Candida tropicalis was treated with ultraviolet (UV) rays, and the mutants obtained were screened for xylitol production. One of the mutants, the UV1 produced 0.81g of xylitol per gram of xylose. This was further mutated with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (MNNG), and the mutants obtained were screened for xylitol production. One of the mutants (CT-OMV5) produced 0.85g/g of xylitol from xylose. Xylitol production improved to 0.87 g/g of xylose with this strain when the production medium was supplemented with urea. The CT-OMV5 mutant strain differs by 12 tests when compared to the wild-type Candida tropicalis strain. The XR activity was higher in mutant CT-OMV5. The distinct difference between the mutant and wild-type strain is the presence of numerous chlamvdospores in the mutant. In this investigation, we have demonstrated that mutagenesis was successful in generating a superior xylitol-producing strain, CT-OMV5, and uncovered distinctive biochemical and physiological characteristics of the wild-type and mutant strain, CT-OMV5.
Mutation experiments were performed to select the mutant of Aspergillus niger 55, which had lost almost all the ability to produce transglucosidases but retained that of high productivity of raw meal saccharifying enzyme, by means of successive induction with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine(MNNG), ultraviolet(UV) light, and ${\gamma}$-rays. Also, we used the mutant enrichment techniques, such as liquid culture-filtration procedure and differential heat sensitivity of conidia, in order to increase the possibility of obtaining a mutant. The glucoamylase productivity of mutant PFST-38 was 11 times higher than that of the parent strain. The mutant PFST-38 was morphologically identical to the parent strain, except for the size of conidia, the tendency to form conidia and the lenght of conidiophore. Asp. niger mutant PFST-38 apeared to be useful for the submerged production of the raw corn meal saccharifying enzyme.
The induced genetic divergence was estimated in 44 mutant lines of finger millet variety GPU 26, developed by single and combination treatments with gamma rays, EMS and NG using three multivariate analyses. The mutant lines were grouped into eight genetically diverse clusters by multivariate D2 and canonical analyses and 11 clusters by dendrogram grouping through Gower's similarity coefficient. The clustering pattern in these three methods was almost similar. Twelve mutant lines in D2 and 13 in the dendrogram grouping method were grouped in the parental cluster(Cluster I) indicating that they did not possess enough divergence from the parent to be classified as micromutant lines. However a large proportion of mutant lines showed divergence from the parent variety and also among themselves. No definite relationship of mutagenic origin and clustering of mutant lines were observed. The mutant lines developed from the same mutagenic treatments often grouped into different clusters indicating that each mutagenic treatment was effective in inducing diverse types of changes in the nine traits studied. The hybridization program between the divergent mutant lines GE 2-2 or GE 3-4 with GG 3-1 is expected to give promising and desirable segregants in subsequent generations. Traits such as days to 50% flowering and days to maturity had major contributions to the induced genetic divergence.
To investigate the role of induction on CGTase production for alkalophilic Bacillus firm us var. alkalophilus H609, the constitutive mutants that form a halo around its colonies at non-inducible AG agar media containing amylose and glucose were selected. The selected constitutive mutants could produce CGTase in the range of 18.9 to 28.8 units/ml $\cdot A_{600}$ in the alkaline basal medium, and finally a constitutive mutant Bacillus firmus var. alkalophilus CM46 was selected. The constitutive nature of CM46 was also confirmed in protein level using SDS-PAGE. The effects of induction and catabolite repression for both parent strain Bacillus firmus var. alkalophilus H609 and constitutive mutant CM46 were also compared by adding soluble starch and glucose during cultivation. The selected mutant CM46 was a non-inducible but a catabolite regulated type mutant. Even though inductive regulation was released, the specific CGTase activity defined as CGTase activity per cell concentration was not increased compared with that of parent strain. The cell growth and CGTase production patterns of constitutive mutant Bacillus firmus var. alkalophilus CM46 were compared with the parent strain to identify CGTase production characteristics.
Arabidopsis AHL gene encodes a 3'(2')-phosphoadenosine 5'-phosphate (PAP)-specific phosphatase that plays a role in the sulfate activation pathway. We complemented E. coli cysQ mutant defective in cysteine biosynthesis with the AHL gene. AHL cDNA was cloned into the prokaryotic expression vector pKK388-1 and transformed into the bacterial mutant. Since cysQ mutant is a leaky cysteine auxotroph only under aerobic conditions, the bacteria were grown in liquid media with vigorous shaking to provide more aeration. In cysteine-free medium, cysQ mutant and the mutant harboring empty vector did not grow well, whereas cells harboring AHL cDNA exhibited significantly improved growth with doubling time of approximately 3 h. cysQ is known to encode a 3'(2'),5'-diphosphonucleoside 3'(2')-phosphohydrolase (DPNPase). However, our data suggest that cysQ protein has PAP-specific phosphatase activity in addition to DPNPase activity. Microbial complementation procedure described in this paper is useful for structure-activity studies of PAP-specific phosphatases identified from microbes and plants.
Isolation of a pigment overproducing mutant, P-57, by ultraviolet irradiation of Monascus purpureus KCCM 60016 and investigation of the optimal conditions for pigment production of the mutant were carried out. P-57 mutant produced pigment on solid state culture. Unpolished rice was the best cereal source for pigment production among eight kinds of tested cereal sources for the solid culture of the mutant. The optimal culture condition for pigment production were obtained from the cultivated at $30^{\circ}C,\;90\%$ humidity for 30 days. The P-57 mutant strain showed the best pigment productivity of 160.0 unit at red pigment, 193.6 unit at orange pigment, and 141.6 unit at yellow pigment on solid state culture under optimal condition.
BACKGROUND: This study was performed for selecting yeast mutants with a high tolerance for targeted metals, and determining whether yeasts strains tolerant to multiple heavy metals could be induced by sequential adaptations. METHODS AND RESULTS: A mutant yeast strain tolerant to the heavy metals cadmium (Cd), copper (Cu), nickel (Ni), and zinc (Zn) was selected by sequential elevated exposures to each metal with intermittent mutant isolation steps. A Cd-tolerant mutant was isolated by growing yeast cells in media containing $CdCl_2$ concentrations that were gradually increased to 1 mM. Then the Cd-tolerant mutant was gradually exposed to increasing levels of $CuCl_2$ in growth media until a concentration of 7 mM was reached, thus generating a strain tolerant to both Cd and Cu. In the subsequent steps, this mutant was exposed to $NiCl_2$ (up to 8 mM), and a resultant isolate was further exposed to $ZnCl_2$ (up to 60 mM), allowing the derivation of a yeast mutant that was simultaneously tolerant to Cd, Cu, Ni, and Zn. CONCLUSION: This method of inducing tolerance to multiple targeted heavy metals in yeast will be useful in the bioremediation of heavy metals.
Kim, Ji Soo;Kim, Yong Hwan;Anderson, Anne J.;Kim, Young Cheol
The Plant Pathology Journal
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v.30
no.2
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pp.215-219
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2014
The GacS/GacA two component system regulates various traits related to the biocontrol potential of plant-associated pseudomonads. The role of the sensor kinase, GacS, differs between strains in regulation of motility. In this study, we determined how a gacS mutation changed cell morphology and motility in Pseudomonas chlororaphis O6. The gacS mutant cells were elongated in stationary-phase compared to the wild type and the complemented gacS mutant, but cells did not differ in length in logarithmic phase. The gacS mutant had a two-fold increase in the number of flagella compared with the wild type strain; flagella number was restored to that of the wild type in the complemented gacS mutant. The more highly flagellated gacS mutant cells had greater swimming motilities than that of the wild type strain. Enhanced flagella formation in the gacS mutant correlated with increased expression of three genes, fleQ, fliQ and flhF, involved in flagellar formation. Expression of these genes in the complemented gacS mutant was similar to that of the wild type. These findings show that this root-colonizing pseudomonad adjusts flagella formation and cell morphology in stationary-phase using GacS as a major regulator.
Hypernodulation soybean mutant, SS2-2, is characterized with greater nodulation and nitrogen fixing ability in the root nodule than its wild type, Shinpaldalkong 2. The present study was performed to identify a genetic locus conferring hypernodulation in soybean mutant SS2-2 and to determine whether the gene controlling the hypernodulation of SS2-2 is allelic to that controlling the supernodulation of nts382 mutant. Hybridization studies between SS2-2 and Taekwangkong revealed that the recessive gene was responsible for the hypernodulation character in soybean mutant SS2-2. Allelism was also tested by crossing supernodulating mutant nts382 and hypernodulating mutant SS2-2 that both hypernodulation and supernodulation genes were likely controlled by an identical locus. Molecular marker mapping of hypernodulation gene in SS2-2 using SSR markers confirmed that the gene conferring hypernodulation was located at the same loci with the gene conferring supernodulation. It is interesting to note that the same gene controlled the super- and hyper-nodulation characters, although SS2-2 and nts 382 exhibited differences in the amount of nodulation in the root system. Further genetic studies should be needed to clarify the genetic regulation of super- and hyper-nodulation in soybean.
The enzyme-producing potentials of industrially important strains of Aspergillus spp. were studied. Irradiation of three original isolates of Aspergillus oryzae to ultra-violet rays resulted in the production of mutants which differed from the parent riboflavin and vitamin $B_{12}$ in culture media. 1. Irradition three strains of Aspergillus oryzae to ultraviolet light produced mutants and two strains of them were selected for soy sauce brewing. 2. The two strains are the physiological mutants of Aspergillus oryzae. Both were found to have superior enzyme activity to their relatives. 3. Aspergillus oryzae UV-induced mutant 172-722 and 569-713 were more powerful than others in the production of riboflavin and vitamin $B_{12}$. The enzyme activity of these strain were high and decreased only slightly even in 20 percent solution of NaCl. 4. Aspergillus oryzae UV-induced mutant 172-722 had more powerful protease producibility in wheat bran media than in modified Czapek's solution. On the contrary, Aspergillus oryzae UV-induced mutant 569-713 had more powerful producibility of saccharogenic and dextrinogenic amylase in modified Czapek's solution than in mold bran. 5. Aspergillus oryzae UV-induced mutant 172-722 formed the spore rapidly and Aspergillus oryzae UV-induced mutant 569-713 did ordinarily. 6. It is found from the results that Aspergillus oryzae UV-induced mutant 172-722 is valuable material for the manufacture of soy sauce because of its high protease activity in 20 percent solution of NaCl. Aspergillus oryzae UV-induced mutant 569-713 is suitable for soy bean mash and for fermented red pepper sauce for its high saccharogenic and dextrinogenic amylase activity in 20 percent solution of sodium chloride.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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