139-148 that were related to the existing chitinase.
MatR in Rhizobium trifolii is a malonate-responsive transcription factor that regulates the expression of genes, matABC, enabling decarboxylation of malonyl-CoA into acetyl-CoA, synthesis of malonyl-CoA from malonate and CoA, and malonate transport. According to an analysis of the amino acid sequence homology, MatR belongs to the GntR family The proteins of this family have two-domain folds, the N-terminal helix-turn-helix DNA-binding domain and the C-terminal ligand-binding domain. In order to End the malonate binding site and amino acid residues that interact with RNA polymerase, a site-directed mutagenesis was performed. Analysis of the mutant MatR suggests that Arg-160 might be involved in malonate binding, whereas Arg-102 and Arg-174 are critical for the repression activity by interacting with RNA polymerase.
The full-length cDNA of the lumbrokinase fraction 6 (F6) protease gene of Lumbricus rubellus was amplified using an mRNA template, sequenced and expressed in E. coli cells. The F6 protease gene consisted of pro- and mature sequences by gene sequence analysis, and the protease was translated and modified into active mature polypeptide by N-terminal amino acid sequence analysis of the F6 protease. The pro-region of F6 protease consisted of the 44 residues from methionine-1 to lysine-44, and the mature polypeptide sequence (239 amino acid residues and one stop codon; 720 bp) started from isoleucine-45 and continued to the terminal residue. F6 protease gene clones having pro-mature sequence and mature sequence produced inclusion bodies in E. coli cells. When inclusion bodies were orally administrated rats, generated thrombus weight in the rat' venous was reduced by approximately 60% versus controls. When the inclusion bodies were solubilized in pepsin and/or trypsin solutions, the solubilized enzymes showed hemolytic activity in vitro. It was concluded the F6 protease has hemolytic activity, and that it is composed of pro- and mature regions.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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