It has been known that most regulation of pathogenicity factor (rpf ) genes in xanthomonads regulates virulence in response to the diffusible signal factor, DSF. Although many rpf genes have been functionally characterized, the function of rpfE is still unknown. We cloned the rpfE gene from a Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Xoo) Korean race KACC10859 and generated mutant strains to elucidate the role of RpfE with respect to the rpf system. Through experiments using the rpfE-deficient mutant strain, we found that mutation in rpfE gene in Xoo reduced virulence, swarm motility, and production of virulence factors such as cellulase and extracellular polysaccharide. Disease progress by the rpfE-deficient mutant strain was significantly slowed compared to disease progress by the wild type and the number of the rpfE-deficient mutant strain was lower than that of the wild type in the early phase of infection in the inoculated rice leaf. The rpfE mutant strain was unable to utilize sucrose or xylose as carbon sources efficiently in culture. The mutation in rpfE, however, did not affect DSF synthesis. Our results suggest that the rpfE gene regulates the virulence of Xoo under different nutrient conditions without change of DSF production.
LIM, SOO-KYONG;IL HAN LEE;KUN-SOO KIM;JEONG KUG LEE
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.9
no.5
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pp.604-612
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1999
A puc-deleted cell of Rhodobacter sphaeroides grows with a doubling time longer than 160 h under light-limiting photoheterotrophic (3 Watts [W]/㎡) conditions due to an absence of the peripheral light-harvesting B800-850 complex. A spontaneous fast-growing mutant, R. sphaeroides SK101, was isolated from the puc-deleted cells cultured photoheterotrophically at 3 W/㎡. This mutant grew with an approximately 40-h doubling time. The growth of the mutant, however, was indistinguishable from its parental strain during photoheterotrophic growth at 10 W/㎡ as well as during aerobic growth. The membrane of SK101 grown aerobically did not reveal the presence of any spectral complex, while the amounts of the B875 complex and photosynthetic pigments of SK101 grown anaerobiclly in the dark with dimethylsulfoxide (DMSO) were the same as those of the parental cell. These results indicate that the oxygen control of the photosynthetic complex formation remained unaltered in the mutant. The B875 complex of SK101 under light-limiting conditions was elevated by 20% to 30% compared with that of the parental cell, which reflected the parallel increase of the bacteriochlorophyll and carotenoid contents of the mutant. When the puc was restored in SK101, the B875 complex level remained unchanged, but that of the B800-850 complex increased. The mutated phenotype of SK101 was complemented with orfQ encoding a putative bacteriochlorophyll-mobilizing protein. Accordingly, it is proposed that the mutated OrfQ of SK101 should have an altered affinity towards the assembly factor specific to the most peripheral light-harvesting complex, which could be either the B875 or the B800-850 complex.
The sulfur amino acid composition in soybean (Glycine max L.) seeds may be an essential characteristic of new cultivars for some animal diets. Variation in seed storage protein among genotypes might make it possible to improve the quality of seed protein by genetically altering seed storage protein composition through plant breeding. This study was carried out to determine if mutant strains have potential for improving seed protein quality in soybean. Ten mutant strains had a distinct characteristic of seed storage protein subunits. Among the mutant strains, the sulfur amino acid compositions(methionine plus cystein) of Keburi(P.I.417016), Keburi(P.I.506817), and P.I.54608-1 were relatively higher than those of the others and were 1.9, 2.1, and 1.8%, repectively, which might be due to low levels of ${\alpha}$, ${\alpha}$', and ${\beta}$ subunits of 7S protein. Therefore, it is concluded that the mutant strains, Keburi(P.I.417016), Keburi(P.I.506817), and P.I.54608-1 appear to be potential materials for a breeding program for improving sulfur amino acid composition, and the others also seem to be possible breeding materials for other uses.
The Monascus azaphilone (MAz) pigment is a well-known food colorant that has yellow, orange and red components. The structures of the yellow and orange MAz differ by two hydride reductions, with yellow MAz being the reduced form. Orange MAz can be non-enzymatically converted to red MAz in the presence of amine derivatives. It was previously demonstrated that mppE and mppG are involved in the biosynthesis of yellow and orange MAz, respectively. However, ${\Delta}mppE$ and ${\Delta}mppG$ knockout mutants maintained residual production of yellow and orange MAz, respectively. In this study, we deleted the region encompassing mppD, mppE and mppG in M. purpureus and compared the phenotype of the resulting mutant (${\Delta}mppDEG$) with that of an mppD knockout mutant (${\Delta}mppD$). It was previously reported that the ${\Delta}mppD$ strain retained the ability to produce MAz but at approximately 10% of the level observed in the wildtype strain. A chemical analysis demonstrated that the ${\Delta}mppDEG$ strain was still capable of producing both yellow and orange MAz, suggesting the presence of minor MAz route(s) not involving mppE or mppG. Unexpectedly, the ${\Delta}mppDEG$ strain was observed to accumulate fast-eluting pigments in a reverse phase high-performance liquid chromatography analysis. A LC-MS analysis identified these pigments as ethanolamine derivatives of red MAz, which had been previously identified in an mppE knockout mutant that produces high amounts of orange MAz. Although the underlying mechanism is largely unknown, this study has yielded an M. purpureus strain that selectively accumulates red MAz.
In order to transform pokeweed antiviral protein cDNA to tobacco plant, total RNA was extracted from Phytolacca americana. PAP-II cDNA was synthesized from purified total RNA via RT-PCR and subcloned to recombinant vector pBluescript II SK-. 10 deletion mutant PAP-II cDNA fragments which were sequentially deleted from N-terminal by 90bp were synthesized from PAP-II cDNA except leading frame by PCR with primers designed in our laboratory. To select non-cytotoxic clone, pAc55M was constructed with yeast expression vector pAc55 and multicloning site(MCS). Sequentially deleted mutant PAP-II cDNAs were cloned on downstream of gall promoter of pAc55M. 6 non-cytotoxic deletion mutant PAP-II cDNA were selected. Selected cDNAs were cloned into plant expression vector pKGT101BH for transformation of these clones to plant through Agrobacterium tumefacience. After cloning, recombinant pKGT101BH carrying deleted mutant PAP-IIcDNA were transformed to Nicotiana tabacum cv. NC567. Transformed tobacco plants cultured on shooting and rooting media were transfered to green-house. About four weeks later, these plants were infected with physically infection using carborandum with PVY-VN strain. After 4 weeks, plants resistant to virus were selected , and seeds of these plants were gathered. Southern blot hybridization showed deleted fragments by 220bp and 420bp, so resistant ability of these plants is due to mutant PAP-II cDNA.
Antifungal bacterium, Bacillus subtilis YS1 was isolated from Yusong hot spring showed broad antifungal spectrum against 12 kinds of plant pathogenic fungi and Candida albicans, animal pathogen. From the gamma($Co^{60}$) radiation sensitivity test, $D_10$ value was 2.08 kGy and it survived above 20 kGy of radiation dose. Several mutants were induced by gamma radiation. Among them, YS1-1009 mutant showed resistance against tebuconazole of herbicide, increased activity against Botryoshaeria dothidea and ligninase activity. YS67 mutant was antifungal deficient auxotrophic mutants(trp-pro-or arg-ura-). From this results, it suggested that gamma irradiation could be useful method for mutant induction.
An RpoS factor is a transcriptional regulator which participates in numerous biological processes. In this work, we investigated the transcriptional regulation of proBA and proC composing proline biosynthetic pathway in Escherichia coli. While the proBA and proC genes were greatly induced in an exponential growth phase, they were dramatically repressed in a stationary growth phase in the wild type E. coli. Unlike the wild type E. coli, the proBA and proC genes were not repressed even in the stationary growth phase in its isogenic rpoS mutant. These results suggest that the RpoS factor acts as a transcriptional repressor of proBA and proC genes. The production of threonine, methionine, lysine, and arginine in the rpoS mutant were also increased by more than two times compared to its parental wild type, suggesting that the mutant is able to be used as an useful host strain for the amino acid overproduction.
To reducing offensive odor form compost UIW-6 mutant obtained by UV treatment from sulfur-oxidizing bacteria, Thiobacillus sp. IW. The UIW-6 mutant was found 1.6 times faster in growth than the parent strain on thiosulfate medium (TM) at 36 h after incubation. Initial pH, temperature and agitation for the optimum growth of UIW-6 were 6.5, $35^{\circ}C$ and 200 rpm, respectively. The UIW-6 mutant growth was two times higher than parent strain at 6 h culture in TM liquid medium containing 50 mM sodium thiosulfate. The UIW-6 mutant used fructose and sucrose as carbon sources and yeast extract> tryptone> peptone as nitrogen ones. It was found that the growth of UIW-6 was increased in addition of 0.2% yeast extract.
A liguleless mutant, which showed complete loss of lamina joint region at the junction between leaf blade and leaf sheath, was isolated from a Ds insertional mutants derived from the source cultivar, Dongjin. This mutant could not affect other developmental patterns like phyllotaxis. Southern blot analysis, using GUS as a probe, revealed that the liguleless mutant contained three Ds copies transposed in the rice genome. Among the four genomic sequences flanking the Ds, one was mapped in the intergenic region (31661640 - 31661759), and the other two predicted a protein kinase domain (12098980 - 12098667) as an original insertion site within a starter line used for massive production of Ds insertional mutant lines. Another predicted and inserted in first exon of liguleless 1 protein (OsLG1) that was mapped in coding region (LOC_Os04g56170) of chromosome 4. RT-PCR revealed that the OsLG1 gene was not expressed liguleless mutants. Structure analysis of OsLG1 protein revealed that it predicted transcription factor with a highly conserved SBP domain consisting of 79 amino acids that overlapped a nuclear localization signal (NLS). RT-PCR revealed that OsLG1 is mainly expressed in vegetative organs.
For better understanding of the host infection mechanism of Vibrio, a Vibrio parahaemolyticus collagenase mutant was generated by insertional inactivation of a vppC gene encoding extracellular collagenase. A recombinant DNA containing vppC::nptII was cloned into a suicide plasmid pDMS197, resulted in pVCM03. The recombinant suicide plasmid pVCM03 contained in E. coli $\chi$7213 was transferred to a wild-type V. parahaemolyticus 04 through conjugation. The recombinant vppC::nptII DNA in pVCM03 was exchanged with wild-type allele by homologous recombination resulting vppC mutant, V. parahaemolyticus CM. The mutant was selected and screened on TCBS media containing 10% sucrose and kanamycin. The mutation by allele exchange was confirmed with the comparison of the size of DNAs amplified by PCR. V. parahaemolyticus CM showed at least 4-fold less collagen-degrading activity than those of wild-type, and the mutant exhibited less cytotoxicity than that of wild-type in MTT assay.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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